Новости
хирургии
Журнал включен
в систему цитирования Scopus









2021 г. №4 Том 29

НАУЧHЫЕ ПУБЛИКАЦИИ
ЭКСПЕРИМЕHТАЛЬHАЯ ХИРУРГИЯ

DOI: https://dx.doi.org/10.18484/2305-0047.2021.4.401   |  

И.В. МАЙБОРОДИH 1, 2, А.А. ШЕВЕЛА 2, С.В. МАРЧУКОВ 2, В.В. МОРОЗОВ 2, В.А. МАТВЕЕВА 2, В.И. МАЙБОРОДИHА 1, А.М. НОВИКОВ 3, Ю.В. ТОРHУЕВ 1, Б.В. ЧУРИH 1, А.И. ШЕВЕЛА 2

ПРОЛОHГАЦИЯ ОЧИЩЕHИЯ ПОВРЕЖДЕHHЫХ ТКАHЕЙ ОТ ДЕТРИТА В УСЛОВИЯХ ПРИМЕHЕHИЯ ЭКЗОСОМ МУЛЬТИПОТЕHТHЫХ СТРОМАЛЬHЫХ КЛЕТОК

Федеральный исследовательский центр фундаментальной и трансляционной медицины
Министерства науки и высшего образования РФ,
Институт молекулярной патологии и патоморфологии 1,
Институт химической биологии и фундаментальной медицины
Сибирского отделения Российской академии наук 2,
Научно-исследовательский институт клинической и экспериментальной лимфологии 3, г. Новосибирск,
Российская Федерация

Цель. Изучить влияние экзосом мультипотентных мезенхимальных стромальных клеток (ЭМСК) на мягкие ткани, поврежденные в процессе имплантации в кость металлического винтового изделия.
Материал и методы. В проксимальных мыщелках большеберцовой кости беспородных кроликов создавали дефект диаметром 2 мм и глубиной 4 мм. В дефект имплантировали металлические винтовые изделия с предварительным введением физиологического раствора (контроль, 9 животных) или 19,2 мкг ЭМСК на каждую конечность (опыт, 10 особей). Через 3; 7 и 10 суток после операции животных выводили из эксперимента, гистологические срезы мягких тканей с поверхности мыщелка, окрашенные гематоксилином и эозином, изучали методом световой микроскопии.
Результаты. Применение водяного охлаждения в процессе внедрения металлического имплантата в проксимальный мыщелок большеберцовой кости не приводит к полному удалению мелких костных фрагментов, которые впоследствии или элиминируются наружу с раневым отделяемым, или подвергаются деструкции и лизису макрофагами. В результате влияния ЭМСК на мягкие ткани рядом с участком повреждения уменьшается активность послеоперационного воспаления, что приводит к замедлению рассасывания геморрагий, элиминации фибриновых сгустков, детрита и мелких костных фрагментов. Даже на 10-е сутки на фоне использования ЭМСК в послеоперационной ране присутствует бесструктурный детрит с небольшим числом инфильтрирующих клеточных элементов, а также значительное число многоядерных макрофагов со слившейся цитоплазмой, нежизнеспособных лизируемых поперечнополосатых мышечных симпластов и костных фрагментов с малой степенью их деградации.
Заключение. Супрессия воспаления ЭМСК задерживает очищение послеоперационной раны, способствует пролонгации репарационного процесса и присоединению к воспалению гранулематозного компонента.Применение ЭМСК в процессе интраоссальной имплантации может быть показано только для контроля активности воспалительного процесса и при условии максимального предварительного очищения послеоперационной раны от детрита, в том числе нежизнеспособной мышечной ткани и костных фрагментов.

Ключевые слова: поврежденные ткани, экзосомы мультипотентных мезенхимальных стромальных клеток, регенерация, воспаление, макрофаги
с. 401-411 оригинального издания
Список литературы
  1. Zigdon-Giladi H, Bick T, Lewinson D, Machtei EE. Mesenchymal stem cells and endothelial progenitor cells stimulate bone regeneration and mineral density. J Periodontol. 2014 Jul;85(7):984-90. doi: 10.1902/jop.2013.130475
  2. Conklin LS, Hanley PJ, Galipeau J, Barrett J, Bollard CM. Intravenous mesenchymal stromal cell therapy for inflammatory bowel disease: Lessons from the acute graft versus host disease experience. Cytotherapy. 2017 Jun;19(6):655-667. doi: 10.1016/j.jcyt.2017.03.006
  3. Bahrami B, Hosseini A, Talei AR, Ghaderi A, Razmkhah M. Adipose derived stem cells exert immunomodulatory effects on natural killer cells in breast cancer. Cell J. 2017 Apr-Jun;19(1):137-45. https://www.ncbi.nlm.nih.gov/pmc/articles/PMC5241510
  4. Abdelhamid L, Hussein H, Ghanem M, Eissa N. Retinoic acid-mediated anti-inflammatory responses in equine immune cells stimulated by LPS and allogeneic mesenchymal stem cells. Res Vet Sci. 2017 Oct;114:225-32. doi: 10.1016/j.rvsc.2017.05.006
  5. Qu M, Yuan X, Liu D, Ma Y, Zhu J, Cui J, Yu M, Li C, Guo D. Bone Marrow-Derived Mesenchymal Stem Cells Attenuate Immune-Mediated Liver Injury and Compromise Virus Control During Acute Hepatitis B Virus Infection in Mice. Stem Cells Dev. 2017 Jun 1;26(11):818-27. doi: 10.1089/scd.2016.0348
  6. Grange C, Tapparo M, Bruno S, Chatterjee D, Quesenberry PJ, Tetta C, Camussi G. Biodistribution of mesenchymal stem cell-derived extracellular vesicles in a model of acute kidney injury monitored by optical imaging. Int J Mol Med. 2014 May;33(5):1055-63. doi: 10.3892/ijmm.2014.1663
  7. Doeppner TR, Herz J, Görgens A, Schlechter J, Ludwig AK, Radtke S, de Miroschedji K, Horn PA, Giebel B, Hermann DM. Extracellular vesicles improve post-stroke neuroregeneration and prevent postischemic immunosuppression. Stem Cells Transl Med. 2015 Oct;4(10):1131-43. doi: 10.5966/sctm.2015-0078
  8. Майбородин ИВ, Шевела АА, Марчуков СВ, Морозов ВВ, Матвеева ВА, Майбородина ВИ, Новиков АМ, Шевела АИ. Регенерация костного дефекта в условиях экспериментального применения экстрацеллюлярных микровезикул мультипотентных стромальных клеток. Новости Хирургии. 2020;28(4):366-69. doi: 10.18484/2305-0047.2020.4.359
  9. Blazquez R, Sanchez-Margallo FM, de la Rosa O, Dalemans W, Alvarez V, Tarazona R, Casado JG. Immunomodulatory potential of human adipose mesenchymal stem cells derived exosomes on in vitro stimulated T cells. Front Immunol. 2014 Nov 4;5:556. doi: 10.3389/fimmu.2014.00556. eCollection 2014.
  10. Zhang S, Chu WC, Lai RC, Lim SK, Hui JH, Toh WS. Exosomes derived from human embryonic mesenchymal stem cells promote osteochondral regeneration. Osteoarthritis Cartilage. 2016 Dec;24(12):2135-40. doi: 10.1016/j.joca.2016.06.022
  11. Sun X, Xu M, Cao Q, Huang P, Zhu X, Dong X. A lysosomalK(+) channel regulates large particle phagocytosis by facilitating lysosome Ca(2+) release. Sci Rep. 2020;10(1):1038. doi: 10.1038/s41598-020-57874-2
  12. Simonson OE, Mougiakakos D, Heldring N, Bassi G, Johansson HJ, Dalén M, Jitschin R, Rodin S, Corbascio M, El Andaloussi S, Wiklander OP, Nordin JZ, Skog J, Romain C, Koestler T, Hellgren-Johansson L, Schiller P, Joachimsson PO, Hägglund H, Mattsson M, Lehtiö J, Faridani OR, Sandberg R, Korsgren O, Krampera M, Weiss DJ, Grinnemo KH, Le Blanc K. In vivo effects of mesenchymal stromal cells in two patients with severe acute respiratory distress syndrome. Stem Cells Transl Med. 2015 Oct;4(10):1199-213. doi: 10.5966/sctm.2015-0021
  13. Tan JL, Lau SN, Leaw B, Nguyen HPT, Salamonsen LA, Saad MI, Chan ST, Zhu D, Krause M, Kim C, Sievert W, Wallace EM, Lim R. Amnion epithelial cell-derived exosomes restrict lung injury and enhance endogenous lung repair. Stem Cells Transl Med. 2018 Feb;7(2):180-96. doi: 10.1002/sctm.17-0185
  14. Harrell CR, Miloradovic D, Sadikot R, Fellabaum C, Markovic BS, Miloradovic D, Acovic A, Djonov V, Arsenijevic N, Volarevic V. Molecular and cellular mechanisms responsible for beneficial effects of mesenchymal stem cell-derived product “Exo-d-MAPPS” in attenuation of chronic airway inflammation. Anal Cell Pathol (Amst). 2020 Mar 20;2020:3153891. doi: 10.1155/2020/3153891. eCollection 2020.р
Адрес для корреспонденции:
630090, Российская Федерация,
г. Новосибирск, пр. акад. Лаврентьева, д. 8,
Институт химической биологии
и фундаментальной медицины СО РАН,
Центр новых медицинских технологий,
тел.: +7-913-753-0767,
e-mail: imai@mail.ru
Майбородин Игорь Валентинович
Cведения об авторах:
Майбородин Игорь Валентинович, д.м.н., профессор, главный научный сотрудник лаборатории цитологиии клеточной биологии Института молекулярной патологии и патоморфологии, Федеральный исследовательский центр фундаментальной и трансляционной медицины Министерства науки и высшего образования Российской Федерации, главный научный сотрудник лаборатории технологий управления здоровьем, Институт химической биологии и фундаментальной медицины СО РАН, г. Новосибирск, Российская Федерация.
https://orcid.org/0000-0002-8182-5084
Шевела Александр Андреевич, к.м.н., докторант лаборатории технологий управления здоровьем, Институт химической биологии и фундаментальной медицины СО РАН, г. Новосибирск, Российская Федерация.
http://orcid.org/0000-0001-9235-9384
Марчуков Сергей Вадимович, к.м.н., докторант лаборатории технологий управления здоровьем, Институт химической биологии и фундаментальной медицины СО РАН, г. Новосибирск, Российская Федерация.
https://orcid.org/0000-0002-7381-5820
Морозов Виталий Валерьевич, д.м.н., профессор, заведующий лабораторией технологий управления здоровьем, Институт химической биологии и фундаментальной медицины СО РАН, г. Новосибирск, Российская Федерация.
https://orcid.org/0000-0002-9810-5593
Матвеева Вера Александровна, к.б.н., старший научный сотрудник лаборатории технологий управления здоровьем, Институт химической биологии и фундаментальной медицины СО РАН, г. Новосибирск, Российская Федерация.
https://orcid.org/0000-0002-8706-4853
Майбородина Виталина Игоревна, д.м.н., ведущий научный сотрудник лаборатории ультраструктурных основ патологии Института молекулярной патологии и патоморфологии, Федеральный исследовательский центр фундаментальной и трансляционной медицины Министерства науки и высшего образования Российской Федерации, г. Новосибирск, Российская Федерация.
http://orcid.org/0000-0002-5169-6373
Новиков Алексей Михайлович, младший научный сотрудник лаборатории клеточных технологий Научно-исследовательского института клинической и экспериментальной лимфологии - филиал Федерального государственного бюджетного научного учреждения «Федеральный исследовательский центр Института цитологии и генетики Сибирского отделения Российской академии наук» (ИЦиГ СО РАН), г. Новосибирск, Российская Федерация.
http://orcid.org/0000-0003-1371-7492
Торнуев Юрий Васильевич, д.б.н., профессор, главный научный сотрудник лаборатории общей патологии и патоморфологии Института молекулярной патологии и патоморфологии, Федеральное государственное бюджетное научное учреждение «Федеральный исследовательский центр фундаментальной и трансляционной медицины» Министерства науки и высшего образования Российской Федерации, г. Новосибирск, Российская Федерация.
http://orcid.org/0000-0001-8629-8909
Чурин Борис Васильевич, д.м.н., профессор, ведущий научный сотрудник лаборатории цитологии и клеточной биологииИнститута молекулярной патологии и патоморфологии, Федеральное государственное бюджетное научное учреждение «Федеральный исследовательский центр фундаментальной и трансляционной медицины» Министерства науки и высшего образования Российской Федерации, г. Новосибирск, Российская Федерация.
http://orcid.org/0000-0001-9742-6152
Шевела Андрей Иванович, д.м.н., профессор, заведующий отделом «Центр новых медицинских технологий», Институт химической биологии и фундаментальной медицины СО РАН, г. Новосибирск, Российская Федерация.
http://orcid.org/0000-0002-3164-9377

ОБЩАЯ И ЧАСТHАЯ ХИРУРГИЯ

DOI: https://dx.doi.org/10.18484/2305-0047.2021.4.412   |  

В.И. ПЕТУХОВ 1, В.И. ДЕРКАЧ 1, С.Н. ЕРМАШКЕВИЧ 1, М.В. КУHЦЕВИЧ 1, А.П. КУТЬКО 2

АHГИОПУЛЬМОHОГРАФИЯ С HИТРОГЛИЦЕРИHОВЫМ ТЕСТОМ В ДИАГHОСТИКЕ ОСТРЫХ ИHФЕКЦИОHHЫХ ДЕСТРУКЦИЙ ЛЕГКИХ

Витебский государственный медицинский университет 1,
Витебская областная клиническая больница 2, г. Витебск,
Республика Беларусь

Цель. Разработать метод дополнительной и дифференциальной диагностики острых инфекционных деструкций легких (ОИДЛ), основанный на проведении ангиопульмонографии с нитроглицериновым тестом.
Материал и методы. Ангиопульмонография с нитроглицериновым тестом была использована у 10 пациентов с гнойно-воспалительными заболеваниями легких и плевры для дополнительной и дифференциальной диагностики ОИДЛ. Метод был использован в ситуациях, когда данные компьютерной томографии органов грудной клетки не позволяли однозначно определить наличие и/или распространенность некроза паренхимы легких.
Результаты. У 3 пациентов с абсцессом легкого отмечали четкое ограничение полости распада с сохранением магистрального кровотока и ослаблением паренхиматозной фазы кровообращения по периферии деструктивного участка. При проведении нитроглицеринового теста не происходило изменения наполняемости микроциркуляторного русла контрастом по периферии полости распада, что позволило определить наличие пристеночных секвестров. У 6 пациентов по результатам выполненного исследования был установлен диагноз гангрены легкого. При этом было отмечено два варианта нарушения кровообращения: первый – с сохранением кровотока по магистральным сосудам и с отсутствием паренхиматозной фазы в очаге поражения, второй – с нарушением магистрального кровотока. После нитроглицеринового теста изменения кровотока в пораженном участке не наблюдали. Подобные результаты исследования указывали на развитие некроза легочной паренхимы, что в последующем было подтверждено в ходе выполненных операций. В зонах воспалительной инфильтрации легочной паренхимы при сохраненном магистральном кровотоке определялось обеднение паренхиматозной фазы кровообращения, но после проведения нитроглицеринового теста отмечали выраженное обогащение сосудистого рисунка в паренхиматозную фазу в пораженном пневмонией участке легкого.
Заключение. Установлено, что для ОИДЛ характерны необратимые изменения сосудистого русла паренхимы легкого в очаге поражения. Ангиопульмонография с нитроглицериновым тестом является дополнительным высокоинформативным методом, улучшающим раннюю и дифференциальную диагностику ОИДЛ в сложных клинических ситуациях.

