Новости
хирургии

 Журнал включен
в систему цитирования Scopus
journal cover
android icon Приложение Android

2021 г. №4 Том 29

ОБЩАЯ И ЧАСТHАЯ ХИРУРГИЯ

Н.И. ХРАМЦОВА, С.А. ПЛАКСИH, А.Ю. СОЦКОВ, Д.Н. ПОHОМАРЕВ

ХАРАКТЕРИСТИКА ЖИЗHЕСПОСОБHОСТИ КЛЕТОК ЛИПОГРАФТА ПРИ РАЗЛИЧHЫХ МЕТОДИКАХ ЕГО ПОЛУЧЕHИЯ И ПОДГОТОВКИ

Пермский государственный медицинский университет имени академика Е.А. Вагнера, г. Пермь,
Российская Федерация<

Цель. Определить предикторы выживаемости адипоцитов и фибробластоподобных клеток в липографте при различных методах липоаспирации и подготовки жировой ткани к аутотрансплантации.
Материал и методы. Жизнеспособность адипоцитов проанализирована в 57 образцах липографта, полученных при различных способах липоаспирации, анализ повреждения адипоцитов и фибробластоподобных клеток – в 73 мазках после пропускания жира через фильтры разного диаметра.
Результаты. Средняя жизнеспособность адипоцитов в необработанном липоаспирате составила 59%. При водоструйной методике она равнялась 65% (медиана 61%), шприцевой – 65% (медиана 74%), механической – 55% (медиана 44%), р=0,18. Количество жизнеспособных адипоцитов в зависимости от донорских участков: бедра – 76%, поясница – 67%, живот – 57%, ягодицы – 50%, плечи – 38%, колени – 35%. При использовании фильтра с диаметром ячеек 1,4 мм количество неповрежденных адипоцитов составило 62-68%, фибробластоподобных клеток – 24-28%. Число жизнеспособных клеток уменьшалось с каждым пассажем. После пассажей через фильтр с диаметром ячеек 1,2 мм количество неповрежденных адипоцитов составило 42-52%, фибробластоподобных клеток – 24-26%. Последние располагались среди волокон соединительной ткани. При пассажах через эмульсифицирующий фильтр количество неповрежденных клеток снизилось до 4-16% адипоцитов и 6-16% фибробластоподобных клеток с уменьшением содержания жизнеспособных клеток с увеличением числа пассажей. Определялись единичные остатки волокон соединительной ткани, большая часть мазка была представлена гомогенным жиром.
Заключение. Жизнеспособность адипоцитов выше при использовании шприцевой методики липоаспирации с забором с внутренней и наружной поверхностей бедер и поясницы. Для регенераторной цели предпочтительно применение эмульсифицированного жира, характеризующегося разрушением адипоцитов и устранением волокон соединительной ткани, сохранением неповрежденными до 16% фибробластоподобных клеток. Заполнение дефектов мягких тканей лучше проводить отмытым «макрожиром» без фильтрации либо с использованием клеточного фильтра с диаметром ячеек 1,4 мм. Для сочетания регенераторной и волюмизирующей целей целесообразно применение анаэробных клеточных фильтров.

