Новости
хирургии

 Журнал включен
в систему цитирования Scopus
journal cover
android icon Приложение Android

2023 г. №2 Том 31

НАУЧHЫЕ ПУБЛИКАЦИИ

А.И. ДОВHАР

ОТДАЛЕHHЫЕ РЕЗУЛЬТАТЫ КРАHИОПЛАСТИКИ С ПРИМЕHЕHИЕМ БЕЛОРУССКОГО КОМПОЗИЦИОHHОГО МАТЕРИАЛА В ЭКСПЕРИМЕHТЕ

Гродненский государственный медицинский университет, г. Гродно,
Республика Беларусь

Цель. Изучение возможности применения белорусского композиционного материала «Суперфлувис» в качестве средства замещения костной ткани черепа в эксперименте.
Материал и методы. Исследование производилось на 18 беспородных кроликах обоего пола, однородных по массе и возрасту. Кроликам выполнялась экспериментальная трепанация черепа с её пластическим закрытием материалом «Суперфлувис» (группа «опыт-1»), титаном (группа «контроль») и без закрытия трепанационного дефекта (группа «опыт-2»). Животные выводились из эксперимента на 180-е сутки после операции. Перед выведением бралась венозная кровь для изучения показателей биохимического анализа крови и измерялась масса животных. При аутопсии производился расчет массовых коэффициентов внутренних органов и проводилось гистологическое изучение внутренних органов, а также головного мозга и его оболочек.
Результаты. Анализ результатов биохимического анализа крови кроликов выявил статистически значимый низкий показатель уровня АСТ на 180-е сутки после операции в группе «опыт-1» относительно групп «контроль» (p<0,05) и «опыт-2» (p<0,05). При этом не наблюдается статистически достоверного снижения показателя АСТ в группе «опыт-1» на 180-е сутки после операции по сравнению с дооперационными значениями. Отмечается тенденция к повышению уровня глюкозы на 180-е сутки после операции по сравнению с дооперационными значениями в группе «опыт-2» (p=0,08). Статистически достоверных различий в других одноименных показателях биохимического анализа крови в исследуемых группах в данные сроки обнаружено не было. Расчеты массовых коэффициентов сердца, легкого, правой и левой почки, селезенки и тимуса во всех исследуемых группах животных не выявили статистически значимых различий между группами кроликов. Однако выявлено достоверное увеличение массового коэффициента печени у кроликов в группе «контроль» в сравнении с группой «опыт-1» (p=0,022). Статистически значимого увеличения массового коэффициента печени между группами животных «контроль» и «опыт-2» не наблюдалось.
Заключение. Композиционный материал «Суперфлувис» не обладает токсическим действием по отношению к жизненно важным органам экспериментального животного при длительном применении (180 суток).

Ключевые слова: композиционный материал, дефект черепа, титан, массовый коэффициент, кролики
с. 89-97 оригинального издания
Список литературы
  1. Кравчук АД, Потапов АА, Лихтерман ЛБ, Еропкин СВ. Посттравматические дефекты черепа: клиническое руководство по черепно-мозговой травме. Москва, РФ; 2002. с. 144–160.
  2. Alibhai MK, Balasundaram I, Bridle C, Holmes SB. Is there a therapeutic role for cranioplasty? Int J Oral Maxillofac Surg. 2013 May;42(5):559-61. doi: 10.1016/j.ijom.2013.01.001
  3. Servadei F, Iaccarino C. The therapeutic cranioplasty still needs an ideal material and surgical timing. World Neurosurg. 2015 Feb;83(2):133-35. doi: 10.1016/j.wneu.2014.08.031
  4. Stiver SI. Complications of decompressive craniectomy for traumatic brain injury. Neurosurg Focus. 2009 Jun;26(6):E7. doi: 10.3171/2009.4.FOCUS0965
  5. Zanotti B, Zingaretti N, Verlicchi A, Robiony M, Alfieri A, Parodi PC. Cranioplasty: Review of Materials. J Craniofac Surg. 2016 Nov;27(8):2061-2072. doi: 10.1097/SCS.0000000000003025
  6. Textor M, Downes S. Biodegradable polymer/hydroxyapatite composites: surface analysis and initial attachment of human osteoblasts. J Biomed Mater Res. 2001 Jun 15;55(4):475-86. doi: 10.1002/1097-4636(20010615)55:4<475::aid-jbm1039>3.0.co;2-q
  7. Bonfield CM, Kumar AR, Gerszten PC. The history of military cranioplasty. Neurosurg Focus. 2014 Apr;36(4):E18. doi: 10.3171/2014.1.FOCUS13504
  8. Harris DA, Fong AJ, Buchanan EP, Monson L, Khechoyan D, Lam S. History of synthetic materials in alloplastic cranioplasty. Neurosurg Focus. 2014 Apr;36(4):E20. doi: 10.3171/2014.2.FOCUS13560.
  9. Чочаева АМ, Белимготов БХ. Краниопластика аутокостью черепа при черепно-мозговой травме. Санкт-Петербург, РФ; 2007. с. 122-125.
  10. Spetzger U, Vougioukas V, Schipper J. Materials and techniques for osseous skull reconstruction. Minim Invasive Ther Allied Technol. 2010 Apr;19(2):110-21. doi: 10.3109/13645701003644087
  11. Williams L, Fan K, Bentley R. Titanium cranioplasty in children and adolescents. J Craniomaxillofac Surg. 2016 Jul;44(7):789-94. doi: 10.1016/j.jcms.2016.03.010
  12. Lee SC, Wu CT, Lee ST, Chen PJ. Cranioplasty using polymethyl methacrylate prostheses. J Clin Neurosci. 2009 Jan;16(1):56-63. doi: 10.1016/j.jocn.2008.04.001
  13. Chai YC, Bolander J, Papantoniou I, Patterson J, Vleugels J, Schrooten J, Luyten FP. Harnessing the osteogenicity of in vitro stem cell-derived mineralized extracellular matrix as 3D biotemplate to guide bone regeneration. Tissue Eng Part A. 2017 Sep;23(17-18):874-890. doi: 10.1089/ten.tea.2016.0432
  14. Шелестова ВА, Гракович ПН, Данченко СГ. Композит суперфлувис и его применение в узлах трения. Вопросы материаловедения. 2012;4(72):210?216.
Адрес для корреспонденции:
230009, Республика Беларусь,
г. Гродно, ул. Горького, д. 80,
Гродненский государственный
медицинский университет,
кафедра неврологии и нейрохирургии,
тел.: +375 297 890265,
e-mail: dovnarneiro@gmail.com,
Довнар Андрей Игоревич
Cведения об авторах:
Довнар Андрей Игоревич, ассистент кафедры неврологии и нейрохирургии, Гродненский государственный медицинский университет, г. Гродно, Республика Беларусь.
http://orcid.org/0000-0001-5535-2036