Ключевые слова: ангиопульмонография, нитроглицериновый тест, диагностика, пневмония, острые инфекционные деструкции легких
с. 412-419 оригинального издания
Список литературы
  1. Информационный бюллетень ВОЗ. 10 ведущих причин смерти в мире. Дек., 2020 г. [Электронный реcурс]. Available from: https://www.who.int/ru/news-room/fact-sheets/detail/the-top-10-causes-of-death
  2. Subotic D. Lung Abscess. In: Parikh D, Rajesh P (eds). Tips and Tricks in Thoracic Surgery. Springer Verlag, London; 2018. р. 125-44. doi: 10.1007/978-1-4471-7355-7
  3. Дунаев АП. Лучевая диагностика острых деструктивных воспалительных процессов в легких. Москва, РФ: Видар М; 2016. 104 с.
  4. Duncan C, Nadolski GJ, Gade T, Hunt S. Understanding the lung abscess microbiome: outcomes of percutaneous lung parenchymal abscess drainage with microbiologic correlation. Cardiovasc Intervent Radiol. 2017 Jun;40(6):902-906. doi: 10.1007/s00270-017-1623-3
  5. Кармазановский ГГ, Старостина НС, Косова ИА. КТ-семиотика гнойно-деструктивных процессов в грудной клетке: показания к хирургическому лечению. Москва, РФ: Изд. дом Видар-М; 2012. 98 с.
  6. Овчинников AA. Острые и хронические гнойные заболевания легких. РМЖ. 2002;10(23):1073-79. https://www.rmj.ru/articles/bolezni_dykhatelnykh_putey/Ostrye_i_hronicheskie_gnoynye_zabolevaniya_legkih
  7. Ясногородский ОО, Гостищев ВК, Шулутко АМ, Пинчук ТП, Стручков ЮВ, Талдыкин МВ, Насиров ФН, Мочалов ВА. Абсцесс и гангрена легкого: эволюция методов лечения. Новости Хирургии. 2020;28(2):150-58. doi: 10.18484/2305-0047.2020.2.150
  8. Тюрин ИЕ. Компьютерная томография органов грудной полости. С-Петербург, РФ: Элби-СПб; 2003. 371 с.
  9. Карпушкина ПИ, Авдеева НА, Пигачев АВ. Влияние АУФОК на характер легочного кровотока у больных с острыми деструктивными заболеваниями легких. Соврем Тенденции Развития Науки и Технологий. 2015;(2-2):29-32. https://www.elibrary.ru/item.asp?id=23702514
  10. Сперанская АА. МСКТ-ангиография и ОФЭКТ в оценке причин неблагоприятного течения редких интерстициальных заболеваний легких (лимфангиолейомиоматоз, гистиоцитоз Х). Регионар Кровообращение и Микроциркуляция. 2013;12(1):58-64. doi: 10.24884/1682-6655-2013-12-1-58-64
  11. Столярова НА, Садчикова ГД. Интенсивная терапия тяжелой острой пневмонии с применением гемодинамической разгрузки малого круга кровообращения. Анестезиология и Реаниматология. 2005;60(4):46-49. https://www.elibrary.ru/item.asp?id=9212313
Адрес для корреспонденции:
210009, Республика Беларусь,
г. Витебск, пр. Фрунзе, 27,
Витебский государственный медицинский
университет, кафедра госпитальной
хирургии с курсом ФПК и ПК,
тел. моб.: + 375 29 890 64 42,
e-mail: derkach_v1991@mail.ru,
Деркач Владислав Игоревич
Cведения об авторах:
Петухов Владимир Иванович, д.м.н., доцент, заведующий кафедрой госпитальной
хирургии с курсом ФПК и ПК, Витебский государственный медицинский университет, г. Витебск, Республика Беларусь.
https://orcid.org/0000-0002-4042-3978
Деркач Владислав Игоревич, аспирант кафедры госпитальной хирургии с курсом ФПК и ПК,
Витебский государственный медицинский университет, г. Витебск, Республика Беларусь.
https://orcid.org/0000-0001-9440-9031
Ермашкевич Сергей Николаевич, к.м.н., доцент, доцент кафедры госпитальной
хирургии с курсом ФПК и ПК, Витебский государственный медицинский университет, г. Витебск, Республика Беларусь.
https://orcid.org/0000-0002-0866-9070
Кунцевич Максим Владимирович, ассистент кафедры госпитальной хирургии с курсом ФПК и ПК, Витебский государственный медицинский университет, г. Витебск, Республика Беларусь.
https://orcid.org/0000-0002-8122-6655
Кутько Андрей Петрович, заведующий отделением рентгенэндоваскулярной хирургии, Витебская областная клиническая больница, г. Витебск, Республика Беларусь.
https://orcid.org/0000-0001-8484-3651
DOI: https://dx.doi.org/10.18484/2305-0047.2021.4.420   |  

Р.Е. КАЛИHИH, И.А. СУЧКОВ, А.В. ЩУЛЬКИH, Э.А. КЛИМЕHТОВА, А.А. ЕГОРОВ

ВЛИЯHИЕ РАЗЛИЧHЫХ ОПЕРАТИВHЫХ ВМЕШАТЕЛЬСТВ HА ПОКАЗАТЕЛИ АПОПТОЗА СОСУДИСТОЙ СТЕHКИ У ПАЦИЕHТОВ С АТЕРОСКЛЕРОЗОМ ПЕРИФЕРИЧЕСКИХ АРТЕРИЙ

Рязанский государственный медицинский университет, г. Рязань,
Российская Федерация

Цель. Оценка уровня белков апоптоза Всl-2 и Bax до и после открытых сосудистых реконструкций и рентгенэндоваскулярных интервенций у пациентов с периферическим атеросклерозом артерий нижних конечностей.
Материал и методы. В исследование было включено 40 пациентов с периферическим атеросклерозом артерий нижних конечностей с III-IV стадией заболевания, которым были проведены открытые операции – группа А, и 40 пациентов, которым проводились эндоваскулярные интервенции – группа В. В сыворотке крови были подвергнуты анализу два белка апоптоза: Вах и Bcl-2 – исходно до оперативного лечения, на 1-е сутки и через 1 месяц. Референтные значения исследуемых показателей определялись у 40 здоровых добровольцев.
Результаты. Исходные значения белка Вах – 27,1 нг/мл (р<0,001) были повышены у пациентов группы А при сниженных значениях белка Всl-2 – 4,4 нг/мл (р=0,00008) у пациентов группы В по сравнению со значениями здоровых добровольцев (16,5 нг/мл, 5,3 нг/мл соответственно). На 1-е сутки после вмешательств у пациентов оперативных групп наблюдалась тенденция к повышению показателя Вах до значений 35,6 нг/мл (p<0,001) в группе А, 25,6 нг/мл (p<0,001) – в группе В. К концу 1-го месяца у пациентов группы А был повышен Вах (p<0,001) до 28 нг/мл и снижен Всl-2 (р=0,039) до 3,0 нг/мл по сравнению с исходными значениями, у пациентов группы В повышено значение только белка Вах – 23,9 нг/мл (р<0,001).
Заключения. Открытое и эндоваскулярное вмешательство на артериях нижних конечностей приводит к активации проапоптического белка Вах на 1-е сутки после операции. Открытая реконструкция приводит к большему повышению проапоптического потенциала в послеоперационном периоде в сравнении с эндоваскулярным вмешательством в виде повышенных значений белка Вах и сниженных значений Всl-2 к концу первого месяца.

Ключевые слова: апоптоз, атеросклероз периферических артерий, белки апоптоза, Всl-2, Вах
с. 420-425 оригинального издания
Список литературы
  1. Алекян БГ, Покровский АВ, Карапетян НГ, Ревишвили АШ. Современные тенденции развития хирургического и эндоваскулярного лечения больных с артериальной патологией. Ангиология и Сосудистая Хирургия. 2019;25(4):55-63. http://www.angiolsurgery.org/magazine/2019/4/5.htm
  2. Батыралиев ТА, Фетцер ДВ, Сидоренко БА, Бодурогля Я, Докумачи Б, Беленков ЮН. Влияние дизайна стандартных металлических стентов на гиперплазию неоинтимы и рестеноз. Кардиология. 2014,54(2):75-78.
  3. Стрельникова ЕА, Трушкина ПЮ, Суров ИЮ, Короткова НВ, Мжаванадзе НД, Деев РВ. Эндотелий in vivo и in vitro. Часть 1: гистогенез, структура, цитофизиология и ключевые маркеры. Наука Молодых (Eruditio Juvenium). 2019,7(3):450-65. doi: 10.23888/HMJ201973450-465
  4. Егорова ИЭ, Бахтаирова ВИ, Суслова АИ. Молекулярные механизмы апоптоза, вовлеченные в развитие различных патологических процессов. Инновационные Технологии в Фармации. 2019;(6):108-14. https://elibrary.ru/item.asp?id=38363905
  5. Clarke MC, Littlewood TD, Figg N, Maguire JJ, Davenport AP, Goddard M, Bennett MR. Chronic apoptosis of vascular smooth muscle cells accelerates atherosclerosis and promotes calcification and medial degeneration. Circ Res. 2008 Jun 20;102(12):1529-38. doi: 10.1161/CIRCRESAHA.108.175976
  6. Kutuk O, Basaga H. Bcl-2 protein family: implications in vascular apoptosis and atherosclerosis. Apoptosis. 2006 Oct;11(10):1661-75. doi: 10.1007/s10495-006-9402-7
  7. Hockings C, Alsop AE, Fennell SC, Lee EF, Fairlie WD, Dewson G, Kluck RM. Mcl-1 and Bcl-xL sequestration of Bak confers differential resistance to BH3-only proteins. Cell Death Differ. 2018 Mar;25(4):721-34. doi: 10.1038/s41418-017-0010-6
  8. Kockx MM, De Meyer GR, Muhring J, Jacob W, Bult H, Herman AG. Apoptosis and related proteins in different stages of human atherosclerotic plaques. Circulation. 1998 Jun 16;97(23):2307-15. doi: 10.1161/01.cir.97.23.2307
  9. Isner JM, Kearney M, Bortman S, Passeri J. Apoptosis in human atherosclerosis and restenosis. Circulation. 1995 Jun 1;91(11):2703-11. doi: 10.1161/01.cir.91.11.2703.
  10. Spiguel LR, Chandiwal A, Vosicky JE, Weichselbaum RR, Skelly CL. Concomitant proliferation and caspase-3 mediated apoptosis in response to low shear stress and balloon injury. J Surg Res. 2010 Jun 1;161(1):146-55. doi: 10.1016/j.jss.2008.11.001
  11. Walsh K, Smith RC, Kim HS. Vascular cell apoptosis in remodeling, restenosis, and plaque rupture. Circ Res. 2000 Aug 4;87(3):184-88. doi: 10.1161/01.res.87.3.184
  12. Владимирская ТЭ, Швед ИА, Демидчик ЮЕ. Соотношение экспрессии белков BCL-2 и BAX в стенке коронарных артерий, пораженных атеросклерозом. Изв НАН Беларуси. Сер Мед Наук. 2015;(4):51-55. https://vestimed.belnauka.by/jour/article/view/213?locale=ru_RU
  13. Wan L, Dai SH, Lai SQ, Liu LQ, Wang Q, Xu H, Wang WJ, Liu JC. Apoptosis, proliferation, and morphology during vein graft remodeling in rabbits. Genet Mol Res. 2016 Oct 5;15(4). doi: 10.4238/gmr.15048701
  14. Калинин РЕ, Сучков ИА, Климентова ЭА, Егоров АА, Поваров ВО. Апоптоз в сосудистой патологии: настоящее и будущее. Рос Мед-Биол Вестн им Акад ИП Павлова. 2020;28(1):79-87. doi: 10.23888/ PAVLOVJ202028179-87
Адрес для корреспонденции:
390026, Российская Федерация,
г. Рязань, ул. Высоковольтная, д. 9,
Рязанский государственный медицинский
университет, кафедра сердечно-сосудистой,
рентгенэндоваскулярной, оперативной хирургии
и топографической анатомии,
тел.: +7 903836-24-17,
e-mail: Suchkov_med@mail.ru,
Сучков Игорь Александрович
Cведения об авторах:
Калинин Роман Евгеньевич, д.м.н., профессор, ректор, заведующий кафедрой сердечно-сосудистой, рентгенэндоваскулярной, оперативной хирургии и топографической анатомии, Рязанский государственный медицинский университет имени академика И.П. Павлова, г. Рязань, Российская Федерация.
https://orcid.org/0000-0002-0817-9573
Сучков Игорь Александрович, д.м.н, доцент, проректор по научной работе и инновационному развитию, профессор кафедры сердечно-сосудистой, рентгенэндоваскулярной, оперативной хирургии и топографической анатомии, Рязанский государственный медицинский университет имени академика И.П. Павлова, г. Рязань, Российская Федерация.
https://orcid.org/0000-0002-1292-5452.
Щулькин Алексей Владимирович, д.м.н., профессор кафедры фармакологии с курсом фармации факультета дополнительного профессионального образования, Рязанский государственный медицинский университет имени академика И. П. Павлова, г. Рязань, Российская Федерация.
https://orcid.org/0000-0003-1688-0017
Климентова Эмма Анатольевна, соискатель кафедры сердечно-сосудистой, рентгенэндоваскулярной, оперативной хирургии и топографической анатомии, Рязанский государственный медицинский университет имени академика И.П. Павлова, г. Рязань, Российская Федерация.
https://orcid.org/0000-0003-4855-9068
Егоров Андрей Александрович д.м.н., доцент кафедры сердечно-сосудистой,рентгенэндоваскулярной, оперативной хирургии и топографической анатомии, Рязанский государственный медицинский университет имени академика И.П. Павлова,г. Рязань, Российская Федерация.
https://orcid.org/0000-0003-0768-7602
DOI: https://dx.doi.org/10.18484/2305-0047.2021.4.426   |  

Е.М. КЛИМОВА 1, В.В. БОЙКО 1, Л.А. ДРОЗДОВА 1, Е.В. ЛАВИHСКАЯ 1, Д.В. МИHУХИH 2, А.Н. КУДРЕВИЧ 3

ПРОГHОСТИЧЕСКИЕ МАРКЕРЫ У ПАЦИЕHТОВ С ТИМУСHЕЗАВИСИМОЙ И ТИМУСЗАВИСИМОЙ МИАСТЕHИЕЙ

Институт общей и неотложной хирургии им. В.Т. Зайцева НАМН Украины 1, г. Харьков, Харьковского национального медицинского университета 2,
Харьковский национальный университет им. В.Н. Каразина 2, г. Харьков, Украина

Цель. Оценить наличие специфических маркеров у пациентов с тимуснезависимой и тимусзависимой миастенией для выбора тактики лечения.
Материал и методы. Обследовано 138 пациентов с тимуснезависимой (М – миастения без морфо-функциональных изменений тимуса) и тимусзависимой (МГ – миастения на фоне гиперплазии тимуса, МТ – миастения на фоне тимомы) миастенией. Использовали методы иммуноферментного анализа (содержание антител к α1 и α7 субъединицам нАХР в сыворотке, к α7 субъединице нАХР в митохондриях тимоцитов, уровень антиядерных антител ANA), иммунофлуоресценции (тип свечения ANA), проточной цитометрии (экспрессия CD14+CD11c+ и CD14+HLA-DR+).
Результаты. Выявлена взаимосвязь клинических фенотипов миастении с вариантами диплотипов лейкоцитарных антигенов HLA: у молодых пациентов с тимуснезависимой миастенией (М) выявили высокую гетерогенность генотипических маркеров HLA-DR (DR1, DR2, DR3, DR5, DR7). Пациенты с тимусзависимой миастенией (МТ) имели только дипло- и гаплотипы HLA DR2 и HLA DR7. Наличие гаплотипов HLA DR2 и HLA DR7 у части молодых пациентов с М при прогрессировании заболевания приводило к развитию миастении на фоне тимомы (МТ) в старшем возрасте. Патогенетическая роль также принадлежит инфекции (СMV, EBV, HBV, HCV, HSV-1, HSV-2, HHV-6, микоплазма) и пищевой непереносимости (IgE и IgG4) в развитии и прогрессировании миастении. В качестве дополнительной мишени аутоагрессии при миастении выявили четырехкратное преобладание α7 субъединицы никотиновых ацетилхолиновых рецепторов в митохондриях клеток тимомы. Специфические антинуклеарные антитела к центромерам хромосом были визуализированы у пациентов старшей группы с миастенией на фоне тимомы.
Заключение. Прогноз прогрессирования миастении и развития ремиссии может быть осуществлен с помощью геномных (наличие определенных гаплотипов HLA-DR) и молекулярных (антитела ANA к центромерным белкам хромосом, экспрессия СD20+, CD14+CD11c+, CD14+HLA-DR+) биомаркеров, которые могут быть применены для выбора тактики лечения.

Ключевые слова: миастения, гиперплазия тимуса, тимома, антиядерные антитела, кластер дифференцировки
с. 426-433 оригинального издания
Список литературы
  1. Carr AS, Cardwell CR, McCarron PO, McConville J. A systematic review of population based epidemiological studies in Myasthenia Gravis. BMC Neurol. 2010 Jun 18;10:46. doi: 10.1186/1471-2377-10-46
  2. Phillips WD, Vincent A. Pathogenesis of myasthenia gravis: update on disease types, models, and mechanisms. F1000Res. 2016 Jun 27;5:F1000 Faculty Rev-1513. doi: 10.12688/f1000research.8206.1. eCollection
  3. Klimova EM, Minuchin DV, Drozdova LA, Lavinskaya EV, Kordon TI, Kalashnykova YV. Features of self-tolerance loss in patients with different clinical phenotypes of myasthenia. Regul Mech Biosyst. 2018;9(4):561-67. doi: 10.15421/021884
  4. Farmakidis C, Pasnoor M, Dimachkie MM, Barohn RJ. Treatment of Myasthenia Gravis. Neurol Clin. 2018 May;36(2):311-37. doi: 10.1016/j.ncl.2018.01.011
  5. Schreuder GM, Hurley CK, Marsh SG, Lau M, Fernandez-Vina M, Noreen HJ, Setterholm M, Maiers M. The HLA Dictionary 2004: a summary of HLA-A, -B, -C, -DRB1/3/4/5 and -DQB1 alleles and their association with serologically defined HLA-A, -B, -C, -DR and -DQ antigens. Int J Immunogenet. 2005 Feb;32(1):19-69. doi: 10.1111/j.1744-313X.2005.00497.x
  6. Gergalova GL, Lehmus OJ, Skok MV. Possible effect of activation of α7-nicotinic acetylcholine receptors in the mitochondrial membrane on the development of apoptosis. Neurophysiology. 2011;43(3):195-197. doi: 10.1007/s11062-011-9203-7
  7. Luider J, Cyfra M, Johnson P, Auer I. Impact of the new Beckman Coulter Cytomics FC 500 5-color flow cytometer on a regional flow cytometry clinical laboratory service. Lab Hematol. 2004;10(2):102-8. doi: 10.1532/LH96.04121
  8. Klimova EM, Lavinskaya EV, Minukhin DV, Syrovaya AO, Drozdova LA, Samoilova AP, Маkаrov VV, Маkаrov VA, Lukiyanova LV. On forming central and peripheral markers of self-tolerance loss in diverse clinical myasthenic phenotypes. Der Pharmacia Lettre. 2017;9(6):8-17. http://scholarsresearchlibrary.com/archive.html
  9. Hurst R, Rollema H, Bertrand D. Nicotinic acetylcholine receptors: from basic science to therapeutics. Pharmacol Ther. 2013 Jan;137(1):22-54. doi: 10.1016/j.pharmthera.2012.08.012
  10. Yi JS, Guptill JT, Stathopoulos P, Nowak RJ, O’Connor KC. B cells in the pathophysiology of myasthenia gravis. Muscle Nerve. 2018 Feb;57(2):172-84. doi: 10.1002/mus.25973
  11. Drutman SB, Kendall JC, Trombetta ES. Inflammatory spleen monocytes can upregulate CD11c expression without converting into dendritic cells. J Immunol. 2012 Apr 15;188(8):3603-10. doi: 10.4049/jimmunol.1102741
Адрес для корреспонденции:
61103, Украина,
г. Харьков, въезд Балакирева, 1,
Институт общей и неотложной хирургии
им. В.Т. Зайцева НАМН Украины,
диагностическая лаборатория,
тел.: +380 503 03 31 72,
e-mail: klimovalena53@gmail.com,
Климова Елена Михайловна
Cведения об авторах:
Климова Елена Михайловна, д.б.н., профессор, заведующая диагностической лабораторией с иммуноферментным и иммунофлуоресцентным анализом, Институт общей и неотложной хирургии им. В.Т. Зайцева НАМН Украины, г. Харьков, Украина.
https://orcid.org/0000-0002-4007-6806
Бойко Валерий Владимирович, член-корреспондент Национальной Академии медицинских наук Украины, д.м.н., профессор, директор, Институт общей и неотложной хирургии им. В.Т. Зайцева НАМН Украины, г. Харьков, Украина.
https://orcid.org/0000-0003-4771-9699
Дроздова Лариса Анатольевна, к.б.н., старший научный сотрудник диагностической лабораторией с иммуноферментным и иммунофлуоресцентным анализом, Институт общей и неотложной хирургии им. В.Т. Зайцева НАМН Украины, г. Харьков, Украина.
https://orcid.org/0000-0001-9678-4046
Лавинская Елена Владимировна, к.б.н., научный сотрудник диагностической лаборатории с иммуноферментным и иммунофлуоресцентным анализом, Институт общей и неотложной хирургии им. В.Т. Зайцева НАМН Украины», г. Харьков, Украина.
https://orcid.org/0000-0001-7320-0925
Минухин Дмитрий Валерьевич, к.м.н., доцент кафедры хирургии № 1 Харьковского национального медицинского университета, г. Харьков, Украина.
https://orcid.org/0000-0003-3371-1178
Кудревич Александр Николаевич, к.м.н., заведующий кафедрой хирургических болезней, оперативной хирургии и топографической анатомии, Харьковский национальный университет им. В.Н. Каразина, г. Харьков, Украина.
https://orcid.org/0000-0002-2086-8822
DOI: https://dx.doi.org/10.18484/2305-0047.2021.4.434   |  

