2014 г. №1 Том 22

ЭКСПЕРИМЕHТАЛЬHАЯ ХИРУРГИЯ

E. MATEVOSSIAN, I. SNOPOK, ANNE-K VON THADE, G. BABARYKA, D. DOLL

ТРАHСПЛАHТАЦИЯ ПЕЧЕHИ У КРЫСЫ: ОПИСАHИЕ ЭКСПЕРИМЕHТАЛЬHОГО ОПЫТА, ХИРУРГИЧЕСКОЙ ТЕХHИКИ И ФУHКЦИИ ТРАHСПЛАHТАТА

Университетская клиника «Рехтс дер Изар», Мюнхенский технический университет1, Мюнхен, Германия
Мюнхенский Центр трансплантации, Университетская клиника «Рехтс дер Изар», Мюнхенский технический университет2, Мюнхен, Германия
Клиника Санкт-Лукас 3, Золинген, Германия
Центр доклинических исследований, Университетская клиника «Рехтс дер Изар», Мюнхенский технический университет 4, Мюнхен, Германия
Институт общей патологии и патологической анатомии, Университетская клиника «Рехтс дер Изар» 5, Мюнхенский технический университет, Мюнхен, Германия
Католическая клиника Ольденбургер Мюнстерланд, больница Св. Марии 6, Фехта, Германия

Цель. Разработка модели острого и хронического отторжения графта печени у крысы, изучение возникающих при этом гистологических и функциональных изменений, а также изучениe технических модификаций микрососудистых анастомозов.
Материал и методы. Донорами выступали крысы линии DA-(RT1av1), реципиентами – крысы линии Lewis-(RT1). Артериализирующая ортотопическая трансплантация печени (ОТП) выполнялась с помощью комбинированного шва, манжетного метода и split-техники. Реципиенты разделялись на 4 группы: контрольные группы сингенных (I) и аллогенных (II) животных, аллогенные крысы (III) с адекватной иммуносупрессией FK506 (Tacrolimus, Prograf®) и антеградной реперфузией графта, а также аллогенные крысы с адекватной иммуносупрессией и ретроградной реперфузией графта (IV). После ОТП выполнялись контроль параметров сыворотки крови и исследование образцов тканей трансплантатов печени. Изучались гистопатологические особенности реакции острого отторжения при терапии иммуносупрессантом и без нее.
Результаты. У сингенных (I) и аллогенных крыс с иммуносупрессией (группы III и IV) на 10 день после ОТП отмечались нормальные гистоархитектоника графтов и показатели сыворотки крови. Трехмесячная выживаемость составила 98%. Во всех группах животных упрощенная техника ОТП с одним шовным и двумя манжетными анастомозами позволила получить наилучшую кратко- и долгосрочную выживаемость. Ретроградная реперфузия графта через подпеченочную часть V. cava inferior продемонстрировала наиболее низкие показатели печеночных ферментов в сыворотке крови.
Заключение. Представленная экспериментальная модель является легко воспроизводимой и может применяться для всесторонних фундаментальных исследований трансплантации печени. В настоящей работе приведены практические указания для быстрого освоения этой операции.