А.А. КИHЗЕРСКИЙ 1, 2, М.С. КОРЖУК 3, 4, В.Т. ДОЛГИХ 5, Т.С. СОЛОВЬЕВА 6, Р.В. ЕСЕЛЕВИЧ 4, О.В. БАЛЮРА 4, И.И. КОТОВ 2

ВЛИЯHИЕ ПАТОГЕHЕТИЧЕСКОЙ ТЕРАПИИ HА КОАГУЛОПАТИЮ ПОСЛЕ ТЯЖЕЛОЙ ТРАВМЫ ПЕЧЕHИ

БУЗОО «Городская клиническая больница скорой помощи № 1» 1,
ФГБУ ВО «Омский государственный медицинский университет» МЗ России РФ 2, г. Омск,
ФГБУ «НМИЦ онкологии им. Н.Н. Петрова» МЗ России РФ 3,
ФГБВОУ ВО «Военно-медицинская академия им. С.М. Кирова» МО РФ 4,
НИИ общей реаниматологии им. В.А. Неговского ФГБНУ «Федеральный научно-клинический центр реаниматологии и реабилитологии» 5,
ФГБУЗ «Санкт-Петербургская клиническая больница Российской академии наук» 6,
г. Санкт-Петербург,
Российская Фдерация

Цель. Изучение влияния патогенетической терапии (ПГТ) и пути введения ее компонентов на развивающуюся коагулопатию на авторской модели закрытой тяжелой травмы печени.
Материал и методы. Крыс-самцов Wistar (n=100) массой 379±23 г рандомизировали в 3 группы: I – контрольную (n=42), II – опытную (n=34), III – доноров (n=24). Травму моделировали по авторской методике. Опытную группу на 60-й минуте после травмы рандомизировали в 3 подгруппы: II-I (n=12) – введение компанентов ПГТ в бедренную вену, II-II (n=12) – введение компанентов ПГТ в воротную вену, II-III (n=10) – без ПГТ. Компоненты ПГТ: раствор транексамовой кислоты 100 мг/кг (0,8 мл), нативная плазма (2 мл) и плазма, богатая тромбоцитами (2 мл). Скорость введения смеси – 0,5 мл/мин. Исследовали общий и биохимический анализ крови, коагулограмму, параметры низкочастотной пьезотромбоэластографии и пьезоагрегатометрии.
Результаты. ПГТ подавляет гиперфибринолиз на 10-й (p=0,012), 30-й минуте (p=0,032) после достижения максимальной плотности тромба, стабилизирует уровни протеина С (p=0,14), антитромбина-III (p=1), константы противосвертывающей активности (p=0,29), фибриногена (p=0,1), интенсивности коагуляционного драйва (p=0,25), тромбиновой активности (p=0,65), количества тромбоцитов (p=0,38), их ретракции (p=1) и агрегации (p=0,058), АЧТВ (p=0,29), несмотря на прогрессирование полиорганной недостаточности и травматического шока (потребность инфузии, рост лактата (p=0,00000036) до 140-й минуты). Эффекты ПГТ на коагулопатию при введении в воротную и в бедренную вену не отличаются (p=0,7). Обнаружен гепатопротективный эффект ПГТ: уровни АсАт (p=0,58) и АлАт (p=1), билирубина (p=1), общего белка стабильны (p=1), при нарастании почечной недостаточности: креатинина (p=0,0042) и мочевины (p=0,049).
Заключение. ПГТ, включающая раствор транексамовой кислоты, нативную плазму и плазму, богатую тромбоцитами, подавляет коагулопатию после тяжелой закрытой травмы печени в эксперименте при введении компонентов как в бедренную так и в воротную вену, и обладает гепатопротективным эффектом.