В.В. БАЛИЦКИЙ 1, 2, М.П. ЗАХАРАШ 3, Е.Г. КУРИК 3, Ю.М. ЗАХАРАШ 3

ХИРУРГИЧЕСКОЕ ЛЕЧЕHИЕ СОЧЕТАHHОЙ ПАТОЛОГИИ АHАЛЬHОГО КАHАЛА И ПРЯМОЙ КИШКИ С ПРИМЕHЕHИЕМ СОВРЕМЕHHЫХ ТЕХHОЛОГИЙ

Винницкий национальный медицинский университет им. Н.И. Пирогова 1, г. Хмельницкий,
Хмельницкая областная больница 2, г. Хмельницкий,
Национальный медицинский университет им. А.А. Богомольца 3, г. Киев,
Украина

Цель. Оценить эффективность применения аппарата радиоволновой хирургии “Surgitron”, а также аппаратов высокочастотной электрохирургии “ERBE ICC 200”, “ЭФА”, “KLS Martin” в лечении пациентов ссочетанной патологией анального канала и прямой кишки.
Материал и методы. Проанализированы результаты лечения 635 пациентов с сочетанной патологией анального канала и прямой кишки. С использованием аппарата радиоволновой хирургии “Surgitron” было прооперировано 245 (38,6%) пациентов, аппарата высокочастотной электрохирургии “ERBE ICC 200” – 169 (26,6%) человек, аппарата высокочастотной электрохирургии “ЭФА” – 114 (17,9%) больных, аппарата высокочастотной электрохирургии “KLS Martin” – 107 (16,9%) пациентов.
После оперативных вмешательств для оценки эффективности применения вышеуказанных современных технологий пациентам проводилось морфологическое исследование тканей анального канала и прямой кишки с целью изучения глубины их некроза.
Результаты. В результате исследования было установлено, что применение аппарата радиоволновой хирургии “Surgitron”, а также высокочастотных электрохирургических аппаратов “ERBE ICC 200”, “ЭФА”, “KLS Martin” сокращает длительность операций до 15-30 мин, уменьшает объем кровопотери до 10-30 мл, потребность в наркотических анальгетиках – до 1-4 мл, сроки стационарного лечения – до 3-6 дней. Использование данных технологий предотвращало возникновение стриктур анального канала и рубцовых деформаций параректальных зон благодаря незначительной глубине некроза тканей, которая составляла от 0,037 до 0,453 мм, обеспечивая косметичность комбинированных операций.
Заключение. Применение аппарата радиоволновой хирургии “Surgitron”, а также высокочастотных электрохирургических аппаратов “ERBE ICC 200”, “ЭФА” и “KLS Martin” в лечении пациентов с сочетанной патологией анального канала и прямой кишки способствует сокращению длительности операций, уменьшению объёма интраоперационной кровопотери, а также интенсивности болевого синдрома в послеоперационном периоде. Использование этих современных технологий способствует формированию нежного эластичного рубца, обуславливая более быстрое заживление послеоперационных ран и улучшая сроки реабилитации пациентов.

Ключевые слова: сочетанная патология, анальный канал, прямая кишка, высокочастотные электрохирургические аппараты, аппарат радиоволновой хирургии
с. 434-444 оригинального издания
Список литературы
  1. Bach HH 4th, Wang N, Eberhardt JM. Common anorectal disorders for the intensive care physician. J Intensive Care Med. 2014 Nov-Dec;29(6):334-41. doi: 10.1177/0885066613485347
  2. Борота АВ, Кухто АП, Базиян-Кухто НК, Борота АА. Сравнительный анализ хирургического лечения сочетанной неопухолевой патологии анального канала и прямой кишки. Новообразование (Neoplasm). 2018;10(1):18-22. doi: 10.26435/neoplasm.v10i1.242
  3. Райымбеков ОР, Жолболдуев ЖМ, Айдаров УА. Современные взгляды на диагностику и лечение параректального свища в сочетании с хроническим геморроем. Колопроктология. 2017;(3s Прил):37-38. https://www.ruproctology.com/jour/article/view/1360?locale=ru_RU.
  4. Wald A, Bharucha AE, Cosman BC, Whitehead WE. ACG clinical guideline: management of benign anorectal disorders. Am J Gastroenterol. 2014 Aug;109(8):1141-57; (Quiz) 1058. doi: 10.1038/ajg.2014.190
  5. Rivadeneira DE, Steele SR, Ternent C, Chalasani S, Buie WD, Rafferty JL; Standards Practice Task Force of The American Society of Colon and Rectal Surgeons. Practice parameters for the management of hemorrhoids (revised 2010). Dis Colon Rectum. 2011 Sep;54(9):1059-64. doi: 10.1097/DCR.0b013e318225513d
  6. Xu L, Chen H, Lin G, Ge Q. Ligasure versus Ferguson hemorrhoidectomy in the treatment of hemorrhoids: a meta-analysis of randomized control trials. Surg Laparosc Endosc Percutan Tech. 2015 Apr;25(2):106-10. doi: 10.1097/SLE.0000000000000136
  7. Lohsiriwat V. Treatment of hemorrhoids: A coloproctologist’s view. World J Gastroenterol. 2015 Aug 21;21(31):9245-52. doi: 10.3748/wjg.v21.i31.9245
  8. Lohsiriwat V. Anorectal emergencies. World J Gastroenterol. 2016 Jul 14;22(26):5867-78. doi: 10.3748/wjg.v22.i26.5867
  9. Esfahani MN, Madani G, Madhkhan S. A novel method of anal fissure laser surgery: a pilot study. Lasers Med Sci. 2015 Aug;30(6):1711-17. doi: 10.1007/s10103-015-1771-0
  10. Schornagel IL, Witvliet M, Engel AF. Five-year results of fissurectomy for chronic anal fissure: low recurrence rate and minimal effect on continence. Colorectal Dis. 2012 Aug;14(8):997-1000. doi: 10.1111/j.1463-1318.2011.02840.x
Адрес для корреспонденции:
29000, Украина, г. Хмельницкий,
ул. Пилотская, д. 1,
Винницкий национальный медицинский
университет им. Н.И.Пирогова,
кафедра хирургии факультета
последипломного образования,
Хмельницкая областная больница,
тел. моб.: +38 097-235-96-85,
e-mail: v.balytskyy@ukr.net,
Балицкий Виталий Викторович
Cведения об авторах:
Балицкий Виталий Викторович, к.м.н., доцент кафедры хирургии факультета последипломного образования, Винницкий национальный медицинский университет им. Н.И. Пирогова, заведующий отделением проктологии, Хмельницкая областная больница, г. Хмельницкий, Украина.
http://orcid.org/0000-0003-1076-5237
Захараш Михаил Петрович, д.м.н., член-корреспондент НАМН Украины, профессор кафедры хирургии № 1, Национальный медицинский университет им. А.А. Богомольца, г. Киев, Украина.
http://orcid.org/0000-0003-4005-5172
Курык Елена Георгиевна, д.м.н., профессор кафедры патологической анатомии № 1, Национальный медицинский университет им. А.А.Богомольца, г. Киев, Украина.
https://orcid.org/0000-0003-3093-4325
Захараш Юрий Михайлович, д.м.н., профессор кафедры хирургии № 1, Национальный медицинский университет им. А.А.Богомольца, г. Киев, Украина.
https://orcid.org/0000-0003-3093-4325
DOI: https://dx.doi.org/10.18484/2305-0047.2021.4.445   |  

Н.И. ХРАМЦОВА, С.А. ПЛАКСИH, А.Ю. СОЦКОВ, Д.Н. ПОHОМАРЕВ

ХАРАКТЕРИСТИКА ЖИЗHЕСПОСОБHОСТИ КЛЕТОК ЛИПОГРАФТА ПРИ РАЗЛИЧHЫХ МЕТОДИКАХ ЕГО ПОЛУЧЕHИЯ И ПОДГОТОВКИ

Пермский государственный медицинский университет имени академика Е.А. Вагнера, г. Пермь,
Российская Федерация<

Цель. Определить предикторы выживаемости адипоцитов и фибробластоподобных клеток в липографте при различных методах липоаспирации и подготовки жировой ткани к аутотрансплантации.
Материал и методы. Жизнеспособность адипоцитов проанализирована в 57 образцах липографта, полученных при различных способах липоаспирации, анализ повреждения адипоцитов и фибробластоподобных клеток – в 73 мазках после пропускания жира через фильтры разного диаметра.
Результаты. Средняя жизнеспособность адипоцитов в необработанном липоаспирате составила 59%. При водоструйной методике она равнялась 65% (медиана 61%), шприцевой – 65% (медиана 74%), механической – 55% (медиана 44%), р=0,18. Количество жизнеспособных адипоцитов в зависимости от донорских участков: бедра – 76%, поясница – 67%, живот – 57%, ягодицы – 50%, плечи – 38%, колени – 35%. При использовании фильтра с диаметром ячеек 1,4 мм количество неповрежденных адипоцитов составило 62-68%, фибробластоподобных клеток – 24-28%. Число жизнеспособных клеток уменьшалось с каждым пассажем. После пассажей через фильтр с диаметром ячеек 1,2 мм количество неповрежденных адипоцитов составило 42-52%, фибробластоподобных клеток – 24-26%. Последние располагались среди волокон соединительной ткани. При пассажах через эмульсифицирующий фильтр количество неповрежденных клеток снизилось до 4-16% адипоцитов и 6-16% фибробластоподобных клеток с уменьшением содержания жизнеспособных клеток с увеличением числа пассажей. Определялись единичные остатки волокон соединительной ткани, большая часть мазка была представлена гомогенным жиром.
Заключение. Жизнеспособность адипоцитов выше при использовании шприцевой методики липоаспирации с забором с внутренней и наружной поверхностей бедер и поясницы. Для регенераторной цели предпочтительно применение эмульсифицированного жира, характеризующегося разрушением адипоцитов и устранением волокон соединительной ткани, сохранением неповрежденными до 16% фибробластоподобных клеток. Заполнение дефектов мягких тканей лучше проводить отмытым «макрожиром» без фильтрации либо с использованием клеточного фильтра с диаметром ячеек 1,4 мм. Для сочетания регенераторной и волюмизирующей целей целесообразно применение анаэробных клеточных фильтров.

Ключевые слова: регенеративная медицина, жировая ткань, мезенхимальные стромальные клетки, липографт, наножир, липосакция
с. 445-453 оригинального издания
Список литературы
  1. Coleman SR, Lam S, Cohen SR, Bohluli B, Nahai F. Fat Grafting: Challenges and Debates. Atlas Oral Maxillofac Surg Clin North Am. 2018 Mar;26(1):81-84. doi: 10.1016/j.cxom.2017.10.006
  2. Bellini Е, Grieco MP, Raposio E. The science behind autologous fat grafting. Ann Med Surg (Lond). 2017 Nov 10;24:65-73. doi: 10.1016/j.amsu.2017.11.001. eCollection 2017 Dec.
  3. Shridharani SM, Broyles JM, Matarasso A. Liposuction devices: technology update. Med Devices (Auckl). 2014 Jul 21;7:241-51. doi: 10.2147/MDER.S47322. eCollection 2014.
  4. Sasaki GH. Water-assisted liposuction for body contouring and lipoharvesting: safety and efficacy in 41 consecutive patients. Aesthet Surg J. 2011 Jan;31(1):76-88. doi: 10.1177/1090820X10391465
  5. Fontes T, Brandão I, Negrão R, Martins MJ, Monteiro R. Autologous fat grafting: Harvesting techniques. Ann Med Surg (Lond). 2018 Nov 13;36:212-18. doi: 10.1016/j.amsu.2018.11.005. eCollection 2018 Dec.
  6. Leong DT, Hutmacher DW, Chew FT, Lim TC. Viability and adipogenic potential of human adipose tissue processed cell population obtained from pump-assisted and syringe-assisted liposuction. J Dermatol Sci. 2005 Mar;37(3):169-76. doi: 10.1016/j.jdermsci.2004.11.009
  7. Kakagia D, Pallua N. Autologous fat grafting: in search of the optimal technique. Surg Innov. 2014 Jun;21(3):327-36. doi: 10.1177/1553350613518846
  8. Ozsoy Z, Kul Z, Bilir A. The role of cannula diameter in improved adipocyte viability: a quantitative analysis. Aesthet Surg J. 2006 May-Jun;26(3):287-89. doi: 10.1016/j.asj.2006.04.003
  9. Hamza A, Lohsiriwat V, Rietjens M. Lipofilling in breast cancer surgery. Gland Surg. 2013 Feb;2(1):7-14. doi: 10.3978/j.issn.2227-684X.2013.02.03
  10. Tonnard P, Verpaele A, Peeters G, Hamdi M, Cornelissen M, Declercq H. Nanofat grafting: basic research and clinical applications. Plast Reconstr Surg. 2013 Oct;132(4):1017-26. doi: 10.1097/PRS.0b013e31829fe1b0
  11. Osinga R, Menzi NR, Tchang LA, Caviezel D, Kalbermatten DF, Martin I, Schaefer DJ, Scherberich A, Largo RD. Effects of intersyringe processing on adipose tissue and its cellular components: implications in autologous fat grafting. Plast Reconstr Surg. 2015 Jun;135(6):1618-28. doi: 10.1097/PRS.0000000000001288
  12. Denu RA, Nemcek S, Bloom DD, Goodrich AD, Kim J, Mosher DF, Hematti P. Fibroblasts and Mesenchymal Stromal/Stem Cells Are Phenotypically Indistinguishable. Acta Haematol. 2016;136(2):85-97. doi: 10.1159/000445096
  13. Eto H, Kato H, Suga H, Aoi N, Doi K, Kuno S, Yoshimura K. The fate of adipocytes after nonvascularized fat grafting: evidence of early death and replacement of adipocytes. Plast Reconstr Surg. 2012 May;129(5):1081-92. doi: 10.1097/PRS.0b013e31824a2b19
  14. Crawford JL, Hubbard BA, Colbert SH, Puckett CL. Fine tuning lipoaspirate viability for fat grafting. Plast Reconstr Surg. 2010 Oct;126(4):1342-48. doi: 10.1097/PRS.0b013e3181ea44a9">10.1097/PRS.0b013e3181ea44a9
  15. Vasilyev V, Vasilyev S, Vazhenin A, Teryushkova Z, Vasilyev Y, Vasilyev I, Semyonova A, Dimov G, Lomakin E. Abstract: An Algorithm for Treatment of Radiation-Induced Soft Tissue Damage with Products Based on Autologous Adipose Tissue. Plast Reconstr Surg Glob Open. 2018 Sep;6(9 Suppl):155-56. doi: 10.1097/01.GOX.0000547029.33601.d4
  16. Yu Q, Cai Y, Huang H, Wang Z, Xu P, Wang X, Zhang L, Zhang W, Li W. Co-Transplantation of Nanofat Enhances Neovascularization and Fat Graft Survival in Nude Mice. Aesthet Surg J. 2018 May 15;38(6):667-75. doi: 10.1093/asj/sjx211
  17. Pallua N, Grasys J, Kim BS. Enhancement of progenitor cells by two-step centrifugation of emulsified lipoaspirates. Plast Reconstr Surg.2018 Jul;142(1):99-109. doi: 10.1097/PRS.0000000000004495
Адрес для корреспонденции:
614000, Российская Федерация,
г. Пермь, ул. Петропавловская, д. 26,
Пермский государственный медицинский
университет им. акад. Е.А. Вагнера,
деканат лечебного факультета,
тел. моб.: +7 909 107-12-34,
e-mail: renelve@gmail.com,
Храмцова Наталья Игоревна
Cведения об авторах:
Храмцова Наталья Игоревна, к.м.н., доцент кафедры госпитальной хирургии, Пермский государственный медицинский университет им. академика Е.А. Вагнера, г. Пермь, Российская Федерация.
http://orcid.org/0000-0001-6097-6855
Плаксин Сергей Александрович, д.м.н., профессор кафедры хирургии с курсом сердечно-сосудистой хирургии и инвазивной кардиологии, Пермский государственный медицинский университет им. академика Е.А. Вагнера, г. Пермь, Российская Федерация
http://orcid.org/0000-0001-8108-1655
Соцков Артем Юрьевич, студент, Пермский государственный медицинский университет им. академика Е.А. Вагнера, г. Пермь, Российская Федерация.
https://orcid.org/0000-0003-0225-2925
Пономарев Данил Николаевич, студент, Пермский государственный медицинский университет им. академика Е.А. Вагнера, г. Пермь, Российская Федерация.
https://orcid.org/0000-0001-5324-7515