Ключевые слова: трансплантация печени, модель на крысе, хирургический метод, отторжение, иммуносупрессия
с. 18 – 25 оригинального издания
Список литературы
  1. Organ Procurement and Transplantation Network: OPTN http//www.optn.org.
  2. Koller FL, Geevarghese SK, Gorden DL. Liver transplantation for hepatocellular carcinoma: current role and future opportunities. Curr Pharm Des. 2007;13(32):3265–73.
  3. Figueras J, Ibanez L, Ramos E, Jaurrieta E, Ortiz-de-Urbina J, Pardo F, Mir J, Loinaz C, Herrera L, Lopez-Cillero P, Santoyo J. Selection criteria for liver transplantation in early-stage hepatocellular carcinoma with cirrhosis: results of a multicenter study. Liver Transpl. 2001 Oct;7(10):877–83.
  4. Spiegel HU, Palmes D. Surgical techniques of orthotopic rat liver transplantation. J Invest Surg. 1998 Mar-Apr;11(2):83–96.
  5. Lee S, Charters AC 3rd, Orloff MJ. Simplified technic for orthotopic liver transplantation in the rat. Am J Surg. 1975 Jul;130(1):38–40.
  6. Lee S, Charters AC, Chandler JG, Orloff MJ. A technique for orthotopic liver transplantation in the rat. Transplantation. 1973 Dec;16(6):664–69.
  7. Engemann R, Thiede A, Deltz E, Hamelmann H, eds. Technique for orthotopic rat liver transplantation. In: Microsurgical models in rats for transplantation research. Berlin, Germany: Springer Verlag; 1985. p. 69–75.
  8. Kamada N, Calne RY. Orthotopic liver transplantation in the rat. Technique using cuff for portal vein anastomosis and biliary drainage. Transplantation. 1979 Jul;28(1):47–50.
  9. Steffen R, Ferguson DM, Krom RA. A new method for orthotopic rat liver transplantation with arterial cuff anastomosis to the recipient common hepatic artery. Transplantation. 1989 Jul;48(1):166–68.
  10. Zimmermann FA, Butcher GW, Davies HS, Brons G, Kamada N, Turel O. Techniques for orthotopic liver transplantation in the rat and some studies of the immunologic responses to fully allogeneic liver grafts. Transplant Proc. 1979 Mar;11(1):571–77.
  11. Li ZK, Ma Y, Xu C. Animal model and modified technique of orthotopic liver transplantation in rats. Zhongguo Xiu Fu Chong Jian Wai Ke Za Zhi. 2004 Jan;18(1):34–36.
  12. Kern H, Bald C, Brill T, Fend F, von Weihern CH, Kriner M, Huser N, Thorban S, Stangl M, Matevossian E. The influence of retrograde reperfusion on the ischaemia-/reperfusion injury after liver transplantation in the rat. Int J Exp Pathol. 2008 Dec;89(6):433–37.
  13. Huser N, Doll D, Altomonte J, Werner M, Kriner M, Preissel A, Thorban S, Matevossian E. Graft preconditioning with low-dose tacrolimus (FK506) and nitric oxide inhibitor aminoguanidine (AGH) reduces ischemia/reperfusion injury after liver transplantation in the rat. Arch Pharm Res. 2009 Feb;32(2):215–20.
  14. Miyata M, Fischer JH, Fuhs M, Isselhard W, Kasai Y. A simple method for orthotopic liver transplantation in the rat. Cuff technique for three vascular anastomoses. Transplantation.1980 Nov;30(5):335–8.
  15. Matevossian E, Doll D, Huser N, Brauer R, Sinicina I, Nahrig J, Friess H, Stangl M, Assfalg V. Liver transplantation in the rat: single-center experience with technique, long-term survival, and functional and histologic findings. Transplant Proc. 2009 Jul-Aug;41(6):2631–6.
  16. Kamada N, Calne RY. A surgical experience with five hundred thirty liver transplants in the rat. Surgery. 1983 Jan;93(1 Pt 1):64–9.
  17. Tan F, Chen Z, Zhao Y, Liang T, Li J, Wei J. Novel technique for suprahepatic vena cava reconstruction in rat orthotopic liver transplantation. Microsurgery. 2005;25(7):556–60.
  18. Li J, Dahmen U, Dirsch O, Shen K, Gu Y, Broelsch CE. Modified sleeve anastomosis for reconstruction of the hepatic artery in rat liver transplantation. Microsurgery. 2002;22(2):62–68.
  19. Delriviere L, Kamada N, Goto S, Kobayashi E. Retransplantation of the liver in the rat. Microsurgery. 1993;14(6):416–19.
  20. Kashfi A, Mehrabi A, Pahlavan PS, Schemmer P, Gutt CN, Friess H, Gebhard MM, Schmidt J, Buchler MW, Kraus TW. A review of various techniques of orthotopic liver transplantation in the rat. Transplant Proc. 2005 Jan-Feb;37(1):185–88.
  21. Li N, Cai CJ, Wu YR, Lu MQ. A technique of recipient portal venoplasty and cuff insertion for portal revascularization in orthotopic rat liver transplantation. J Surg Res. 2012 Jul;176(1):317–20.
  22. Peng Y, Gong JP, Yan LN, Li SB, Li XH. Improved two-cuff technique for orthotopic liver transplantation in rat. Hepatobiliary Pancreat Dis Int. 2004 Feb;3(1):33–37.
Адрес для корреспонденции:
Priv.-Doz. Dr. med. habil. Edouard Matevossian, MD, Department of Surgery,
Klinikum rechts der Isar, Technische Universität München, Ismaninger Strasse 22, 81675 Munich, Germany.
e-mail: edouard.matevossian@tum.de
Cведения об авторах:
Матевосян Э. Доктор медицины, профессор хирургии, Клиника “Rechts der Isar“, Технический Университет Мюнхена, Мюнхен, Германия
Снопок И. Ассистент хирурга, клиника Св. Лукаса, Золинген, Германия
Таден А. Доктор медицины, Центр доклинических исследований, Клиника “Rechts der Isar“, Технический Университет Мюнхена, Мюнхен, Германия.
Бабарыка Г. Институт общей патологии и патологической анатомии, клиника “Rechts der Isar“, Технический Университет Мюнхена, Мюнхен, Германия.
Долл Д. Доктор медицины, профессор хирургии, Католическая больница Ольденбурга, больница Св. Марии, Фехта, Германия.
Контакты | ©Витебский государственный медицинский университет, 2007-2023