Ключевые слова: травма печени, плазма, крысы Wistar, коагулопатия, низкочастотная пьезотромбоэластография, низкочастотная пьезоагрегатометрия
с. 98-116 оригинального издания
Список литературы
  1. Afifi I, Abayazeed S, El-Menyar A, Abdelrahman H, Peralta R, Al-Thani H. Blunt liver trauma: a descriptive analysis from a level I trauma center. BMC Surg. 2018 Jun 19;18(1):42. doi: 10.1186/s12893-018-0369-4
  2. Doklestić K, Djukić V, Ivančević N, Gregorić P, Lončar Z, Stefanović B, Jovanović D, Karamarković A. Severe blunt hepatic trauma in polytrauma patient - management and outcome. Srp Arh Celok Lek. 2015 Jul-Aug;143(7-8):416-22. doi: 10.2298/sarh1508416d
  3. Heuer M, Taeger G, Kaiser GM, Nast-Kolb D, Kuehne CA, Ruchholtz S, Lefering R, Paul A, Lendemans S; Trauma Registry of the DGU. Prognostic factors of liver injury in polytraumatic patients. Results from 895 severe abdominal trauma cases. J Gastrointestin Liver Dis [Electronic resource]. 2009 Jun [cited 2023 Mar 23];18(2):197-203. Available from: https://www.jgld.ro/jgld/index.php/jgld/article/view/2009.2.11/1030
  4. Spahn DR, Bouillon B, Cerny V, Duranteau J, Filipescu D, Hunt BJ, Komadina R, Maegele M, Nardi G, Riddez L, Samama CM, Vincent JL, Rossaint R. The European guideline on management of major bleeding and coagulopathy following trauma: fifth edition. Crit Care. 2019 Mar 27;23(1):98. doi: 10.1186/s13054-019-2347-3
  5. Kornblith LZ, Moore HB, Cohen MJ. Trauma-Induced Coagulopathy: The Past, Present, and Future. J Thromb Haemost. J Thromb Haemost. 2019 Jun;17(6):852-62. doi: 10.1111/jth.14450
  6. Moore EE, Moore HB, Kornblith LZ, Neal MD, Hoffman M, Mutch NJ, Schöchl H, Hunt BJ, Sauaia A. Trauma-induced coagulopathy. Nat Rev Dis Primers. 2021 Apr 29;7(1):30. doi: 10.1038/s41572-021-002.64-3
  7. Wu X, Darlington DN, Cap AP. Procoagulant and fibrinolytic activity after polytrauma in rat. Am J Physiol Regul Integr Comp Physiol. 2016 Feb 15; 310(4):R323-R29. doi: 10.1152/ajpregu.00401.2015
  8. Кинзерский АА, Коржук МС, Долгих ВТ, Кинзерская ДА, Романенко СВ. Модель закрытой тупой тяжелой травмы печени с коагулопатией у мелких лабораторных животных. Патент RU 2674379. 2018 Дек 7.
  9. Кинзерский АА, Коржук МС, Долгих ВТ. Способ лечения тяжелой травмы печени с посттравматической коагулопатией. Патент RU 2639422. 2017 Дек 12.
  10. Lee HB, Blaufox MD. Blood volume in the rat J Nucl Med [Electronic resource]. 1985 Jan [cited 2023 Mar 23];26(1):72-66. Available from: https://jnm.snmjournals.org/content/26/1/72
  11. Долгих ВТ, Коршунов АП, Золотов АН, Коняева ТП, Евпак ЕВ. Устройство для геморрагической гипотензии у мелких лабораторных животных. Патент RU 49442. 2005 Нояб 27.
  12. Кинзерский АА, Долгих ВТ, Коржук МС. Способ выполнения низкочастотной пьезотромбоэластографии у мелких лабораторных животных. Патент RU 2634567. 2017 Окт 31.
  13. Кинзерский АА, Долгих ВТ, Коржук МС. Способ оценки функции тромбоцитов в цельной цитратной крови: Патент RU 2659421. 2018 Июль 2.
  14. Кинзерский АА, Петрова ЮА, Коржук МС, Долгих ВТ. Нормальные значения общего, биохимического анализа крови и коагулограммы крыс-самцов линии Wistar. Свидетельство о гос рег базы данных RU 2017620486. 2017 Май 2.
  15. Кинзерский АА, Коржук МС, Долгих ВТ. Устройство для моделирования тупой травмы печени у мелких лабораторных животных по механизму «Удар». Патент RU 163861. 2016 Авг 10.
  16. Cox JM, Kalns JE. Development and characterization of a rat model of nonpenetrating liver trauma. Comp Med. 2010 Jun; 60(3):218-24.
  17. Кинзерский АА, Долгих ВТ, Коржук МС, Кинзерская ДА, Зайцева ВЕ. Особенности системы гемостаза крысы линии Wistar, важные для экспериментальной хирурги. Вестн Эксперим и Клин Хирургии. 2018;11(2):126-33. doi: 10.18499/2070-478x-2018-11-2-126-133