ТРАВМАТОЛОГИЯ И ОРТОПЕДИЯ

DOI: https://dx.doi.org/10.18484/2305-0047.2021.4.454   |  

Т.А. СТУПИHА, Т.Н. ВАРСЕГОВА

ПАТОМОРФОЛОГИЧЕСКАЯ ХАРАКТЕРИСТИКА ЛАДОHHОГО АПОHЕВРОЗА У ПАЦИЕHТОВ С КОHТРАКТУРОЙ ДЮПЮИТРЕHА И ВИРУСHЫМ ГЕПАТИТОМ

Национальный медицинский исследовательский центр травматологии и ортопедии
им. акад. Г.А. Илизарова Минздрава России, г. Курган,
Российская Федерация

Цель. Выявить патоморфологические особенности ладонного апоневроза у пациентов с контрактурой Дюпюитрена и сопутствующим вирусным гепатитом B и С.
Материал и методы. Проведен анализ данных гистоморфометрических исследований операционного материала 122 пациентов с контрактурой Дюпюитрена (группа «Контроль», n=100) и с контрактурой Дюпюитрена и вирусными гепатитами В и С (группа «Гепатит», n=22).
Результаты. У пациентов группы «Гепатит» содержание жировой ткани в ладонном апоневрозе было на 40,9% меньше (p<0,01), чем в группе «Контроль», а содержание плотной соединительной ткани больше на 18,9% (p<0,05). У всех больных в ладонном апоневрозе преобладали артерии диаметром до 150 мкм, но в группе «Гепатит» их доля была снижена на 20% при более высоких долях сосудов диаметром 150-450 мкм и отсутствии либо перекалибровке наиболее крупных артерий. В группе «Контроль» артерии имели диаметры от 50 до 660 мкм, в группе «Гепатит» – не превышали 370 мкм. Сосуды диаметром менее 300 мкм в обеих группах имели сопоставимые значения индекса Керногана. Артерии диаметром более 300 мкм в группе «Гепатит» имели более высокие значения индекса Керногана, что свидетельствовало о снижении их пропускной способности по сравнению c сосудами в группе «Контроль». Большая часть нервных стволиков ладонного апоневроза пациентов группы «Гепатит» демонстрировали признаки некробиотических изменений: периневрий фиброзированный либо отечный, инфильтрированный клетками воспалительного ряда, иногда утративший ламеллярную структуру, нервные волокна с признаками валлеровской дегенерации.
Заключение. Полученные гистоморфометрические данные тканевого состава ладонного фасциального фиброматоза, меньшее содержание жировой и большее содержание плотной соединительной ткани, более выраженное нарушение гемодинамики и иннервации ладонного апоневроза в группе с сопутствующим вирусным гепатитом свидетельствуют о значимом влиянии патологии печени на прогрессирование заболевания.

Ключевые слова: контрактура Дюпюитрена, вирусный гепатит, ладонный апоневроз, тканевой состав, артерии, нервные волокна, патоморфология
с. 454-461 оригинального издания
Список литературы
  1. Grazina R, Teixeira S, Ramos R, Sousa H, Ferreira A, Lemos R. Dupuytren’s disease: where do we stand? EFORT Open Rev. 2019 Feb 20;4(2):63-69. doi: 10.1302/2058-5241.4.180021. eCollection 2019 Feb.
  2. Mathew S, Faheem M, Ibrahim SM, Iqbal W, Rauff B, Fatima K, Qadri I. Hepatitis C virus and neurological damage. World J Hepatol. 2016 Apr 28;8(12):545-56. doi: 10.4254/wjh.v8.i12.545
  3. Kleefeld F, Arendt G, Neuen-Jacob E, Maschke M, Husstedt I, Obermann M, Schmidt H, Hahn K; Deutsche Gesellschaft für Neuro-AIDS und Neuro-Infektiologie (DGNANI). Neurological complications of hepatitis C infections. Nervenarzt. 2020 Oct 1. doi: 10.1007/s00115-020-00999-6. Online ahead of print.
  4. Kleiner DE. The liver biopsy in chronic hepatitis C: a view from the other side of the microscope. Semin Liver Dis. 2005 Feb;25(1):52-64. doi: 10.1055/s-2005-864781
  5. Broekstra DC, Groen H, Molenkamp S, Werker PMN, van den Heuvel ER. A systematic review and meta-analysis on the strength and consistency of the associations between dupuytren disease and diabetes mellitus, liver disease, and epilepsy. Plast Reconstr Surg. 2018 Mar;141(3):367e-79e. doi: 10.1097/PRS.0000000000004120
  6. Щудло НА, Щудло ММ, Ступина ТА, Варсегова ТН, Мигалкин НС, Шихалева НГ, Костин ВВ. Патоморфологические особенности контрактуры Дюпюитрена у пациента с болезнью печени (случай из практики). Гений Ортопедии. 2019;25(4):576-79. doi: 10.18019/1028-4427-2019-25-4-576-579
  7. Lam WL, Rawlins JM, Karoo RO, Naylor I, Sharpe DT. Re-visiting Luck’s classification: a histological analysis of Dupuytren’s disease. J Hand Surg Eur Vol. 2010 May;35(4):312-7. doi: 10.1177/1753193410362848
  8. Musumeci M, Vadalà G, Russo F, Pelacchi F, Lanotte A, Denaro V. Dupuytren’s disease therapy: targeting the vicious cycle of myofibroblasts? Expert Opin Ther Targets. 2015;19(12):1677-87. doi: 10.1517/14728222.2015.1068758
  9. Wade R, Igali L, Figus A. Skin involvement in Dupuytren’s disease. J Hand Surg Eur Vol. 2016 Jul;41(6):600-8. doi: 10.1177/1753193415601353
  10. van Beuge MM, ten Dam E-JPM, Werker PMN, Bank RA. Matrix and cell phenotype differences in Dupuytren’s disease. Fibrogenesis Tissue Repair. 2016;Jun29;9:9. doi: 10.1186/s13069-016-0046-0
  11. Satish L, Gallo PH, Baratz ME, Johnson S, Kathju S. Reversal of TGF-β1 stimulation of α-smooth muscle actin and extracellular matrix components by cyclic AMP in Dupuytren’s-derived fibroblasts. BMC Musculoskelet Disord. 2011;12:113. doi: 10.1186/1471-2474-12-113
  12. Jakubzick C, Kunkel SL, Puri RK, Hogaboam CM. Therapeutic targeting of IL-4-and IL-13-responsive cells in pulmonary fibrosis. Immunol Res. 2004;30(3):339-49. doi: 10.1385/IR:30:3:339
  13. Долганова ТИ, Щудло НА, Шабалин ДА, Костин ВВ. Оценка гемодинамики артерий кисти и микроциркуляции кожи при контрактуре Дюпюитрена 3-4 стадий до и после оперативного лечения с применением чрескостной фиксации по Г.А. Илизарову. Гений Ортопедии. 2019;25(1):86-92. doi: 10.18019/1028-4427-2019-25-1-86-92
  14. Gerosa T, Pierrart J, Serane-Fresnel J, Amsallem L, Masmejean EH. Distal sensory disorders in Dupuytren’s disease. Orthop Traumatol Surg Res. 2018 Oct;104(6):897-900. doi: 10.1016/j.otsr.2018.06.004
  15. Stecco C, Macchi V, Barbieri A, Tiengo C, Porzionato A, De Caro R. Hand fasciae innervation: The palmar aponeurosis. Clin Anat. 2018 Jul;31(5):677-83. doi: 10.1002/ca.23076
Адрес для корреспонденции:
640014, Российская Федерация,
г. Курган, ул. М. Ульяновой, д. 6,
Национальный медицинский
исследовательский центр травматологии
и ортопедии им. акад. Г.А. Илизарова,
тел. +7 905 850-67-89,
e-mail: StupinaSTA@mail.ru,
Ступина Татьяна Анатольевна
Cведения об авторах:
Ступина Татьяна Анатольевна, д.б.н., ведущий научный сотрудник лаборатории морфологии, Национальный медицинский исследовательский центр травматологии и ортопедии имени академика Г.А. Илизарова Минздрава России, г. Курган, Российская Федерация.
https://orcid.org/0000-0003-3434-0372.
Варсегова Татьяна Николаевна, к.б.н., старший научный сотрудник лаборатории морфологии, Национальный медицинский исследовательский центр травматологии и ортопедии имени академика Г.А. Илизарова Минздрава России, г. Курган, Российская Федерация.
https://orcid.org/0000-0001-5430-2045

АHЕСТЕЗИОЛОГИЯ-РЕАHИМАТОЛОГИЯ

DOI: https://dx.doi.org/10.18484/2305-0047.2021.4.462   |  

А.В. МАРОЧКОВ 1, 2, А.Л. ЛИПHИЦКИЙ 1, 2, И.А. КУПРЕЕВА 1, О.В. ДОЗОРЦЕВА 1

ПОКАЗАТЕЛИ КОАГУЛЯЦИОHHОГО РАВHОВЕСИЯ И АГРЕГАЦИИ ТРОМБОЦИТОВ У ПАЦИЕHТОВ С ИHФЕКЦИЕЙ COVID-19

Могилёвская областная клиническая больница 1, г. Могилёв,
Витебский государственный медицинский университет 2, г. Витебск,
Республика Беларусь

Цель. Определить изменения показателей коагуляционного равновесия и агрегации тромбоцитов у пациентов при лечении инфекции COVID-19.
Материал и методы. Проведено пилотное нерандомизированное проспективное клиническое исследование коагуляционного равновесия и агрегации тромбоцитов у пациентов, которые поступали в отделения анестезиологии и реанимации с острым респираторным дистресс-синдромом с диагнозом COVID-19 (n=50). Из 50 пациентов 19 пациентов умерло, 31 пациент был переведен в терапевтические отделения. Исследование показателей коагуляционного равновесия и агрегации тромбоцитов проводилось однократно в 1-3 сутки от поступления пациента в стационар на анализаторе гемостаза ACL 10000 (Instrumentation Laboratory, США) и анализаторе агрегации тромбоцитов АР 2110 (ЗАО «СОЛАР», Республика Беларусь).
Результаты. У 45 (90%) пациентов с COVID-19 отмечалось существенное повышение активности фактора Виллебранда – 350 (244,5%; 480%). Статистически достоверных отличий в уровне активности фактора Виллебранда среди умерших и выживших выявлено не было: 450,0% (338,8%; 530,5%) у умерших пациентов и 342,0% (188,8%; 480,0%) у выживших. При уровне активности фактора Виллебранда до 250% летальность составила 8,3%, при уровне 250-400% ‒– 31,3%, при уровне более 400% ‒– 59,1%. Существенно выше нормальных значений у большинства пациентов были фибриноген (выше нормы у 68% пациентов, 4,63 (3,49; 5,87) г/л) и D-димеры (выше нормы у 88% пациентов, 0,73 (0,31; 1,4) мкг/мл). Антитромбин III был ниже нормы у 56% пациентов (82% (67,1%; 97,2%)). Степень агрегации тромбоцитов имела сильную прямую корреляцию с уровнем фактора Виллебранда: с индуктором АДФ 0,3 мкг/мл (R=0,71, р=0,003); АДФ 0,6 мкг/мл (R=0,74, р=0,0001); АДФ 1,25 мкг/мл (R=0,53, р=0,01).
Заключение. Анализ и оценка показателей коагуляционного равновесия и агрегации тромбоцитов должны быть неотъемлемыми компонентами при лечении пациентов с инфекцией COVID-19.

Ключевые слова: COVID-19, агрегация тромбоцитов, фактор Виллебранда, D-димеры, фибриноген, тромбоциты
с. 462-469 оригинального издания
Список литературы
  1. Panigada M, Bottino N, Tagliabue P, Grasselli G, Novembrino C, Chantarangkul V, Pesenti A, Peyvandi F, Tripodi A. Hypercoagulability of COVID-19 patients in intensive care unit: A report of thromboelastography findings and other parameters of hemostasis. J Thromb Haemost. 2020 Jul;18(7):1738-42. doi: 10.1111/jth.14850
  2. Escher R, Breakey N, Lämmle B. Severe COVID-19 infection associated with endothelial activation. Thromb Res. 2020 Jun;190:62. doi: 10.1016/j.thromres.2020.04.014
  3. Carsana L, Sonzogni A, Nasr A, Rossi RS, Pellegrinelli A, Zerbi P, Rech R, Colombo R, Antinori S, Corbellino M, Galli M, Catena E, Tosoni A, Gianatti A, Nebuloni M. Pulmonary post-mortem findings in a large series of COVID-19 cases from northern Italy [Internet]. Published online 2020 Apr 22. doi: 10.1101/2020.04.19.20054262
  4. Iba T, Levy JH, Connors JM, Warkentin TE, Thachil J, Levi M. The unique characteristics of COVID-19 coagulopathy. Crit Care. 2020 Jun 18;24(1):360. doi: 10.1186/s13054-020-03077-0
  5. COVID-19 Treatment Guidelines Panel. Coronavirus Disease 2019 (COVID-19). Treatment Guidelines [Electronic resource]. National Institutes of Health; 2020. Available from: https://www.covid19treatmentguidelines.nih.gov/
  6. Iba T, Levy JH, Connors JM, Warkentin TE, Thachil J, Levi M. The unique characteristics of COVID-19 coagulopathy. Crit Care. 2020 Jun 18;24(1):360. doi: 10.1186/s13054-020-03077-0
  7. Iba T, Levy JH, Levi M, Thachil J. Coagulopathy in COVID-19. J Thromb Haemost. 2020 Sep;18(9):2103-09. doi: 10.1111/jth.14975
  8. Zhang L, Yan X, Fan Q, Liu H, Liu X, Liu Z, Zhang Z. D-dimer levels on admission to predict in-hospital mortality in patients with Covid-19. J Thromb Haemost. 2020 Jun;18(6):1324-29. doi: 10.1111/jth.14859
  9. Koupenova M. Potential role of platelets in COVID-19: Implications for thrombosis. Res Pract Thromb Haemost. 2020 Jun 21;4(5):737-40. doi: 10.1002/rth2.12397. eCollection 2020 Jul.
  10. Yang X, Yang Q, Wang Y, Wu Y, Xu J, Yu Y, Shang Y. Thrombocytopenia and its association with mortality in patients with COVID-19. J Thromb Haemost. 2020 Jun;18(6):1469-72. doi: 10.1111/jth.14848
  11. Зубовская ЕТ, Юркевич ТЮ, Митрошенко ИВ, Демидова РН. Тромбоцитарная агрегатометрия в клинической практике: пособие для врачей. Минск, РБ: ПроняПлюс; 2018. 67 с.
  12. Marini JJ, Gattinoni L. Management of COVID-19 Respiratory Distress. JAMA. 2020 Jun 9;323(22):2329-30. doi: 10.1001/jama.2020.6825
  13. Pitchford S, Pan D, Welch HC. Platelets in neutrophil recruitment to sites of inflammation. Curr Opin Hematol. 2017 Jan;24(1):23-31. doi: 10.1097/MOH.0000000000000297
  14. Ware LB, Conner ER, Matthay MA. von Willebrand factor antigen is an independent marker of poor outcome in patients with early acute lung injury. Crit Care Med. 2001 Dec;29(12):2325-31. doi: 10.1097/00003246-200112000-00016
Адрес для корреспонденции:
212016, Республика Беларусь,
г. Могилёв, ул. Белыницкого-Бирули, д. 12,
Могилёвская областная клиническая больница, отделение по координации забора органов
и тканей для трансплантации,
тел.: +375 222 62-75-95,
e-mail: Lipnitski.al@gmail.com,
Липницкий Артур Леонидович
Cведения об авторах:
Марочков Алексей Викторович, д.м.н., профессор, врач – анестезиолог-реаниматолог отделения анестезиологии и реанимации, Могилёвская областная клиническая больница, филиал кафедр анестезиологии и реаниматологии с курсом ФПК и ПК и хирургии ФПК и ПК, Витебский государственный медицинский университет, г. Могилев, Республика Беларусь.
https://orcid.org/0000-0001-5092-8315
Липницкий Артур Леонидович, к.м.н., врач – анестезиолог-реаниматолог, заведующий отделением по координации забора органов и тканей для трансплантации, Могилёвская областная клиническая больница, филиал кафедр анестезиологии и реаниматологии с курсом ФПК и ПК и хирургии ФПК и ПК, Витебский государственный медицинский университет, г. Могилев, Республика Беларусь.
https://orcid.org/0000-0002-2556-4801
Купреева Ирина Алексеевна, заведующая централизованной лабораторией клинической биохимии, Могилёвская областная клиническая больница, г. Могилев, Республика Беларусь.
https://orcid.org/0000-0002-5745-1203
Дозорцева Ольга Владимировна, врач лабораторной диагностики централизованной лаборатории клинической биохимии, Могилёвская областная клиническая больница, г. Могилев, Республика Беларусь.
https://orcid.org/0000-0001-9258-4514

ОБЗОРЫ

DOI: https://dx.doi.org/10.18484/2305-0047.2021.4.470   |  

О.Л. ЭЙСМОHТ

АДГЕЗИВHЫЙ КАПСУЛИТ ПЛЕЧЕВОГО СУСТАВА

Республиканский научно-практический центр травматологии и ортопедии, г. Минск,
Республика Беларусь

В статье представлен современный взгляд на этиологию и патогенез адгезивного капсулита плечевого сустава, изложены основные принципы консервативного и хирургического лечения. Идиопатический адгезивный капсулит плечевого сустава – это саморазрешающееся заболевание с постепенным улучшением симптомов, в ряде случаев приводящее к необходимости хирургического лечения. В настоящее время общепризнана роль как воспалительного, так и фибротизирующего процесса в патогенезе адгезивного капсулита, причем воспалительный процесс в конечном итоге приводит к фиброзным изменениям. Заболевание ассоциировано с сахарным диабетом, заболеваниями щитовидной железы, цереброваскулярными заболеваниями, ишемической болезнью сердца, аутоиммунными заболеваниями и контрактурой Дюпюитрена. В литературе нет единого мнения о виде лечения адгезивного капсулита: консервативном, оперативном или комбинированном. У ряда пациентов улучшение достигается самопроизвольно, рекомендуемые методы лечения варьируют от динамического наблюдения до инвазивной открытой капсулотомии. Универсального алгоритма лечения не существует, поэтому лечение должно быть индивидуальным. По общему мнению, консервативное лечение является первым методом выбора при адгезивном капсулите и включает в себя лечебную физкультуру в комбинации с физиотерапией, противовоспалительными препаратами, инъекцией кортикостероидов и гидродилатацией. Хирургическое лечение адгезивного капсулита показано пациентам с наличием стойкой симптоматики заболевания при неэффективности консервативного лечения. Оперативное лечение включает в себя манипуляцию (редрессацию) под наркозом и/или капсулотомию плечевого сустава (артроскопическую или открытую). Лечение адгезивного капсулита плечевого сустава остается не до конца решенной клинической проблемой. Существующие схемы лечения не являются универсальными и требуются дальнейшие исследования с целью разработки более эффективной стратегии лечения заболевания.