Ключевые слова: регенеративная медицина, жировая ткань, мезенхимальные стромальные клетки, липографт, наножир, липосакция
с. 445-453 оригинального издания
Список литературы
  1. Coleman SR, Lam S, Cohen SR, Bohluli B, Nahai F. Fat Grafting: Challenges and Debates. Atlas Oral Maxillofac Surg Clin North Am. 2018 Mar;26(1):81-84. doi: 10.1016/j.cxom.2017.10.006
  2. Bellini Е, Grieco MP, Raposio E. The science behind autologous fat grafting. Ann Med Surg (Lond). 2017 Nov 10;24:65-73. doi: 10.1016/j.amsu.2017.11.001. eCollection 2017 Dec.
  3. Shridharani SM, Broyles JM, Matarasso A. Liposuction devices: technology update. Med Devices (Auckl). 2014 Jul 21;7:241-51. doi: 10.2147/MDER.S47322. eCollection 2014.
  4. Sasaki GH. Water-assisted liposuction for body contouring and lipoharvesting: safety and efficacy in 41 consecutive patients. Aesthet Surg J. 2011 Jan;31(1):76-88. doi: 10.1177/1090820X10391465
  5. Fontes T, Brandão I, Negrão R, Martins MJ, Monteiro R. Autologous fat grafting: Harvesting techniques. Ann Med Surg (Lond). 2018 Nov 13;36:212-18. doi: 10.1016/j.amsu.2018.11.005. eCollection 2018 Dec.
  6. Leong DT, Hutmacher DW, Chew FT, Lim TC. Viability and adipogenic potential of human adipose tissue processed cell population obtained from pump-assisted and syringe-assisted liposuction. J Dermatol Sci. 2005 Mar;37(3):169-76. doi: 10.1016/j.jdermsci.2004.11.009
  7. Kakagia D, Pallua N. Autologous fat grafting: in search of the optimal technique. Surg Innov. 2014 Jun;21(3):327-36. doi: 10.1177/1553350613518846
  8. Ozsoy Z, Kul Z, Bilir A. The role of cannula diameter in improved adipocyte viability: a quantitative analysis. Aesthet Surg J. 2006 May-Jun;26(3):287-89. doi: 10.1016/j.asj.2006.04.003
  9. Hamza A, Lohsiriwat V, Rietjens M. Lipofilling in breast cancer surgery. Gland Surg. 2013 Feb;2(1):7-14. doi: 10.3978/j.issn.2227-684X.2013.02.03
  10. Tonnard P, Verpaele A, Peeters G, Hamdi M, Cornelissen M, Declercq H. Nanofat grafting: basic research and clinical applications. Plast Reconstr Surg. 2013 Oct;132(4):1017-26. doi: 10.1097/PRS.0b013e31829fe1b0
  11. Osinga R, Menzi NR, Tchang LA, Caviezel D, Kalbermatten DF, Martin I, Schaefer DJ, Scherberich A, Largo RD. Effects of intersyringe processing on adipose tissue and its cellular components: implications in autologous fat grafting. Plast Reconstr Surg. 2015 Jun;135(6):1618-28. doi: 10.1097/PRS.0000000000001288
  12. Denu RA, Nemcek S, Bloom DD, Goodrich AD, Kim J, Mosher DF, Hematti P. Fibroblasts and Mesenchymal Stromal/Stem Cells Are Phenotypically Indistinguishable. Acta Haematol. 2016;136(2):85-97. doi: 10.1159/000445096
  13. Eto H, Kato H, Suga H, Aoi N, Doi K, Kuno S, Yoshimura K. The fate of adipocytes after nonvascularized fat grafting: evidence of early death and replacement of adipocytes. Plast Reconstr Surg. 2012 May;129(5):1081-92. doi: 10.1097/PRS.0b013e31824a2b19
  14. Crawford JL, Hubbard BA, Colbert SH, Puckett CL. Fine tuning lipoaspirate viability for fat grafting. Plast Reconstr Surg. 2010 Oct;126(4):1342-48. doi: 10.1097/PRS.0b013e3181ea44a9">10.1097/PRS.0b013e3181ea44a9
  15. Vasilyev V, Vasilyev S, Vazhenin A, Teryushkova Z, Vasilyev Y, Vasilyev I, Semyonova A, Dimov G, Lomakin E. Abstract: An Algorithm for Treatment of Radiation-Induced Soft Tissue Damage with Products Based on Autologous Adipose Tissue. Plast Reconstr Surg Glob Open. 2018 Sep;6(9 Suppl):155-56. doi: 10.1097/01.GOX.0000547029.33601.d4
  16. Yu Q, Cai Y, Huang H, Wang Z, Xu P, Wang X, Zhang L, Zhang W, Li W. Co-Transplantation of Nanofat Enhances Neovascularization and Fat Graft Survival in Nude Mice. Aesthet Surg J. 2018 May 15;38(6):667-75. doi: 10.1093/asj/sjx211
  17. Pallua N, Grasys J, Kim BS. Enhancement of progenitor cells by two-step centrifugation of emulsified lipoaspirates. Plast Reconstr Surg.2018 Jul;142(1):99-109. doi: 10.1097/PRS.0000000000004495
Адрес для корреспонденции:
614000, Российская Федерация,
г. Пермь, ул. Петропавловская, д. 26,
Пермский государственный медицинский
университет им. акад. Е.А. Вагнера,
деканат лечебного факультета,
тел. моб.: +7 909 107-12-34,
e-mail: renelve@gmail.com,
Храмцова Наталья Игоревна
Cведения об авторах:
Храмцова Наталья Игоревна, к.м.н., доцент кафедры госпитальной хирургии, Пермский государственный медицинский университет им. академика Е.А. Вагнера, г. Пермь, Российская Федерация.
http://orcid.org/0000-0001-6097-6855
Плаксин Сергей Александрович, д.м.н., профессор кафедры хирургии с курсом сердечно-сосудистой хирургии и инвазивной кардиологии, Пермский государственный медицинский университет им. академика Е.А. Вагнера, г. Пермь, Российская Федерация
http://orcid.org/0000-0001-8108-1655
Соцков Артем Юрьевич, студент, Пермский государственный медицинский университет им. академика Е.А. Вагнера, г. Пермь, Российская Федерация.
https://orcid.org/0000-0003-0225-2925
Пономарев Данил Николаевич, студент, Пермский государственный медицинский университет им. академика Е.А. Вагнера, г. Пермь, Российская Федерация.
https://orcid.org/0000-0001-5324-7515
Контакты | ©Витебский государственный медицинский университет, 2007-2023