  18. Кинзерский АА, Долгих ВТ, Коржук МС, Кинзерская ДА, Романенко СВ. Влияние гемодилюции in vitro и in vivo на систему гемостаза. Общ Реаниматология. 2021;17(4):44-64. doi: 10.15360/1813-9779-2021-4-1-0
  19. Wada T, Shiraishi A, Gando S, Yamakawa K, Fujishima S, Saitoh D, Kushimoto S, Ogura H, Abe T, Mayumi T, Sasaki J, Kotani J, Takeyama N, Tsuruta R, Takuma K, Yamashita N, Shiraishi SI, Ikeda H, Shiino Y, Tarui T, Nakada TA, Hifumi T, Okamoto K, Sakamoto Y, Hagiwara A, Masuno T, Ueyama M, Fujimi S, Umemura Y, Otomo Y. Disseminated intravascular coagulation immediately after trauma predicts a poor prognosis in severely injured patients. Sci Rep. 2021 May 26;11(1):11031. doi: 10.1038/s41598-021-90492-0
  20. Черноусов АФ, Хоробрых ТВ, Пастухов ДВ. Лапароскопическая обработка травматических повреждений печени у больных с тяжелой сочетанной травмой Вестник хирургической гастроэнтерологии [Электронный ресурс]. 2008 [дата обращения: 2023 Март 23];(1):37-40. http://vidar.ru/Article.asp?fid=VSG_2008_1_37
  21. Moore HB, Moore EE. Temporal Changes in Fibrinolysis following Injury. Semin Thromb Hemost. 2020 Mar;46(2):189-98. doi: 10.1055/s-0039-1701016
  22. Huebner BR, Moore EE, Moore HB, Gonzalez E, Kelher M R, Sauaia A, Banerjee A, Silliman CC. Thrombin stimulates increased plasminogen activator inhibitor-1 release from liver compared to lung endothelium. J Surg Res. 2018 May; 225:1-5. doi: 10.1016/j.jss.2017.12.017
  23. Gonzalez E, Moore EE, Moore HB. Management of Trauma-Induced Coagulopathy with Thrombelastography. Crit Care Clin. 2017 Jan;33(1):119-134. doi: 10.1016/j.ccc.2016.09.002
  24. Kutcher ME, Ferguson AR, Cohen MJ. A principal component analysis of coagulation after trauma. J Trauma Acute Care Surg. 2013 May;74(5):1223-9; discussion 1229-30. doi: 10.1097/TA.0b013e31828b7fa1
  25. Cohen MJ, Kutcher M, Redick B, Nelson M, Call M, Knudson MM, Schreiber MA, Bulger EM, Muskat P, Alarcon LH, Myers JG, Rahbar MH, Brasel KJ, Phelan HA, del Junco DJ, Fox EE, Wade CE, Holcomb JB, Cotton BA, Matijevic N. Сlinical and mechanistic drivers of acute traumatic coagulopathy. J Trauma Acute Care Surg. 2013 Jul;75(1 Suppl 1):S40-47. doi: 10.1097/TA.0b013e31828fa43d
  26. Wada T, Shiraishi A, Gando S, Kabata D, Yamakawa K, Fujishima S, Saitoh D, Kushimoto S, Ogura H, Abe T, Mayumi T, Otomo Y. Association of antithrombin with development of trauma-induced disseminated intravascular coagulation and outcomes. Front Immunol. 2022 Dec 9;13:1026163. doi: 10.3389/fimmu.2022.1026163
  27. Moore HB, Moore EE, Morton AP, Gonzalez E, Fragoso M, Chapma MP, Dzieciatkowska M, Hansen KC, Banerjee A, Sauaia A, CC Silliman. Shock-induced systemic hyperfibrinolysis is attenuated by plasma first resuscitation. J Trauma Acute Care Surg. 2015 Dec; 79(6):897-904. doi: 10.1097/TA.0000000000000792
  28. Kleinveld DJB, Wirtz MR, Brink van den DP, Maas MAW, Roelofs JJTH, Goslings JC, Hollmann MW, Juffermans NP. Use of a high platelet-to-RBC ratio of 2:1 is more effective in correcting trauma-induced coagulopathy than a ratio of 1:1 in a rat multiple trauma transfusion model. Intensive Care Med Exp. 2019 Jul 25;7(Suppl 1):42. doi: 10.1186/s40635-019-0242-5
  29. Dyer MR, Hickman DA, Luc N, Haldeman S, Loughran P, Pawlwoski C, Gupta AS, Neal MD. Intravenous administration of synthetic platelets (SynthoPlate) in a mouse liver injury model of uncontrolled hemorrhage improves hemostasis. J Trauma Acute Care Surg. 2018 Jun; 84(6):917-23. doi: 10.1097/TA.0000000000001893
  30. Joseph BC, Miyazawa BY, Esmon CT, Cohen MJ, Drygalski A, Mosnier LO. An engineered activated factor V for the prevention and treatment of acute traumatic coagulopathy and bleeding in mice. Blood Adv. 2022 Feb 8;6(3):959-69. doi: 10.1182/bloodadvances.2021005257