Ключевые слова: адгезивный капсулит, плечевой сустав, артрофиброз, плечелопаточный периартрит, капсулотомия
с. 470-479 оригинального издания
Список литературы
  1. Neviaser AS, Neviaser RJ. Adhesive capsulitis of the shoulder. J Am Acad Orthop Surg. 2011 Sep;19(9):536-42. doi: 10.5435/00124635-201109000-00004
  2. D’Orsi GM, Via AG, Frizziero A, Oliva F. Treatment of adhesive capsulitis: a review. Muscles Ligaments Tendons J. 2012 Sep 10;2(2):70-78. https://www.ncbi.nlm.nih.gov/pmc/articles/PMC3666515/
  3. Khazzam M. Uncovering the Mystery of Idiopathic Adhesive Capsulitis Commentary on an article by Hyung Bin Park, MD, PhD, et al.: “Association Between High-Sensitivity C-Reactive Protein and Idiopathic Adhesive Capsulitis”. J Bone Joint Surg. 2020;102(9):e40. doi: 10.2106/JBJS.20.00170
  4. Neviaser JS. Adhesive capsulitis of the shoulder: a study of the pathological findings in periarthritis of the shoulder. J Bone Joint Surg. 1945;27(2):211-22.
  5. Bailie DS, Llinas PJ, Ellenbecker TS. Cementless humeral resurfacing arthroplasty in active patients less than fifty-five years of age. J Bone Joint Surg Am. 2008 Jan;90(1):110-17. doi: 10.2106/JBJS.F.01552
  6. Jump CM, Duke K, Malik RA, Charalambous CP. Frozen Shoulder: A Systematic Review of Cellular, Molecular, and Metabolic Findings. JBJS Rev. 2021 Jan 26;9(1):e19.00153. doi: 10.2106/JBJS.RVW.19.00153
  7. Tucker A, Hiscox C, Bicknel RT. A randomized controlled trial comparing arthrographic joint injection with and without steroids for the treatment of adhesive capsulitis. J Shoulder Elbow Surg. 2017;26(5):e148–e49. doi: 10.1016/j.jse.2016.12.009
  8. Park HB, Gwark JY, Jung J, Jeong ST. Association Between High-Sensitivity C-Reactive Protein and Idiopathic Adhesive Capsulitis. J Bone Joint Surg Am. 2020 May 6;102(9):761-68. doi: 10.2106/JBJS.19.00759
  9. Park HB, Gwark JY, Jung J. What Serum Lipid Abnormalities Are Associated with Adhesive Capsulitis Accompanied by Diabetes? Clin Orthop Relat Res. 2018 Nov;476(11):2231-37. doi: 10.1097/CORR.0000000000000443
  10. Yip M, Francis AM, Roberts T, Rokito A, Zuckerman JD, Virk MS. Treatment of Adhesive Capsulitis of the Shoulder: A Critical Analysis Review. JBJS Rev. 2018 Jun;6(6):e5. doi: 10.2106/JBJS.RVW.17.00165
  11. Dang V, Beardsley E. Nonclassic etiologies of Shoulder impingement syndrome. J Bone Joint Surg. 2020;8(2):e0037. doi: 10.2106/JBJS.JOPA.19.00037
  12. Barreto RPG, Braman JP, Ludewig PM, Ribeiro LP, Camargo PR. Bilateral magnetic resonance imaging findings in individuals with unilateral shoulder pain. J Shoulder Elbow Surg. 2019 Sep;28(9):1699-06. doi: 10.1016/j.jse.2019.04.001
  13. Sasanuma H, Sugimoto H, Fujita A, Kanaya Y, Iijima Y, Saito T, Takeshita K. Characteristics of dynamic magnetic resonance imaging of idiopathic severe frozen shoulder. J Shoulder Elbow Surg. 2017 Feb;26(2):e52-e57. doi: 10.1016/j.jse.2016.06.003
  14. Kim K, Hwang HJ, Kim SG, Lee JH, Jeong WK. Can Shoulder Muscle Activity Be Evaluated With Ultrasound Shear Wave Elastography? Clin Orthop Relat Res. 2018 Jun;476(6):1276-83. doi: 10.1097/01.blo.0000533628.06091.0a
  15. Sheridan MA, Hannafin JA. Upper extremity: emphasis on frozen shoulder. Orthop Clin North Am. 2006 Oct;37(4):531-39. doi: 10.1016/j.ocl.2006.09.009
  16. Griggs SM, Ahn A, Green A. Idiopathic adhesive capsulitis. A prospective functional outcome study of nonoperative treatment. J Bone Joint Surg Am. 2000 Oct;82(10):1398-407. doi: 10.2106/00004623-200010000-00005
  17. Prodromidis AD, Charalambous CP. Is there a genetic predisposition to frozen shoulder? A systematic review and meta-analysis. JBJS Rev. 2016 Feb 23;4(2):01874474-201602000-00004. doi: 10.2106/JBJS.RVW.O.00007
  18. Harris JD, Griesser MJ, Copelan A, Jones GL. Treatment of adhesive capsulitis with intra-articular hyaluronate: A systematic review. Int J Shoulder Surg. 2011 Apr;5(2):31-37. doi: 10.4103/0973-6042.83194
  19. Arkkila PE, Kantola IM, Viikari JS, Rönnemaa T. Shoulder capsulitis in type I and II diabetic patients: association with diabetic complications and related diseases. Ann Rheum Dis. 1996 Dec;55(12):907-14. doi: 10.1136/ard.55.12.907
  20. Huang SW, Lin JW, Wang WT, Wu CW, Liou TH, Lin HW. Hyperthyroidism is a risk factor for developing adhesive capsulitis of the shoulder: a nationwide longitudinal population-based study. Sci Rep. 2014 Feb 25;4:4183. doi: 10.1038/srep04183
  21. Bruckner FE, Nye CJ. A prospective study of adhesive capsulitis of the shoulder (“frozen shoulder’) in a high risk population. Q J Med. 1981 Spring;50(198):191-204. doi: 10.1093/oxfordjournals.qjmed.a067680
  22. Neviaser RJ, Neviaser TJ. The frozen shoulder. Diagnosis and management. Clin Orthop Relat Res. 1987 Oct;(223):59-64. doi: 10.1097/00003086-198710000-00008
  23. Bunker TD, Anthony PP. The pathology of frozen shoulder. A Dupuytren-like disease. J Bone Joint Surg Br. 1995 Sep;77(5):677-83. doi: 10.1302/0301-620x.77b5.7559688
  24. Lubis AM, Lubis VK. Matrix metalloproteinase, tissue inhibitor of metalloproteinase and transforming growth factor-beta 1 in frozen shoulder, and their changes as response to intensive stretching and supervised neglect exercise. J Orthop Sci. 2013 Jul;18(4):519-27. doi: 10.1007/s00776-013-0387-0
  25. Ibrahim IO, Nazarian A, Rodriguez EK. Clinical management of arthrofibrosis: state of the art and therapeutic outlook. JBJS Rev. 2020 Jul;8(7):e1900223. doi: 10.2106/JBJS.RVW.19.00223
  26. Park HB, Gwark JY, Jung J. What Serum Lipid Abnormalities Are Associated with Adhesive Capsulitis Accompanied by Diabetes? Clin Orthop Relat Res. 2018 Nov;476(11):2231-37. doi: 10.1097/CORR.0000000000000443
  27. Kim YS, Kim JM, Lee YG, Hong OK, Kwon HS, Ji JH. Intercellular adhesion molecule-1 (ICAM-1, CD54) is increased in adhesive capsulitis. J Bone Joint Surg Am. 2013 Feb 20;95(4):e181-88. doi: 10.2106/JBJS.K.00525
  28. Russell S, Jariwala A, Conlon R, Selfe J, Richards J, Walton M. A blinded, randomized, controlled trial assessing conservative management strategies for frozen shoulder. J Shoulder Elbow Surg. 2014 Apr;23(4):500-7. doi: 10.1016/j.jse.2013.12.026
  29. Diercks RL, Stevens M. Gentle thawing of the frozen shoulder: a prospective study of supervised neglect versus intensive physical therapy in seventy-seven patients with frozen shoulder syndrome followed up for two years. J Shoulder Elbow Surg. 2004 Sep-Oct;13(5):499-502. doi: 10.1016/j.jse.2004.03.002
  30. Vermeulen HM, Rozing PM, Obermann WR, le Cessie S, Vliet Vlieland TP. Comparison of high-grade and low-grade mobilization techniques in the management of adhesive capsulitis of the shoulder: randomized controlled trial. Phys Ther. 2006 Mar;86(3):355-68. doi: 10.1093/PTJ/86.3.355
  31. Tanaka K, Saura R, Takahashi N, Hiura Y, Hashimoto R. Joint mobilization versus self-exercises for limited glenohumeral joint mobility: randomized controlled study of management of rehabilitation. Clin Rheumatol. 2010 Dec;29(12):1439-44. doi: 10.1007/s10067-010-1525-0
  32. Mohamadi A, Chan JJ, Claessen FM, Ring D, Chen NC. Corticosteroid Injections Give Small and Transient Pain Relief in Rotator Cuff Tendinosis: A Meta-analysis. Clin Orthop Relat Res. 2017 Jan;475(1):232-43. doi: 10.1007/s11999-016-5002-1
  33. Buchbinder R, Hoving JL, Green S, Hall S, Forbes A, Nash P. Short course prednisolone for adhesive capsulitis (frozen shoulder or stiff painful shoulder): a randomised, double blind, placebo controlled trial. Ann Rheum Dis. 2004 Nov;63(11):1460-69. doi: 10.1136/ard.2003.018218
  34. Lorbach O, Anagnostakos K, Scherf C, Seil R, Kohn D, Pape D. Nonoperative management of adhesive capsulitis of the shoulder: oral cortisone application versus intra-articular cortisone injections. J Shoulder Elbow Surg. 2010 Mar;19(2):172-79. doi: 10.1016/j.jse.2009.06.013
  35. Hettrich CM, DiCarlo EF, Faryniarz D, Vadasdi KB, Williams R, Hannafin JA. The effect of myofibroblasts and corticosteroid injections in adhesive capsulitis. J Shoulder Elbow Surg. 2016 Aug;25(8):1274-79. doi: 10.1016/j.jse.2016.01.012
  36. Bulgen DY, Binder AI, Hazleman BL, Dutton J, Roberts S. Frozen shoulder: prospective clinical study with an evaluation of three treatment regimens. Ann Rheum Dis. 1984 Jun;43(3):353-60. doi: 10.1136/ard.43.3.353
  37. Iwata H. Pharmacologic and clinical aspects of intraarticular injection of hyaluronate. Clin Orthop Relat Res. 1993 Apr;(289):285-91. doi: 10.1097/00003086-199304000-00042
  38. Tamai K, Mashitori H, Ohno W, Hamada J, Sakai H, Saotome K. Synovial response to intraarticular injections of hyaluronate in frozen shoulder: a quantitative assessment with dynamic magnetic resonance imaging. J Orthop Sci. 2004;9(3):230-34. doi: 10.1007/s00776-004-0766-7
  39. Rovetta G, Monteforte P. Intraarticular injection of sodium hyaluronate plus steroid versus steroid in adhesive capsulitis of the shoulder. Int J Tissue React. 1998;20(4):125-30.
  40. Ozkan K, Ozcekic AN, Sarar S, Cift H, Ozkan FU, Unay K. Suprascapular nerve block for the treatment of frozen shoulder. Saudi J Anaesth. 2012 Jan;6(1):52-55. doi: 10.4103/1658-354X.93061
  41. Karataş GK, Meray J. Suprascapular nerve block for pain relief in adhesive capsulitis: comparison of 2 different techniques. Arch Phys Med Rehabil. 2002 May;83(5):593-97. doi: 10.1053/apmr.2002.32472
  42. Gallacher S, Beazley JC, Evans J, Anaspure R, Silver D, Redfern A, Thomas W, Kitson J, Smith C. A randomized controlled trial of arthroscopic capsular release versus hydrodilatation in the treatment of primary frozen shoulder. J Shoulder Elbow Surg. 2018 Aug;27(8):1401-06. doi: 10.1016/j.jse.2018.04.002
  43. Quraishi NA, Johnston P, Bayer J, Crowe M, Chakrabarti AJ. Thawing the frozen shoulder. A randomised trial comparing manipulation under anaesthesia with hydrodilatation. J Bone Joint Surg Br. 2007 Sep;89(9):1197-200. doi: 10.1302/0301-620X.89B9.18863
  44. Ma SY, Je HD, Jeong JH, Kim HY, Kim HD. Effects of whole-bodycryotherapy in the management of adhesive capsulitis of the shoulder. Arch Phys Med Rehabil. 2013 Jan;94(1):9-16. doi: 10.1016/j.apmr.2012.07.013
  45. Melzer C, Wallny T, Wirth CJ, Hoffmann S. Frozen shoulder--treatment and results. Arch Orthop Trauma Surg. 1995;114(2):87-91. doi: 10.1007/BF00422832
  46. Karas V, Riboh JC, Garrigues GE. Arthroscopic Management of the Stiff Shoulder. JBJS Rev. 2016 Apr 5;4(4):e21-27. doi: 10.2106/JBJS.RVW.O.00047
  47. Kim YS, Lee HJ. Essential Surgical Technique for Arthroscopic Capsular Release in the Treatment of Shoulder Stiffness. JBJS Essent Surg Tech. 2015 Jul 22;5(3):e14. doi: 10.2106/JBJS.ST.N.00102. eCollection 2015 Sep 23.
  48. Snow M, Boutros I, Funk L. Posterior arthroscopic capsular release in frozen shoulder. Arthroscopy. 2009 Jan;25(1):19-23. doi: 10.1016/j.arthro.2008.08.006
  49. Smith CD, Hamer P, Bunker TD. Arthroscopic capsular release for idiopathic frozen shoulder with intra-articular injection and a controlled manipulation. Ann R Coll Surg Engl. 2014 Jan;96(1):55-60. doi: 10.1308/003588414X13824511650452
  50. Mubark IM, Ragab AH, Nagi AA, Motawea BA. Evaluation of the results of management of frozen shoulder using the arthroscopic capsular release. Ortop Traumatol Rehabil. 2015 Jan-Feb;17(1):21-28. doi: 10.5604/15093492.1143530
  51. Barnes CP, Lam PH, Murrell GA. Short-term outcomes after arthroscopic capsular release for adhesive capsulitis. J Shoulder Elbow Surg. 2016 Sep;25(9):e256-64. doi: 10.1016/j.jse.2015.12.025
  52. Ibrahim IO, Nazarian A, Rodriguez EK. Clinical Management of Arthrofibrosis: State of the Art and Therapeutic Outlook. JBJS Rev. 2020 Jul;8(7):e1900223. doi: 10.2106/JBJS.RVW.19.00223
Адрес для корреспонденции:
220024, Республика Беларусь,
г. Минск, ул. Лейтенанта
Кижеватова, д. 60, корп. 4,
Республиканский научно-практический
центр травматологии и ортопедии,
тел. моб.: +375 29 6787904,
e-mail: oleismont@tut.by,
Эйсмонт Олег Леонидович
Cведения об авторах:
Эйсмонт Олег Леонидович, д.м.н., доцент, заместитель директора по научной работе Республиканского научно-практического центра травматологии и ортопедии, г. Минск, Республика Беларусь.
http://orcid.org/0000-0002-1002-4132
DOI: https://dx.doi.org/10.18484/2305-0047.2021.4.480   |  

Р.И. ДОВHАР

МОДЕЛИРОВАHИЕ КОЖHЫХ РАH В ЭКСПЕРИМЕHТЕ

Гродненский государственный медицинский университет, г. Гродно,
Республика Беларусь

Создание и внедрение новых способов и средств местного лечения ран происходит поэтапно: исследования in vitro, in vivo и проведение клинических испытаний. Основополагающим моментом этого процесса является изучение влияния предлагаемого средства на заживление экспериментальной раны у лабораторного животного ввиду наличия единых фаз течения раневого процесса с человеком и схожести самого механизма заживления. К главным проблемам, с которыми сталкивается исследователь на первоначальном этапе, относятся подбор оптимального вида экспериментального животного и необходимой модели кожной раны. Отсутствие компоновки в единых литературных источниках и разрозненность имеющейся информации приводит к тому, что во время отработки эксперимента ученые затрачивают время, ресурсы и оперируют дополнительное количество животных. В данной статье обобщены литературные данные по применяемым методам моделирования как наиболее распространенных, так и редких видов кожных ран, включая ожоги и трофические язвы, у различных лабораторных животных. Показаны особенности создания таких ран, нюансы, на которые следует обращать внимание, и отработанные техники их создания у различных видов. Описаны варианты течения и показаны перспективы развития данного направления хирургии.

Ключевые слова: животные, модели заболеваний, лечение раны, повреждения кожи, ожоги, лаборатория, язва
с. 480-489 оригинального издания
Список литературы
  1. Singh S, Young A, McNaught CE. The physiology of wound healing. Surgery. 2017;35(9):473-77. doi: 10.1016/j.mpsur.2017.06.004
  2. Eming SA, Martin P, Tomic-Canic M. Wound repair and regeneration: mechanisms, signaling, and translation. Sci Transl Med. 2014 Dec 3;6(265):265sr6. doi: 10.1126/scitranslmed.3009337
  3. Ansell DM, Holden KA, Hardman MJ. Animal models of wound repair: Are they cutting it? Exp Dermatol. 2012 Aug;21(8):581-85. doi: 10.1111/j.1600-0625.2012.01540.x
  4. Nunan R, Harding KG, Martin P. Clinical challenges of chronic wounds: searching for an optimal animal model to recapitulate their complexity. Dis Model Mech. 2014 Nov;7(11):1205-13. doi: 10.1242/dmm.016782
  5. Spear M. Acute or chronic? What’s the difference? Plast Surg Nurs. 2013 Apr-Jun;33(2):98-100. doi: 10.1097/PSN.0b013e3182965e94
  6. Davidson JM. Animal models for wound repair. Arch Dermatol Res. 1998 Jul;290(Suppl):S1-11. doi: 10.1007/PL00007448
  7. Shrivastav A, Mishra AK, Ali SS, Ahmad A, Abuzinadah MF, Khan NA. In vivo models for assesment of wound healing potential: a systematic review. Wound Medicine. 2018 Mar;20:43-53. doi: 10.1016/j.wndm.2018.01.003
  8. Kieran I, Knock A, Bush J, So K, Metcalfe A, Hobson R, Mason T, O’Kane S, Ferguson M. Interleukin-10 reduces scar formation in both animal and human cutaneous wounds: results of two preclinical and phase II randomized control studies. Wound Repair Regen. 2013 May-Jun;21(3):428-36. doi: 10.1111/wrr.12043
  9. Charoenkwan K, Iheozor-Ejiofor Z, Rerkasem K, Matovinovic E. Scalpel versus electrosurgery for major abdominal incisions. Cochrane Database Syst Rev. 2017 Jun 14;6(6):CD005987. doi: 10.1002/14651858.CD005987.pub3
  10. Yang Q, Phillips PL, Sampson EM, Progulske-Fox A, Jin S, Antonelli P, Schultz GS. Development of a novel ex vivo porcine skin explant model for the assessment of mature bacterial biofilms. Wound Repair Regen. 2013 Sep-Oct;21(5):704-14. doi: 10.1111/wrr.12074
  11. Chen L, Nagaraja S, Zhou J, Zhao Y, Fine D, Mitrophanov AY, Reifman J, DiPietro LA. Wound healing in Mac-1 deficient mice. Wound Repair Regen. 2017 May;25(3):366-76. doi: 10.1111/wrr.12531
  12. Ashcroft GS, Horan MA, Ferguson MW. The effects of ageing on wound healing: immunolocalisation of growth factors and their receptors in a murine incisional model. J Anat. 1997 Apr;190(Pt 3):351-65. doi: 10.1046/j.1469-7580.1997.19030351.x
  13. Routley CE, Ashcroft GS. Effect of estrogen and progesterone on macrophage activation during wound healing. Wound Repair Regen. 2009 Jan-Feb;17(1):42-50. doi: 10.1111/j.1524-475X.2008.00440.x
  14. Kiwanuka E, Hackl F, Philip J, Caterson EJ, Junker JP, Eriksson E. Comparison of healing parameters in porcine full-thickness wounds transplanted with skin micrografts, split-thickness skin grafts, and cultured keratinocytes. J Am Coll Surg. 2011 Dec;213(6):728-35. doi: 10.1016/j.jamcollsurg.2011.08.020
  15. Jabeen S, Clough ECS, Thomlinson AM, Chadwick SL, Ferguson MWJ, Shah M. Partial thickness wound: Does mechanism of injury influence healing? Burns. 2019 May;45(3):531-42. doi: 10.1016/j.burns.2018.08.010
  16. Barillo DJ, Croutch CR, Barillo AR, Reid F, Singer A. Safety evaluation of silver-ion dressings in a porcine model of deep dermal wounds: A GLP study. Toxicol Lett. 2020 Feb 1;319:111-18. doi: 10.1016/j.toxlet.2019.10.023
  17. Vasil’kov AYu, Dovnar RI, Smotryn SM, Iaskevich NN, Naumkin AV. Healing of experimental aseptic skin wound under the influence of the wound dressing, containing silver nanoparticles. Am J Nanotechnol Nanomed. 2018;1(2):69-77. https://www.scireslit.com/Nanotechnology/AJNN-ID19.pdf
  18. Davis SC, Mertz PM, Eaglstein WH. Second-degree burn healing: the effect of occlusive dressings and a cream. J Surg Res. 1990 Mar;48(3):245-48. doi: 10.1016/0022-4804(90)90220-v
  19. Boykin JV, Eriksson E, Pittman RN. In vivo microcirculation of a scald burn and the progression of postburn dermal ischemia. Plast Reconstr Surg. 1980 Aug;66(2):191-98. doi: 10.1097/00006534-198008000-00002
  20. Walker HL, Mason AD Jr. A standard animal burn. J Trauma. 1968 Nov;8(6):1049-51. doi: 10.1097/00005373-196811000-00006
  21. Nguyen PK, Smith AL, Reynolds KJ. A literature review of different pressure ulcer models from 1942–2005 and the development of an ideal animal model. Australas Phys Eng Sci Med. 2008 Sep;31(3):223-25. doi: 10.1007/bf03179348
  22. Grada A, Mervis J, Falanga V. Research Techniques Made Simple: Animal Models of Wound Healing. J Invest Dermatol. 2018 Oct;138(10):2095-2105.e1. doi: 10.1016/j.jid.2018.08.005
  23. Reid RR, Sull AC, Mogford JE, Roy N, Mustoe TA. A novel murine model of cyclical cutaneous ischemia-reperfusion injury. J Surg Res. 2004 Jan;116(1):172-80. doi: 10.1016/s0022-4804(03)00227-0
  24. Wassermann E, van Griensven M, Gstaltner K, Oehlinger W, Schrei K, Redl H. A chronic pressure ulcer model in the nude mouse. Wound Repair Regen. 2009 Jul-Aug;17(4):480-84. doi: 10.1111/j.1524-475X.2009.00502.x
  25. Sundin BM, Hussein MA, Glasofer S, El-Falaky MH, Abdel-Aleem SM, Sachse RE, Klitzman B. The role of allopurinol and deferoxamine in preventing pressure ulcers in pigs. Plast Reconstr Surg. 2000 Apr;105(4):1408-21. doi: 10.1097/00006534-200004040-00021
  26. Fang RC, Mustoe TA. Animal models of wound healing: utility in transgenic mice. J Biomater Sci Polym Ed. 2008;19(8):989-1005. doi: 10.1163/156856208784909327
  27. Roy S, Biswas S, Khanna S, Gordillo G, Bergdall V, Green J, Marsh CB, Gould LJ, Sen CK. Characterization of a preclinical model of chronic ischemic wound. Physiol Genomics. 2009 May 13;37(3):211-24. doi: 10.1152/physiolgenomics.90362.2008
  28. Chen C, Schultz GS, Bloch M, Edwards PD, Tebes S, Mast BA. Molecular and mechanistic validation of delayed healing rat wounds as a model for human chronic wounds. Wound Repair Regen. 1999 Nov-Dec;7(6):486-94. doi: 10.1046/j.1524-475x.1999.00486.x
  29. Canapp SO Jr, Farese JP, Schultz GS, Gowda S, Ishak AM, Swaim SF, Vangilder J, Lee-Ambrose L, Martin FG. The effect of topical tripeptide-copper complex on healing of ischemic open wounds. Vet Surg. 2003 Nov-Dec;32(6):515-23. doi: 10.1111/j.1532-950x.2003.00515.x
  30. Sisco M, Mustoe TA. Animal models of ischemic wound healing. Toward an approximation of human chronic cutaneous ulcers in rabbit and rat. Methods Mol Med. 2003;78:55-65. doi: 10.1385/1-59259-332-1:055
  31. Ahn ST, Mustoe TA. Effects of ischemia on ulcer wound healing: a new model in the rabbit ear. Ann Plast Surg. 1990 Jan;24(1):17-23. doi: 10.1097/00000637-199001000-00004
  32. King AJ. The use of animal models in diabetes research. Br J Pharmacol. 2012 Jun;166(3):877-94. doi: 10.1111/j.1476-5381.2012.01911.x
  33. Wagner JD, Cline JM, Shadoan MK, Bullock BC, Rankin SE, Cefalu WT. Naturally occurring and experimental diabetes in cynomolgus monkeys: a comparison of carbohydrate and lipid metabolism and islet pathology. Toxicol Pathol. 2001 Jan-Feb;29(1):142-48. doi: 10.1080/019262301301418955
  34. Velander P, Theopold C, Hirsch T, Bleiziffer O, Zuhaili B, Fossum M, Hoeller D, Gheerardyn R, Chen M, Visovatti S, Svensson H, Yao F, Eriksson E. Impaired wound healing in an acute diabetic pig model and the effects of local hyperglycemia. Wound Repair Regen. 2008 Mar-Apr;16(2):288-93. doi: 10.1111/j.1524-475X.2008.00367.x
  35. Fang RC, Kryger ZB, Buck DW, De la Garza M, Galiano RD, Mustoe TA. Limitations of the db/db mouse in translational wound healing research: is the NONcNZO10 polygenic mouse model superior? Wound Repair Regen. 2010 Nov-Dec;18(6):605-13. doi: 10.1111/j.1524-475X.2010.00634.x
  36. Takikawa M, Nakamura S, Nambu M, Sasaki K, Yanagibayashi S, Azuma R, Yamamoto N, Kiyosawa T. New model of radiation-induced skin ulcer in rats. J Plast Surg Hand Surg. 2011 Dec;45(6):258-62. doi: 10.3109/2000656X.2011.633401
  37. Fujita K, Nishimoto S, Fujiwara T, Sotsuka Y, Tonooka M, Kawai K, Kakibuchi M. A new rabbit model of impaired wound healing in an X-ray-irradiated field. PLoS One. 2017 Sep 8;12(9):e0184534. doi: 10.1371/journal.pone.0184534
  38. Bernatchez SF, Parks PJ, Grussing DM, Matalas SL, Nelson GS. Histological characterization of a delayed wound healing model in pig. Wound Repair Regen. 1998 May-Jun;6(3):223-33. doi: 10.1046/j.1524-475x.1998.60308.x
  39. Seaton M, Hocking A, Gibran NS. Porcine models of cutaneous wound healing. ILAR J. 2015;56(1):127-38. doi: 10.1093/ilar/ilv016
  40. Dai T, Kharkwal GB, Tanaka M, Huang YY, Bil de Arce VJ, Hamblin MR. Animal models of external traumatic wound infections. Virulence. 2011 Jul-Aug;2(4):296-15. doi: 10.4161/viru.2.4.16840
  41. Гинюк ВА. Методика моделирования острого местного гнойно-воспалительного процесса у лабораторных животных и проведения эксперимента по лечению полученных гнойных ран с помощью фоторегуляторной и фотодинамической терапии. Мед Журн. 2009;(1):44-46. https://medmag.bsmu.by/category27/article1266/
  42. Conboy MJ, Conboy IM, Rando TA. Heterochronic parabiosis: historical perspective and methodological considerations for studies of aging and longevity. Aging Cell. 2013 Jun;12(3):525-30. doi: 10.1111/acel.12065
  43. Kamran P, Sereti KI, Zhao P, Ali SR, Weissman IL, Ardehali R. Parabiosis in mice: a detailed protocol. J Vis Exp. 2013 Oct 6;(80). doi: 10.3791/50556
  44. Mekonnen A, Sidamo T, Asres K, Engidawork E. In vivo wound healing activity and phytochemical screening of the crude extract and various fractions of Kalanchoe petitiana A. Rich (Crassulaceae) leaves in mice. J Ethnopharmacol. 2013 Jan 30;145(2):638-46. doi: 10.1016/j.jep.2012.12.002
  45. Mukherjee H, Ojha D, Bharitkar YP, Ghosh S, Mondal S, Kaity S, Dutta S, Samanta A, Chatterjee TK, Chakrabarti S, Mondal NB, Chattopadhyay D. Evaluation of the wound healing activity of Shorea robusta, an Indian ethnomedicine, and its isolated constituent(s) in topical formulation. J Ethnopharmacol. 2013 Aug 26;149(1):335-43. doi: 10.1016/j.jep.2013.06.045
  46. Kumar V, Khan A, Nagarajan K. Animal models for the evaluation of wound healing activity. Int Bull Drug Res. 2013;3(5):93-107. https://www.researchgate.net/publication/274010528_animal_models_for_the_evaluation_of_wound_healing_activity
  47. Fukai T, Takeda A, Uchinuma E. Wound healing in denervated rat skin. Wound Repair Regen. 2005 Mar-Apr;13(2):175-80. doi: 10.1111/j.1067-1927.2005.130208.x
  48. Yagmur C, Guneren E, Kefeli M, Ogawa R. The effect of surgical denervation on prevention of excessive dermal scarring: a study on rabbit ear hypertrophic scar model. J Plast Reconstr Aesthet Surg. 2011 Oct;64(10):1359-65. doi: 10.1016/j.bjps.2011.04.028
  49. Shanmugam VK, Tassi E, Schmidt MO, McNish S, Baker S, Attinger C, Wang H, Shara N, Wellstein A. Utility of a human–mouse xenograft model and in vivo near-infrared fluorescent imaging for studying wound healing. Int Wound J. 2015 Dec;12(6):699-705. doi: 10.1111/iwj.12205
  50. Demarchez M, Sengel P, Prunieras M. Wound healing of human skin transplanted onto the nude mouse. I. An immunohistological study of the reepithelialization process. Dev Biol. 1986 Jan;113(1):90-96. doi: 10.1016/0012-1606(86)90110-7
  51. Otulakowski G, Zhou L, Fung-Leung WP, Gendimenico GJ, Samuel SE, Lau CY. Use of a human skin-grafted nude mouse model for the evaluation of topical retinoic acid treatment. J Invest Dermatol. 1994 Apr;102(4):515-18. doi: 10.1111/1523-1747.ep12373180
  52. Lee KO, Kim SN, Kim YC. Anti-wrinkle effects of water extracts of teas in hairless mouse. Toxicol Res. 2014 Dec;30(4):283-89. doi: 10.5487/TR.2014.30.4.283
  53. Simoes D, Miguel SP, Ribeiro MP, Coutinho P, Mendonça AG, Correia IJ. Recent advances on antimicrobial wound dressing: A review. Eur J Pharm Biopharm. 2018 Jun;127:130-41. doi: 10.1016/j.ejpb.2018.02.022
  54. Gaspar-Pintiliescu A, Stanciuc AM, Craciunescu O. Natural composite dressings based on collagen, gelatin and plant bioactive compounds for wound healing: A review. Int J Biol Macromol. 2019 Oct 1;138:854-65. doi: 10.1016/j.ijbiomac.2019.07.155
Адрес для корреспонденции:
230009, Республика Беларусь,
г. Гродно, ул. Горького, д. 80,
Гродненский государственный
медицинский университет,
2-я кафедра хирургических болезней,
тел.: +375 29 786-86-43,
e-mail: dr_ruslan@mail.ru,
Довнар Руслан Игоревич
Cведения об авторах:
Довнар Руслан Игоревич, к.м.н., доцент, доцент 2-й кафедры хирургических болезней, Гродненский государственный медицинский университет, г. Гродно, Республика Беларусь.
https://orcid.org/0000-0003-3462-1465.
DOI: https://dx.doi.org/10.18484/2305-0047.2021.4.490   |  

С.Н. ЕРОШКИH, С.А. СУШКОВ, Л.А. ФРОЛОВ

ВОЗМОЖHОСТИ И ПЕРСПЕКТИВЫ HЕПРЯМОЙ РЕВАСКУЛЯРИЗАЦИИ HИЖHЕЙ КОHЕЧHОСТИ ПРИ ЛЕЧЕHИИ ПАЦИЕHТОВ С ХРОHИЧЕСКОЙ ИШЕМИЕЙ

Витебский государственный медицинский университет, г. Витебск?
Республика Беларусь

Обзор содержит современные данные о проблемах и перспективах применения методов непрямой реваскуляризации нижней конечности при ее критической ишемии. Использованы международные научно-медицинские базы данных PubMed и Cochran elibrary. Исследование показало, что критическая ишемия нижних конечностей остается актуальной задачей ангиохирургии, несмотря на широкое внедрение ангиопластики и открытых сосудистых реконструкций. Поскольку сохраняется весомый контингент пациентов, у которых они невыполнимы, представляет интерес дальнейшее совершенствование методик непрямой реваскуляризации. Тяжесть ишемического процесса определяется не только механическим ограничением кровотока по сосуду, но и ангиогенетическим потенциалом окружающих его мягких тканей, в первую очередь мышечной. Поэтому при технической невосстановимости магистрального кровотока остается возможность сохранить конечность за счет создания новых сосудистых сетей в мышечной ткани. Оптимальным вариантом решения этой задачи является операция реваскуляризирущей остеотрепанации костей нижней конечности. Неудовлетворенность ее результативностью была обусловлена медленным развитием ангиогенного эффекта, что при критической ишемии чревато потерей конечности до достижения максимума ангиогенеза. В последние годы в практику стали активно внедряться методы клеточной терапии, которые легко комбинируются с реваскуляризирующей остеотрепанацией и могут существенно ускорить ангиогенез, индуцированный хирургической травмой кости. В этой связи есть основания полагать, что терапевтический потенциал методик непрямой реваскуляризации и в первую очередь реваскуляризирующей остеотрепанации может быть существенно усилен их сочетанием с методиками клеточной терапии, в том числе с применением аспиратов костного мозга.