  31. Shah NM, Chong SE, Yusoff SM, Mazlan MZ, Johan KB, Azman N, Lim JA, Mohamad SM, Noordin SS, Ghaffar ZA, Hassan MH, Zabidi MA, Rahim NAA. Recombinant activated factor VII (rFVIIa) in refractory haemorrhage for non-haemophiliacs: an eleven-year single-centre experience. BMC Hematol. 2018 Nov 23;18:34. doi: 10.1186/s12878-018-0126-z
  32. Peng HT, Nascimento B, Rhind SG, da Luz L, Beckett A. Evaluation of trauma-induced coagulopathy in the fibrinogen in the initial resuscitation of severe trauma trial. Transfusion. 2021 Jul;61(Suppl 1):S49-S57. doi: 10.1111/trf.16488
  33. Moore EE, Moore HB, Chapman MP, Gonzalez E, Sauaia A. Goal-directed hemostatic resuscitation for trauma induced coagulopathy: maintaining homeostasis. J Trauma Acute Care Surg. 2018 Jun;84(6S Suppl 1):S35-S40. doi: 10.1097/TA.0000000000001797
  34. Tzeng W-J, Tseng H-Y, Hou T-Y, Chou S-E, Su W-T, Hsu S-Y, Hsieh C-H. From death triad to death tetrad-the addition of a hypotension component to the death triad improves mortality risk stratification in trauma patients: a retrospective cohort study. Diagnostics (Basel). 2022 Nov 21;12(11):2885. doi: 10.3390/diagnostics12112885
  35. Coleman JR, Moore E E, Samuels JM, Cohen MJ, Silliman CC, Ghasabyan A, Chandler J, Butenas S. Whole blood thrombin generation in severely injured patients requiring massive transfusion. J Am Coll Surg. 2021 May;232(5):709-16. doi: 10.1016/j.jamcollsurg.2020.12.058
  36. Huebner BR, Moore EE, Moore HB, Stettler GR, Nunns GR, Lawson P, Sauaia A, Kelher M, Banerjee A, Silliman CC. Thrombin provokes degranulation of platelet α-granules leading to the release of active plasminogen activator inhibitor-1 (PAI-1). Shock. 2018 Dec;50(6):671-76. doi: 10.1097/SHK.0000000000001089
  37. Darlington DN, Wu X, Keesee JD, Cap AP. Severe trauma and hemorrhage leads to platelet dysfunction and changes in cyclic nucleotides in the rat. Shock. 2020 Apr;53(4):468-75. doi: 10.1097/SHK.0000000000001379
  38. Wallen TE, Baucom MR, Hanseman D, Wang Y-WW, Wade CE, Holcomb JB, Pritts TA, Goodman MD. Platelet dysfunction persists after trauma despite balanced blood product resuscitation. Surgery. 2023 Mar;173(3):821-29. doi: 10.1016/j.surg.2022.09.017
  39. Verni CC, Davila A, Balian S, Sims CA, Diamond SL. Platelet dysfunction during trauma involves diverse signaling pathways and an inhibitory activity in patient-derived plasma. J Trauma Acute Care Surg. 2019 Feb;86(2):250-59. doi: 10.1097/TA.0000000000002140
  40. Verni CC, Davila A, Sims CA, Diamond SL. D-dimer and fibrin degradation products impair platelet signaling: plasma d-dimer is a predictor and mediator of platelet dysfunction during trauma. J Appl Lab Med. 2020 Nov 1;5(6):1253-64. doi: 10.1093/jalm/jfaa047
  41. Moore HB, Moore EE, Lawson PJ, Gonzalez E, Fragoso M, Morton AP, Gamboni F, Chapman MP, Sauaia A, Banerjee A, Silliman CC. Fibrinolysis shutdown phenotype masks changes in rodent coagulation in tissue injury versus hemorrhagic shock. Surgery. 2015 Aug;158(2):386-92. doi: 10.1016/j.surg.2015.04.008
  42. Neeki MM, Dong F, Toy J, Vaezazizi R, Powell J, Wong D, Mousselli M, Rabiei M, Jabourian A, Niknafs N, Burgett-Moreno M, Vara R, Kissel S, Luo-Owen X, O’Bosky KR, Ludi D, Sporer K, Pennington T, Lee T, Borger R, Kwong E. Tranexamic acid in civilian trauma care in the California prehospital antifibrinolytic therapy study. West J Emerg Med. 2018 Nov; 19(6):977–86. doi: 10.5811/westjem.2018.8.39336
  43. Girish A, Hickman DA, Banerjee A, Luc N, Ma Y, Miyazawa K, Sekhon UDS, Sun M, Huang S, Gupta AS. Trauma-targeted delivery of tranexamic acid improves hemostasis and survival in rat liver hemorrhage model. J Thromb Haemost. 2019 Oct;17(10):1632-44. doi: 10.1111/jth.14552
  44. Guyette FX, Brown JB, Zenati MS, Early-Young BJ, Adams PW, Eastridge BJ, Nirula R, Vercruysse GA, ‘Keeffe T, Joseph B, Alarcon LH, Callaway CW, Zuckerbraun BS, Neal MD, Forsythe RM, Rosengart MR, Billiar TR, Yealy DM, Peitzman AB, Sperry JL. Tranexamic acid during prehospital transport in patients at risk for hemorrhage after injury: a double-blind, placebo-controlled, randomized clinical trial. JAMA Surg. 2020 Oct 5;156(1):11-20. doi: 10.1001/jamasurg.2020.4350
  45. Kodali S, Holmes CE, Tipirneni E, Cahill CR, Goodwin AJ, Cushman M. Successful management of refractory bleeding in liver failure with tranexamic acid: Сase report and literature review. Res Pract Thromb Haemost. 2019 Apr 26;3(3):424-28. doi: 10.1002/rth2.12203
  46. Wu X, Benov A, Darlington DN, Keesee JD, Liu B, Cap AP. Effect of tranexamic acid administration on acute traumatic coagulopathy in rats with polytrauma and hemorrhage. PLoS One. 2019;14(10): e0223406. doi: 10.1371/journal.pone.0223406
  47. Bocci MG, Nardi G, Veronesi G, Rondinelli MB, Palma A, Fiore V, De Candia E, Bianchi M, Maresca M, Barelli R, Tersali A, Dell’Anna AM, De Pascale G, Cutuli SL, Mercurio G, Caricato A, Grieco DL, Antonelli M, Cingolani E. Early coagulation support protocol: a valid approach in real-life management of major trauma patients. Results from two italian centres. Injury. 2019 Oct;50(10):1671-77. doi: 10.1016/j.injury.2019.09.032
  48. Miyazaki M, Kato M, Tanaka M, Tanaka K, Takao S, Kohjima M, Ito T., Enjoji M, Nakamuta M, Kotoh K, Takayanagi R. Antithrombin III injection via the portal vein suppresses liver damage. World J Gastroenterol. 2012 Apr 28; 18(16): 1884-91. doi: 10.3748/wjg.v18.i16.1884
  49. Harada N, Okajima K, Kushimoto S, Isobe H, Tanaka K. Antithrombin reduces ischemia/reperfusion injury of rat liver by increasing the hepatic level of prostacyclin. J Blood. 1999;93(1):157-64.
  50. Ren D, Giri H, Li J, Rezaie AR The cardioprotective signaling activity of activated protein c in heart failure and ischemic heart diseases. Int J Mol Sci. 2019 Apr 10;20(7):1762. doi: 10.3390/ijms20071762
Адрес для корреспонденции:
644074, Российская Федерация,
г. Омск, проспект Комарова, д.17/3 кв. 96,
тел.: +7-913-151-39-89,
e-mail: kinzerskij@mail.ru,
Кинзерский Александр Анатольевич
Cведения об авторах:
Кинзерский Александр Анатольевич, врач-хирург хирургического отделения БУЗОО «Городская клиническая больница скорой помощи №1», ассистент кафедры госпитальной хирургии им. Н.С. Макохи ФГБУ ВО «Омский государственный медицинский университет» МЗ России, г. Омск, Российская Федерация.
http://orcid.org/0000-0001-5749-1873
Коржук Михаил Сергеевич, д.м.н., профессор, преподаватель кафедры военно-морской хирургии ФГБВОУ ВО «Военно-медицинская академия им. С.М. Кирова» МО РФ, научный сотрудник научной лаборатории химиопрофилактики рака и онкофармакологии ФГБУ «НМИЦ онкологии им. Н.Н. Петрова» МЗ России, Российская Федерация.
http://orcid.org/0000-0002-4579-2027
Долгих Владимир Терентьевич, д.м.н., профессор, заслуженный деятель науки РФ, главный научный сотрудник НИИ общей реаниматологии им. В.А. Неговского ФГБНУ «Федеральный научно-клинический центр реаниматологии и реабилитологии», Российская Федерация.
http://orcid.org/0000-0001-9034-4912
Соловьева Татьяна Сергеевна, врач-патологоанатом ФГБУЗ «Санкт-Петербургская клиническая больница Российской академии наук», Российская Федерация.
http://orcid.org/0009-0005-2672-276X
Еселевич Роман Владимирович, к.м.н., майор медицинской службы, начальник онкологического отделения клиники кафедры военно-морской хирургии ФГБВОУ ВО «Военно-медицинская академия им. С.М. Кирова» МО РФ.
http://orcid.org/0000-0003-3249-233X
Балюра Олег Валерьевич, к.м.н., майор медицинской службы, старший преподаватель кафедры военно-морской хирургии ФГБВОУ ВО «Военно-медицинская академия им. С.М. Кирова» МО, Российская Федерация.
http://orcid.org/0000-0001-7826-8056
Котов Игорь Игнатьевич, д.м.н., доцент, профессор кафедры госпитальной хирургии им. Н.С. Макохи ФГБУ ВО «Омский государственный медицинский университет» МЗ России, г. Омск, Российская Федерация.
http://orcid.org/0000-0002-9712-2391