Ключевые слова: ангиогенез, артериогенез, клеточная терапия, критическая ишемия нижних конечностей, заболевания периферических артерий, реваскуляризаци
с. 490-503 оригинального издания
Список литературы
  1. Bell P, Charlesworth D, DePalma R, Eastcott H, Eklöf B, Jamieson C, et al. The definition of critical ischemia of a limb Working Party of the International Vascular Symposium. Br J Surg. 1982 Dec;69(Is Suppl 6):S2. doi: 10.1002/bjs.1800691303
  2. Mills Sr J, Conte M, Armstrong D, Pomposelli F, Schanzer A, Sidawy A, Andros G. The Society for Vascular Surgery Lower Extremity Threatened Limb Classification System: Risk stratification based on Wound, Ischemia, and foot Infection (WIfI). J Vasc Surg. 2014 Jan;59(1):220-34. doi: 10.1016/j.jvs.2013.08.003
  3. Norgren L, Hiatt WR, Dormandy JA, Nehler MR, Harris KA, Fowkes FG; TASC II Working Group. Inter-Society Consensus for the Management of Peripheral Arterial Disease (TASC II). J Vasc Surg. 2007 Jan;45(Suppl S):S5-67. doi: 10.1016/j.jvs.2006.12.037
  4. Uccioli L, Meloni M, Izzo V, Giurato L, Merolla S, Gandini R. Critical limb ischemia: current challenges and future prospects. Vasc Health Risk Manag. 2018 Apr 26;14:63-74. doi: 10.2147/VHRM.S125065. eCollection 2018.
  5. Abu Dabrh AM, Steffen MW, Undavalli C, Asi N, Wang Z, Elamin MB, Conte MS, Murad MH. The natural history of untreated severe or critical limb ischemia. J Vasc Surg. 2015 Dec;62(6):1642-51.e3. doi: 10.1016/j.jvs.2015.07.065
  6. Dosluoglu HH, Lall P, Harris LM, Dryjski ML. Long-term limb salvage and survival after endovascular and open revascularization for critical limb ischemia after adoption of endovascular-first approach by vascular surgeons. J Vasc Surg. 2012 Aug;56(2):361-71. doi: 10.1016/j.jvs.2012.01.054
  7. Adam DJ, Beard JD, Cleveland T, Bell J, Bradbury AW, Forbes JF, Fowkes FG, Gillepsie I, Ruckley CV, Raab G, Storkey H; BASIL trial participants. Bypass versus angioplasty in severe ischaemia of the leg (BASIL): multicentre, randomised controlled trial. Lancet. 2005 Dec 3;366(9501):1925-34. doi: 10.1016/S0140-6736(05)67704-5
  8. Fernandez N, McEnaney R, Marone LK, Rhee RY, Leers S, Makaroun M, Chaer RA. Predictors of failure and success of tibial interventions for critical limb ischemia. J Vasc Surg. 2010 Oct;52(4):834-42. doi: 10.1016/j.jvs.2010.04.070
  9. Суковатых БС, Орлова АЮ, Суковатых МБ, Боломатов НВ. Гемодинамическая и клиническая эффективность трансплантации клеток аутологичного костного мозга при лечении критической ишемии нижних конечностей. Вестн Нац Мед-Хирург Центра им НИ Пирогова. 2019;14(4):27-31. doi: 10.25881/BPNMSC.2020.39.53.005
  10. Conte MS. Critical appraisal of surgical revascularization for critical limb ischemia. J Vasc Surg. 2013 Feb;57(2 Suppl):8S-13S. doi: 10.1016/j.jvs.2012.05.114
  11. Ziegler MA, Distasi MR, Bills RG, Miller SJ, Alloosh M, Murphy MP, Akingba AG, Sturek M, Dalsing MC, Unthank JL. Marvels, mysteries, and misconceptions of vascular compensation to peripheral artery occlusion. Microcirculation. 2010 Jan;17(1):3-20. doi: 10.1111/j.1549-8719.2010.00008.x
  12. McDermott MM, Greenland P, Liu K, Guralnik JM, Celic L, Criqui MH, Chan C, Martin GJ, Schneider J, Pearce WH, Taylor LM, Clark E. The ankle brachial index is associated with leg function and physical activity: the Walking and Leg Circulation Study. Ann Intern Med. 2002 Jun 18;136(12):873-83. doi: 10.7326/0003-4819-136-12-200206180-00008
  13. Anderson JD, Epstein FH, Meyer CH, Hagspiel KD, Wang H, Berr SS, Harthun NL, Weltman A, Dimaria JM, West AM, Kramer CM. Multifactorial determinants of functional capacity in peripheral arterial disease: uncoupling of calf muscle perfusion and metabolism. J Am Coll Cardiol. 2009 Aug 11;54(7):628-35. doi: 10.1016/j.jacc.2009.01.080
  14. Szuba A, Oka RK, Harada R, Cooke JP. Limb hemodynamics are not predictive of functional capacity in patients with PAD. Vasc Med. 2006 Nov;11(3):155-63. doi: 10.1177/1358863x06074828
  15. Hamburg NM, Creager MA. Pathophysiology of intermittent claudication in peripheral artery disease. Circ J. 2017 Feb 24;81(3):281-89. doi: 10.1253/circj.CJ-16-1286
  16. Galland RB. Popliteal aneurysms: from John Hunter to the 21st century. Ann R Coll Surg Engl. 2007 Jul;89(5):466-71. doi: 10.1308/003588407X183472
  17. Matas R. Testing the Efficiency of the collateral circulation as a preliminary to the occlusion of the great surgical arteries. Ann Surg. 1911 Jan;53(1):1-43. doi: 10.1097/00000658-191101000-00001
  18. DeBakey ME, Lawrie GM, Glaeser DH. Patterns of atherosclerosis and their surgical significance. Ann Surg. 1985 Feb; 201(2):115–131. doi: 10.1097/00000658-198502000-00001
  19. Simons M. Angiogenesis: where do we stand now? Circulation. 2005 Mar 29;111(12):1556-66. doi: 10.1161/01.CIR.0000159345.00591.8F
  20. Shepherd JT. The blood flow through the calf of the leg during acute occlusion of the femoral artery and vein. Circulation. 1952 Aug;6(2):281-85. doi: 10.1161/01.cir.6.2.281
  21. Hershey JC, Baskin EP, Corcoran HA, Bett A, Dougherty NM, Gilberto DB, Mao X, Thomas KA, Cook JJ. Vascular endothelial growth factor stimulates angiogenesis without improving collateral blood flow following hindlimb ischemia in rabbits. Heart Vessels. 2003 Jul;18(3):142-49. doi: 10.1007/s00380-003-0694-z
  22. Robbins JL, Jones WS, Duscha BD, Allen JD, Kraus WE, Regensteiner JG, Hiatt WR, Annex BH. Relationship between leg muscle capillary density and peak hyperemic blood flow with endurance capacity in peripheral artery disease. J Appl Physiol (1985). 2011 Jul;111(1):81-86. doi: 10.1152/japplphysiol.00141.2011
  23. Cooke JP, Losordo DW. Modulating the vascular response to limb ischemia: angiogenic and cell therapies. Circ Res. 2015 Apr 24;116(9):1561-78. doi: 10.1161/CIRCRESAHA.115.303565
  24. Weiss DJ, Casale GP, Koutakis P, Nella AA, Swanson SA, Zhu Z, Miserlis D, Johanning JM, Pipinos II. Oxidative damage and myofiber degeneration in the gastrocnemius of patients with peripheral arterial disease. J Transl Med. 2013 Sep 25;11:230. doi: 10.1186/1479-5876-11-230
  25. Gerhard-Herman MD, Gornik HL, Barrett C, Barshes NR, Corriere MA, Drachman DE, Fleisher L, Fowkes F, Hamburg N, Kinley S, Lookstein R, Misra S, Mureebe L, Olin J, Patel R, Regensteiner J, Schanzer A, Shishehbor M, Stewart K, Treat-Jacobson D, Walsh M. 2016 AHA/ACC Guideline on the Management of Patients With Lower Extremity Peripheral Artery Disease: A report of the American College of Cardiology/ American Heart Association Task Force on Clinical Practice Guidelines. Circulation. 2017 Mar 21;135(12):e726-e779. doi: 10.1161/CIR.0000000000000471
  26. Yang HT, Ren J, Laughlin MH, Terjung RL. Prior exercise training produces NO-dependent increases in collateral blood flow after acute arterial occlusion. Am J Physiol Heart Circ Physiol. 2002 Jan;282(1):H301-10. doi: 10.1152/ajpheart.00160.2001
  27. Gardner AW, Katzel LI, Sorkin JD, Bradham DD, Hochberg MC, Flinn WR, Goldberg AP. Exercise rehabilitation improves functional outcomes and peripheral circulation in patients with intermittent claudication: a randomized controlled trial. J Am Geriatr Soc. 2001 Jun;49(6):755-62. doi: 10.1046/j.1532-5415.2001.49152.x
  28. Zaki M, Elsherif M, Tawfick W, El Sharkawy M, Hynes N, Sultan S. The Role of Sequential Pneumatic Compression in Limb Salvage in Non-reconstructable Critical Limb Ischemia. Eur J Vasc Endovasc Surg. 2016 Apr;51(4):565-71. doi: 10.1016/j.ejvs.2015.12.025
  29. Sen I, Agarwal S, Tharyan P, Forster R. Lumbar sympathectomy versus prostanoids for critical limb ischaemia due to non-reconstructable peripheral arterial disease. Cochrane Database Syst Rev. 2018 Apr 16;4(4):CD009366. doi: 10.1002/14651858.CD009366.pub2
  30. Zechlinski JJ, Hieb RA. Lumbar Sympathetic Neurolysis: How to and When to Use? Tech Vasc Interv Radiol. 2016 Jun;19(2):163-68. doi: 10.1053/j.tvir.2016.04.008
  31. Кохан ЕП, Пинчук ОВ. Размышления о поясничной симпатэктомии. Годы и практика. К 90-летию применения метода в России Ангиология и Сосудистая Хирургия [Электронный ресурс]. 2017 [дата обращения: 2020 Дек 20];23(2):186-90. http://www.angiolsurgery.org/magazine/2017/2/24.htm
  32. Karanth VKL, Karanth TK, Karanth L. Lumbar sympathectomy techniques for critical lower limb ischaemia due to non-reconstructable peripheral arterial disease. Cochrane Database Syst Rev. 2016 Dec;2016(12):CD011519. Published online 2016 Dec 13. doi: 10.1002/14651858.CD011519.pub2
  33. Шевцов ВИ, Гордиевских НИ, Ерофеев СА. Состояние кровообращения конечности в условиях автоматической дистракции. Гений Ортопедии [Электронный ресурс]. 2000 [дата обращения: 2020 Дек 20];(1):11-15. http://ilizarov-journal.com/index.php/go/article/view/1797/1774
  34. Щуров ВА, Попков АВ, Аранович АМ. Полярографический контроль состояния регионарного кровообращения при оперативном удлинении голени. Гений Ортопедии. 2015;(4):76-79. doi: 10.18019/1028-4427-2015-4-76-79
  35. Корабельников ЮА, Щурова ЕН, Речкин МЮ. Исследование динамики чрескожного напряжения кислорода и углекислого газа при применении повторных туннелизаций у больных с облитерирующим атеросклерозом нижних конечностей Гений Ортопедии [Электронный ресурс]. 2011 [дата обращения: 2020 Дек 20];(3):112-16. http://ilizarov-journal.com/index.php/go/article/view/558/536
  36. Ишенин ЮМ. Доктрина механического туннелирования. Вестн Соврем Клин Медицины [Электронный ресурс]. 2010 [дата обращения: 2020 Дек 20];3(2):51-54. http://vskmjournal.org/images/Files/Issues_Archive/2010/Issue_2/VSKM_2010_N_2_p51-54.pdf
  37. Зусманович ФН. Новый метод активизации коллатерального кровообращения – реваскуляризирующая остеотрепанация. Вестн. хирургии им ИИ Грекова. 1991;146(5-6):114-15.
  38. Ерошкин СН, Сачек МГ. Возможности использования показателей кислотно-щелочного состояния венозной крови нижней конечности для прогнозирования эффективности реваскуляризирующей остеотрепанации у пациентов с синдромом диабетической стопы Вестн Эксперим и Клин Хирургии [Электронный ресурс]. 2013 [дата обращения: 2020 Дек 20];VI(3):292-98. https://vestnik-surgery.com/index.php/journal/article/view/93/65:292-98
  39. Ларионов АА, Щурова ЕН, Речкин МЮ. Возможности метода повторных остеоперфораций для улучшения кровообращения в конечностях при хронической ишемии. Гений Ортопедии [Электронный ресурс]. 2000 [дата обращения: 2020 Дек 20];(4):32-35. http://ilizarov-journal.com/index.php/go/article/view/1727/
  40. Свешников АА, Ларионов АА, Бунов ВС, Смотрова ЛА, Ларионова ТА, Речкин МЮ. Состояние кровообращения в нижних конечностях при стимуляции кровоснабжения у больных облитерирующим эндартериитом и атеросклерозом Гений Ортопедии [Электронный ресурс]. 2000 [дата обращения: 2020 Дек 20];(2):68-73. http://ilizarov-journal.com/index.php/go/article/view/1783
  41. Русин ВИ, Корсак ВВ, Болдижар ПА, Русин ВВ, Пекарь МИ, Горленко ФВ, Машура ВВ, Лангазо ОВ. Отдаленные результаты хирургического лечения критической ишемии нижних конечностей после одномоментной прямой и непрямой реваскуляризации. Новости Хирургии. 2017;25(2):131-39. doi: 10.18484/2305-0047.2017.2.131
  42. Asahara T, Murohara T, Sullivan A, Silver M, van der Zee R, Li T, Witzenbichler B, Schatteman G, Isner JM. Isolation of putative progenitor endothelial cells for angiogenesis. Science. 1997 Feb 14;275(5302):964-67. doi: 10.1126/science.275.5302.964
  43. Urbán VS, Kiss J, Kovács J, Gócza E, Vas V, Monostori E, Uher F. Mesenchymal stem cells cooperate with bone marrow cells in therapy of diabetes. Stem Cells. 2008 Jan;26(1):244-53. doi: 10.1634/stemcells.2007-0267
  44. Oswald J, Boxberger S, Jørgensen B, Feldmann S, Ehninger G, Bornhäuser M, Werner C. Mesenchymal stem cells can be differentiated into endothelial cells in vitro. Stem Cells. 2004;22(3):377-84. doi: 10.1634/stemcells.22-3-377
  45. Булгин ДВ, Андреева ОВ. Терапевтический ангиогенез с использованием факторов роста и клеток костного мозга: биологические основы и перспективы клинического применения. Вестн Трансплантологии и Искусств Органов. 2015;17(3):89-111. doi: 10.158-25/1995-1191-2015-3-89-111
  46. Tateishi-Yuyama E, Matsubara H, Murohara T, Ikeda U, Shintani S, Masaki H, Amano K, Kishimoto Y, Yoshimoto K, Akashi H, Shimada K, Iwasaka T, Imaizumi T; Therapeutic Angiogenesis using Cell Transplantation (TACT) Study Investigators. Therapeutic angiogenesis for patients with limb ischaemia by autologous transplantation of bone-marrow cells: a pilot study and a randomised controlled trial. Lancet. 2002 Aug 10;360(9331):427-35. doi: 10.1016/S0140-6736(02)09670-8
  47. Lu D, Chen B, Liang Z, Deng W, Jiang Y, Li S, Xu J, Wu Q, Zhang Z, Xie B, Chen S. Comparison of bone marrow mesenchymal stem cells with bone marrow-derived mononuclear cells for treatment of diabetic critical limb ischemia and foot ulcer: a double-blind, randomized, controlled trial. Diabetes Res Clin Pract. 2011 Apr;92(1):26-36. doi: 10.1016/j.diabres.2010.12.010
  48. Powell RJ, Marston WA, Berceli SA, Guzman R, Henry TD, Longcore AT, Stern TP, Watling S, Bartel RL. Cellular therapy with Ixmyelocel-T to treat critical limb ischemia: the randomized, double-blind, placebo-controlled RESTORE-CLI trial. Mol Ther. 2012 Jun;20(6):1280-6. doi: 10.1038/mt.2012.52
  49. Peeters Weem SM, Teraa M, de Borst GJ, Verhaar MC, Moll FL. Bone marrow derived cell therapy in critical limb ischemia: a meta-analysis of randomized placebo controlled trials. Eur J Vasc Endovasc Surg. 2015 Dec;50(6):775-83. doi: 10.1016/j.ejvs.2015.08.018
  50. Орехов ПЮ, Коноплянников МА, Баклаушев ВП, Кальсин ВА, Аверьянов АВ, Коноплянников АГ, Хабазов РИ, Троицкий АВ. Стволовые клетки костного мозга в лечении критической ишемии нижних конечностей: биологические аспекты и клиническое применение. Гены и Клетки. 2018;XIII(1):20-34. doi: 10.23868/201805002
  51. Biscetti F, Bonadia N, Nardella E, Cecchini A, Landolfi R, Flex A. The role of the stem cells therapy in the peripheral artery disease. Int J Mol Sci. 2019 May;20(9):2233. doi: 10.3390/ijms20092233
Адрес для корреспонденции:
210027, Республика Беларусь,
г. Витебск, пр-т Фрунзе, д. 27,
Витебский государственный медицинский
университет, кафедра общей хирургии,
e-mail: sergionik@gmail.com,
Ерошкин Сергей Николаевич
Cведения об авторах:
Ерошкин Сергей Николаевич, к.м.н., доцент, доцент кафедры общей хирургии, Витебский государственный медицинский университет, г. Витебск, Республика Беларусь.
http://orcid.org/0000-0003-2764-1812
Сушков Сергей Альбертович, к.м.н., доцент, проректор по научно-исследовательской работе, Витебский государственный медицинский университет, г. Витебск, Республика Беларусь.
http://orcid.org/0000-0002-7524-6182
Фролов Леонид Анатольевич, к.м.н., доцент, заведующий кафедрой общей хирургии, Витебский государственный медицинский университет, г. Витебск, Республика Беларусь.
http://orcid.org/0000-0003-3357-4409

СЛУЧАИ ИЗ ПРАКТИКИ

DOI: https://dx.doi.org/10.18484/2305-0047.2021.4.504   |  

В.С. ЖУКОВСКИЙ, М.В. ПАHЬКИВ, В.В. ЧАПЛЫК, В.С. КОЗОПАС, В.В. ГУМЕHЮК

ИHФИЦИРОВАHHАЯ КИСТА УРАХУСА У ВЗРОСЛОГО

Львовский национальный медицинский университет им. Данила Галицкого, г. Львов,
Украина

Урахус – трубчатое образование, исходящее из верхушки мочевого пузыря и идущее к пупку между брюшиной и поперечной фасцией живота. У эмбриона он служит для отведения первичной мочи в околоплодные воды. В случае, если к рождению облитерация протока не происходит, в нем могут развиваться различные патологические процессы. Наиболее частые аномалии урахуса, о которых сообщается у взрослых – инфицированная киста урахуса и карцинома урахуса. Эти диагнозы не всегда легко установить через атипичность симптомов их проявления и редкость этих заболеваний – два случая на 100000 госпитализаций взрослых. Описывается случай заболевания мужчины, 22 лет, который обратился в клинику ургентной хирургии с подкожным абсцессом и формированием наружного свища в области пупка. Спустя 16 часов после вскрытия и дренирования абсцесса состояние больного ухудшилось, начались боли в нижних отделах живота, выявлено напряжение мышц передней брюшной стенки и воспалительные изменения в анализах крови. Больной прооперирован по поводу перитонита. Выявлена двухкамерная киста урахуса по типу «песочных часов», с образованием в одной из полостей конкремента плотной консистенции, который перфорировал в брюшную полость. Данный клинический случай представляет интерес ввиду варианта атипичного течения и лечения достаточно редкой аномалии развития у взрослых. Публикация напомнит врачам отделений неотложной помощи о возможности наличия инфицированного урахуса у пациентов с симптомами острого живота.

Ключевые слова: инфицированная киста урахуса у взрослых, осложнения, острый живот, диагностика, хирургическое лечение
с. 504-509 оригинального издания
Список литературы
  1. Mahato NK, Mittal MM, Aggarwal R, Munjal KM. Encysted urachal abscess associated with a premalignant lesion in an adult male. Urotoday Int J. 2010 Oct;3(5). doi: 10.3834/uij.1944-5784.2010.10.01
  2. Ueno T, Hashimoto H, Yokoyama H, Ito M, Kouda K, Kanamaru H. Urachal anomalies: ultrasonography and management. J Pediatr Surg. 2003 Aug;38(8):1203-7. doi: 10.1016/s0022-3468(03)00268-9
  3. Ward TT, Saltzman E, Chiang S. Infected urachal remnants in the adult: case report and review. Clin Infect Dis. 1993 Jan;16(1):26-29. doi: 10.1093/clinids/16.1.26
  4. Spataro RF, Davis RS, McLachlan MS, Linke CA, Barbaric ZL. Urachal abnormalities in the adult. Radiology. 1983 Dec;149(3):659-63. doi: 10.1148/radiology.149.3.6647841
  5. Yiee JH, Garcia N, Baker LA, Barber R, Snodgrass WT, Wilcox DT. A diagnostic algorithm for urachal anomalies. J Pediatr Urol. 2007 Dec;3(6):500-4. doi: 10.1016/j.jpurol.2007.07.010
  6. Musko N, Dobruch J, Piotrowicz S, Szostek P, Borówka A. Infected urachal cyst in a young adult. Cent European J Urol. 2014;67(2):199-201. doi: 10.5173/ceju.2014.02.art19
  7. Lucerna A, Lee J, Espinosa J, Hertz R, Scali V. An Adult with a Remnant Urachus Anomaly Diagnosed in the Emergency Department. Case Rep Emerg Med. 2018 Aug 14;2018:6051871. doi: 10.1155/2018/6051871. eCollection 2018.
  8. Tazi F, Ahsaini M, Khalouk A, Mellas S, Stuurman-Wieringa RE, Elfassi MJ, Farih MH. Abscess of urachal remnants presenting with acute abdomen: a case series. J Med Case Rep. 2012 Jul 30;6:226. doi: 10.1186/1752-1947-6-226
  9. Гусев АА, Яцык СП, Киргизов ИВ, Дьяконова ЕЮ, Карпачев СА, Рязанов МВ. Патология урахуса: обзор литературы, современные аспекты хирургического пособия и собственный клинический опыт лапароскопического лечения. Педиатрия (Прил Consilium Medicum). 2018;(3):80-84. doi: 10.26442/2413-8460_2018.3.80-84
  10. Ashley RA, Inman BA, Routh JC, Rohlinger AL, Husmann DA, Kramer SA. Urachal anomalies: a longitudinal study of urachal remnants in children and adults. J Urol. 2007 Oct;178(4 Pt 2):1615-18. doi: 10.1016/j.juro.2007.03.194
  11. Yoo KH, Lee SJ, Chang SG. Treatment of infected urachal cysts. Yonsei Med J. 2006 Jun 30;47(3):423-27. doi: 10.3349/ymj.2006.47.3.423
  12. Ekwueme KC, Parr NJ. Infected urachal cyst in an adult: a case report and review of the literature. Cases J. 2009 Jun 25;2:6422. doi: 10.4076/1757-1626-2-6422
  13. Gami BL, Biswas S. An infected urachal cyst. BMJ Case Rep. 2013. doi: 10.1136/bcr-2012-007105.
  14. Kwok C.M. Infected urachal cyst in an adult: a laparoscopic approach. Case Rep Gastroenterol. 2016 May-Aug;10(2):269-74. Published online 2016 Jun 14. doi: 10.1159/000446642
  15. Dickhoff C, Campo MM, Ophof PJ, Makkus AF, Tan KG, Plaisier PW. Urachus fistula: a rare first presentation of diverticulitis. Case Rep Gastroenterol. 2008 Sep 20;2(3):287-90. doi: 10.1159/000151580
  16. Hsu CC, Liu YP, Lien WC, Lai TI, Chen WJ, Wang HP. Urachal abscess: a cause of adult abdominal pain that cannot be ignored. Am J Emerg Med. 2005 Mar;23(2):229-30. doi: 10.1016/j.ajem.2004.03.012
  17. Agatstein EH, Stabile BE. Peritonitis due to intraperitoneal perforation of infected urachal cysts. Arch Surg. 1984 Nov;119(11):1269-73. doi: 10.1001/archsurg.1984.01390230041009
  18. Diehl K. A rare case of urachal calculus. Br J Urol. 1991 Mar;67(3):327-28. doi: 10.1111/j.1464-410x.1991.tb15147.x
  19. Wan YL, Lee TY, Tsai CC, Chen SM, Chou FF. The role of sonography in the diagnosis and management of urachal abscesses. J Clin Ultrasound. 1991 May;19(4):203-8. doi: 10.1002/jcu.1870190403
  20. Zafar S, Shah R, Dinneen M, Davies C. Imaging of Urachal remnant diseases. Congress: ECR 2019. Poster Number:C-2770. doi: 10.26044/ecr2019/C-2770
  21. Allen JW, Song J, Velcek FT. Acute presentation of infected urachal cysts: case report and review of diagnosis and therapeutic interventions. Pediatr Emerg Care. 2004 Feb;20(2):108-11. doi: 10.1097/01.pec.0000113880.10140.19
  22. Castillo OA, Vitagliano G, Olivares R, Sanchez-Salas R. Complete excision of urachal cyst by laparoscopic means: a new approach to an uncommon disorder. Arch Esp Urol. 2007 Jun;60(5):607-11. doi: 10.4321/s0004-06142007000500020
  23. Elkbuli A, Kinslow K, Ehrhardt JD Jr, Hai S, McKenney M, Boneva D. Surgical management for an infected urachal cyst in an adult: Case report and literature review. Int J Surg Case Rep. 2019;57:130-33. doi: 10.1016/j.ijscr.2019.03.041
  24. Mesrobian HG, Zacharias A, Balcom AH, Cohen RD. Ten years of experience with isolated urachal anomalies in children. J Urol. 1997 Sep;158(3 Pt 2):1316-8. doi: 10.1097/00005392-199709000-00173
  25. Yu JS, Kim KW, Lee HJ, Lee YJ, Yoon CS, Kim MJ. Urachal remnant diseases: spectrum of CT and US findings. Radiographics. 2001 Mar-Apr;21(2):451-61. doi: 10.1148/radiographics.21.2.g01mr02451
  26. Kwok CM. Infected urachal cyst in an adult: a laparoscopic approach. Case Rep Gastroenterol. 2016 Jun 14;10(2):269-74. doi: 10.1159/000446642. eCollection 2016 May-Aug.
  27. Chiarenza SF, Bleve C. Laparoscopic management of urachal cysts. Transl Pediatr. 2016 Oct;5(4):275-81. doi: 10.21037/tp.2016.09.10
  28. Passoni S, Guerra A, Marengo M. Laparoscopic treatment of an infected urachalcyst and diverticulum in a young adult: Presentation of a case and review of the literature. Int J Surg Case Rep. 2018;49:87-90. doi: 10.1016/j.ijscr.2018.06.018
Адрес для корреспонденции:
79010, Украина,
г. Львов, ул. Пекарская, д. 69,
Львовский национальный медицинский
университет имени Данила Галицкого,
кафедра медицины неотложных состояний
и военной медицины,
тел. моб.: +38 067 725 32 39,
e-mail: zukovskiy@ukr.net,
Жуковский Владимир Степанович
Cведения об авторах:
Жуковский Владимир Степанович, к.м.н., доцент кафедры медицины катастроф и военной медицины, Львовский национальный медицинский университет имени Данила Галицкого, г. Львов, Украина. http://orcid.org/ 0000-0002-0594-5316
Панькив Маряна Владимировна, аспирант кафедры анатомии, Львовский национальный медицинский университет имени Данила Галицкого, г. Львов, Украина.
http://orcid.org/ 0000-0002-3714-2577
Чаплык Виктор Васильевич, к.м.н., доцент. заведующий кафедрой медицины катастроф и военной медицины, Львовский национальный медицинский университет имени Данила Галицкого, г. Львов, Украина
https://orcid.org/0000-0002-1633-0712
Козопас Виктор Степанович, к.м.н., доцент кафедры медицины катастроф и военной медицины, Львовский национальный медицинский университет имени Данила Галицкого, г. Львов, Украина.
http://orcid.org/0000-0003-3451-6016
Гуменюк Василий Васильевич, к.пед.н, доцент кафедры медицины катастроф и военной медицины, Львовский национальный медицинский университет имени Данила Галицкого, г. Львов, Украина.
https://orcid.org/0000-0003-2736-3875
DOI: https://dx.doi.org/10.18484/2305-0047.2021.4.510   |  

Г.И. ЕМЕЦ, А.В. ТЕЛЕГУЗОВА, Е.А. ЧЕРHЕЦКИЙ, Г.Б. МАHЬКОВСКИЙ, Е.Ю. МАРУШКО

МИHИ-ИHВАЗИВHОЕ ПРОТЕЗИРОВАHИЕ АОРТАЛЬHОГО КЛАПАHА У 97-ЛЕТHЕГО ПАЦИЕHТА

Центр детской кардиологии и кардиохирургии МЗ Украины, г. Киев,
Украина

Публикация посвящена вопросам выбора тактики лечения выраженного аортального стеноза у пожилых пациентов высокого риска. Показаны вариабельность хирургических подходов и опций, зачастую лимитированных из-за излишней осторожности, связанной с особенностями данной возрастной группы. Продемонстрирована эффективность мультидисциплинарного и комплексного подхода, результат которого измеряется улучшением качества и продолжительности жизни пациента. Описан уникальный для мировой литературы случай мини-инвазивной замены аортального клапана у 97 летнего пациента. Ключевыми показателями, которые, безусловно, влияют на выбор тактики лечения пациента пожилого возраста, являются общее состояние пациента, сопутствующая патология и возможность быстрой послеоперационной реабилитации. Таким образом, хирургическими методами выбора для таких пациентов являются мини-инвазивная хирургия либо чрескатетерная имплантация клапана. Последняя опция не всегда доступна, в частности, в странах с нестабильной экономической конъюнктурой. В случае представленного пациента была проведена многоэтапная подготовка в предоперационном периоде с целью стабилизации общего состояния и компенсации сопутствующей патологии. Таким образом, оптимизация дооперационного периода способствовала быстрой реабилитации и адаптации после операции. Гибридный подход, часто применяемый в современной клинической кардиохирургической практике, в контексте лечения пациентов старшего возраста является особенно ценным, поскольку минимизирует риски, связанные с комплексными оперативными вмешательствами.

Ключевые слова: мини-инвазивное протезирование, клиническое наблюдение, стеноз аортального клапана, пожилые люди, кардиохирургия
с. 510-517 оригинального издания
Список литературы
  1. Kwiecień A, Hrapkowicz T, Filipiak K, Przybylski R, Kaczmarczyk M, Kowalczuk A, Zembala M. Surgical treatment of elderly patients with severe aortic stenosis in the modern era – review. Kardiochir Torakochirurgia Pol. 2018 Sep;15(3):188-95. doi: 10.5114/kitp.2018.78445
  2. Osnabrugge RL, Mylotte D, Head SJ, Van Mieghem NM, Nkomo VT, LeReun CM, Bogers AJ, Piazza N, Kappetein AP. Aortic stenosis in the elderly: disease prevalence and number of candidates for transcatheter aortic valve replacement: a meta-analysis and modeling study. J Am Coll Cardiol. 2013 Sep 10;62(11):1002-12. doi: 10.1016/j.jacc.2013.05.015
  3. Pellikka PA, Sarano ME, Nishimura RA, Malouf JF, Bailey KR, Scott CG, Barnes ME, Tajik AJ. Outcome of 622 adults with asymptomatic, hemodynamically significant aortic stenosis during prolonged follow-up. Circulation. 2005 Jun 21;111(24):3290-95. doi: 10.1161/CIRCULATIONAHA.104.495903
  4. Chizner MA, Pearle DL, deLeon AC Jr. The natural history of aortic stenosis in adults. Am Heart J. 1980 Apr;99(4):419-24.doi: 10.1016/0002-8703(80)90375-0
  5. Winkley Shroyer AL, Bakaeen F, Shahian DM, Carr BM, Prager RL, Jacobs JP, Ferraris V, Edwards F, Grover FL. The Society of Thoracic Surgeons Adult Cardiac Surgery Database: The Driving Force for Improvement in Cardiac Surgery. Semin Thorac Cardiovasc Surg. 2015 Summer;27(2):144-51. doi: 10.1053/j.semtcvs.2015.07.007
  6. Rao PN, Kumar AS. Aortic valve replacement through right thoracotomy. Tex Heart Inst J. 1993;20(4):307-8. https://www.ncbi.nlm.nih.gov/pmc/articles/PMC325118/
  7. Phan K, Xie A, Di Eusanio M, Yan TD. A meta-analysis of minimally invasive versus conventional sternotomy for aortic valve replacement. Ann Thorac Surg. 2014 Oct;98(4):1499-511. doi: 10.1016/j.athoracsur.2014.05.060
  8. Bloomfield P. Choice of heart valve prosthesis. Heart. 2002 Jun;87(6):583-89. doi: 10.1136/heart.87.6.583
  9. ElBardissi AW, Shekar P, Couper GS, Cohn LH. Minimally invasive aortic valve replacement in octogenarian, high-risk, transcatheter aortic valve implantation candidates. J Thorac Cardiovasc Surg. 2011 Feb;141(2):328-35. doi: 10.1016/j.jtcvs.2010.08.056
Адрес для корреспонденции:
04050, Украина, г. Киев,
ул. Ильенко, д. 24,
Центр детской кардиологии
и кардиохирургии МЗ Украины,
тел.: +3 80687044822,
e-mail: teleguzova5@gmail.com,
Телегузова Александра Валентиновна
Cведения об авторах:
Емец Глеб Ильич, врач-хирург сердечнососудистый, отделение врожденных и приобретенных пороков сердца у взрослых и подростков, Центр детской кардиологии и кардиохирургии» МЗ Украины, г. Киев, Украина.
https://orcid.org/0000-0002-6139-6235
Телегузова Александра Валентиновна, врач-кардиолог, отделение врожденных и приобретенных пороков сердца у взрослых и подростков, Центр детской кардиологии и кардиохирургии МЗ Украины, г. Киев, Украина.
https://orcid.org/0000-0003-4801-093X
Чернецкий Евгений Александрович, врач-кардиолог, отделение врожденных и приобретенных пороков сердца у взрослых и подростков, Центр детской кардиологии и кардиохирургии МЗ Украины, г. Киев, Украина.
https://orcid.org/0000-0002-4487-6819
Маньковский Георгий Борисович, к.м.н., врач-кардиолог интервенционный, отделение экстренной рентгенологической диагностики, Центр детской кардиологии и кардиохирургии» МЗ Украины,
г. Киев, Украина.
https://orcid.org/0000-0003-4980-4571
Марушко Евгений Юрьевич, к.м.н., врач-интервенционный кардиолог, отделение экстренной рентгенологической диагностики, Центр детской кардиологии и кардиохирургии МЗ Украины, г. Киев, Украина.
https://orcid.org/0000-0002-0696-9926
Контакты | ©Витебский государственный медицинский университет, 2007