Т.И. КАЛЕHЧИЦ 1, С.Л. КАБАК 2, Л.Г. ЦЕДРИК 2

СПОHТАHHЫЕ ГЕМАТОМЫ МЯГКИХ ТКАHЕЙ У ПАЦИЕHТОВ С ИHФЕКЦИЕЙ Covid-19

Белорусский государственный медицинский университет 1,
6-я городская клиническая больница 2, г. Минск,
Республика Беларусь

Цель. Установить локализацию спонтанных подкожных и мышечных гематом у пациентов, инфицированных коронавирусом SARS-CoV-2, а также проанализировать факторы риска их возникновения и изменения основных показателей свертывания крови.
Материал и методы. Проанализированы клинические данные и результаты лабораторно-инструментальных исследований 12 пациентов (пять мужчины и семь женщин в возрасте от 57 до 99 лет) с коронавирусной инфекцией COVID-19 и спонтанными гематомами мягких тканей, находившихся на стационарном лечении в терапевтических отделениях 6-й городской клинической больницы г. Минска в 2021-2022 годах. Всем пациентам в день поступления на стационарное лечение назначались антикоагулянты.
Результаты. С помощью ультразвукового исследования (УЗИ) и компьютерной томографии (КТ) было выявлено 17 гематом, которые локализовались в забрюшинном пространстве, мышцах передней и боковой стенок живота, а также в мышцах бедра и ягодичной области. Чаще всего кровоизлияния обнаруживались в мягких тканях бедра. Объем жидкости в гематомах колебался в диапазоне от 25 до 1200 мл. В пяти случаях были выявлены две обособленные области кровоизлияния. В проекции гематом, выявленных при УЗИ, располагались подкожные кровоизлияния. По мере формирования гематомы в большинстве случаев отмечалось существенное снижение уровня гемоглобина, которое сопровождалось тахикардией и падением артериального давления. У всех пациентов с помощью индекса Алговера диагностировался геморрагический шок разной степени выраженности. У всех пациентов были выявлены сопутствующие заболевания. Все они имели высокий риск кровотечений по шкале HAS-BLED (от 3 до 5 баллов). После отмены антикоагулянтной терапии назначалась гемостатическая терапия, а в 6 случаях производилось пункционное дренирование гематомы. Четырем пациентам переливались эритроцитарная масса и свежезамороженная плазма. Девять пациентов через 12-21 день пребывания в стационаре в удовлетворительном состоянии были выписаны на амбулаторное долечивание, один – переведен в отделение гнойной хирургии. В двух случаях был констатирован летальный исход от коронавирусной инфекции и коморбидной патологии.
Заключение. У пациентов пожилого возраста с тяжелой и среднетяжелой формой вирусной пневмонии SARS-CoV-2 могут формироваться спонтанные гематомы мягких тканей, в том числе множественные и большого объема. Спонтанные гематомы мягких тканей в сочетании с пожилым возрастом, наличием нескольких сочетанных заболеваний являются фактором риска летального исхода.

Ключевые слова: гематома, инфекция COVID-19, компьютерная томография, ультразвуковое исследование, антикоагулянты, коморбидная патология
с. 117-126 оригинального издания
Список литературы
  1. Al-Samkari H, Karp Leaf RS, Dzik WH, Carlson JCT, Fogerty AE, Waheed A, Goodarzi K, Bendapudi PK, Bornikova L, Gupta S, Leaf DE, Kuter DJ, Rosovsky RP. COVID-19 and coagulation: bleeding and thrombotic manifestations of SARS-CoV-2 infection. Blood. 2020;136(4):489-500. doi: 10.1182/blood.2020006520
  2. Нагибина МВ, Сычева АС, Кошелев ИА, Малявина МА, Солодов АА, Кебина АЛ, Григорьева ЕВ, Семенякин ИВ, Левченко ОВ, Янушевич ОО. Спонтанные гематомы при COVID-19: причины возникновения, клиника, диагностика и лечение. Клиническая Медицина. 2021;99(9-10):540-47. doi: 10.30629/0023-2149-2021-99-9-10-540-547
  3. Буриев ИМ, Мелконян ГГ, Ваганова ПС, Гузеева ЕБ, Замятина КА, Кузеев АН, Мизиано СВ, Пчелин ВВ, Кармазановский ГГ. Последовательность действий при визуализации кровоизлияний/гематом мягких тканей у пожилых больных, инфицированных SARS-CoV-2. Медицинская Визуализация. 2022; 26 (3): 10–21. doi: 10.24835/1607-0763-1190
  4. Abate V, Casoria A, Rendina D, Muscariello R, Nuzzo V, Vargas M, Servillo G, Venetucci P, Conca P, Tufano A, Galletti F, Di Minno, G. Spontaneous muscle hematoma in patients with COVID-19: A systematic literature review with description of an additional case series. Semin in Thromb Hem
  5. Widysanto A, Wahyuni TD, Simanjuntak LH, Sunarso S, Siahaan SS, Haryanto H, Pandrya CO, Aritonang RCA, Gunawan C, Angela. Ecchymosis in critical coronavirus disease 2019 (COVID-19) patient in Tangerang, Indonesia: a case report. J Thromb Thrombolysis. 2021;52(2):635-639. doi: 10.1007/s11239-020-02338-7.
  6. Кащенко ВА, Ратников ВА, Васюкова ЕЛ, Светликов АВ, Кебряков АВ, Ратникова АК. Гематомы различных локализаций у пациентов с COVID-19. Эндоскопическая Хирургия. 2021;27(6):5–13. doi; 10.17116/endoskop2021270615
  7. Riu P, Albarello F, Di Stefano F, Vergori A, D’Abramo A, Cerini C, Nocioni M, Morucci M, Tetaj N, Cristofaro M, Schininà V, Campioni P, Petrone A, Fusco N, Marchioni L, Antinori A, Nicastri E, Cianni R, Ianniello S. Management of spontaneous bleeding in COVID-19 inpatients: is tmbolizationalways needed? J Clin Med. 2021; 10(18):4119. doi: 10.3390/jcm10184119.
  8. Tavone AM, Giuga G, Attanasio A, Petroni G, Mauriello S, Cordova F, Marella GL. A rapid fatal outcome of Iliopsoas hematoma: clinical and autopsy findings. J Investig Med High Impact Case Rep. 2022;10: 23247096221111760. doi: 10.1177/23247096221111760
  9. Рязанцев АА, Балгиев ОМ, Гришин ГП, Литвина ОП, Профуткин АИ. Ультразвуковая диагностика спонтанных гематом мягких тканей у пациентов с COVID-19. Ультразвуковая и Функциональная Диагностика. 2021;4:79-93.
  10. Schulman S, Kearon C; Subcommittee on Control of Anticoagulation of the Scientific and Standardization Committee of the International Society on Thrombosis and Haemostasis. Definition of major bleeding in clinical investigations of antihemostatic medicinal products in non-surgical patients. J Thromb Haemost. 2005;3(4):692-94. doi: 10.1111/j.1538-7836.2005.01204.x
  11. Boira I, Esteban V, Vañes S, Castelló C, Celis C, Chiner E. Major Bleeding Complications in COVID-19 Patients. Cureus. 2021;13(8):e16816. doi: 12.7759/cureus.16816
  12. Семенякин ИВ, Григорьева ЕВ, Иванова ИВ, Сычева АС, Солодов АА, Лежнев ДА, Левченко ОВ, Янушевич ОО, Кебина АЛ. Спонтанные мышечные кровотечения у пациентов с COVID-19 (анализ собственных наблюдений). Москов Хирург Журн. 2021;(3):79-88. doi: 10.17238/2072-3180-2021-3-79-88
  13. Vergori A, Pianura E, Lorenzini P, D’Abramo A., Di Stefano F, Grisetti S, Vita S, Pinnetti C, Donno DR, Marini MC, Nicastri E, Ianniello S, Antinori A; ReCOVeRI Study Group. Spontaneous ilio-psoas haematomas (IPHs): a warning for COVID-19 inpatients. Ann of Med. 2021; 53(1), 295-301. doi: 10.1080/07853890.2021.1875498
  14. Marzban-Rad S, Bahmani S, Kazemi A, Taheri HR. Acute retroperitoneal hematoma following severe Covid-19 and the use of anticoagulants. Ann Med Surg (Lond). 2022:103909. doi: 10.1016/j.amsu.2022.103909
  15. Nematihonar B, Qaderi S, Shah J, Bagherpour JZ. Spontaneous giant rectus sheath hematoma in patients with COVID-19: two case reports and literature review. Int J Emerg Med. 2021;14(1):40. doi: 10.1186/s12245-021-00366-5.
  16. Nasif WA, El-Moursy Ali AS, Hasan Mukhtar M, Alhuzali AMH, YahyaAlnashri YA, Ahmed Gadah ZI, Edrees EAA, Albarakati HAM, MuhjiAloufi HS. Elucidating the correlation of D-Dimer levels with COVID-19 severity: A scoping review. Anemia. 2022: 9104209. doi: 10.1155/2022/9104209
  17. Palatucci V, Lombardi G, Lombardi L, Giglio F, Giordano F, Lombardi D. Spontaneous muscle haematomas: management of 10 cases. Transl Med UniSa. 2014;10:13-17.
Адрес для корреспонденции:
220116, Республика Беларусь,
г. Минск, пр-т Дзержинского, 83,
Белорусский государственный
медицинский университет,
кафедра морфологии человека,
тел.: +375 (29) 6588339,
е-mail: kabakmorph@gmail.com,
Кабак Сергей Львович
Cведения об авторах:
Каленчиц Тамара Ивановна, кандидат медицинских наук, доцент кафедры медицинской реабилитации и физиотерапии.
http//org/ 0000-0003-0387-4937
Кабак Сергей Львович, доктор медицинских наук, профессор, заведующий кафедрой морфологии человек.
http://org/0000-0002-7173-1818
Цедрик Людмила Геннадьевна, врач УЗИ отделения функциональной диагностики 6-й ГКБ.

С.П. ДОСМАГАМБЕТОВ 1, Б.К. ДЖЕHАЛАЕВ 1, Г.Д. ЖУМАГАЛИЕВА 1, А.Б. ТУСУПКАЛИЕВ 1, Б.Н. БИСАЛИЕВ 1, Г.З. АБДУЛЛАЕВА 2

ДИФФЕРЕHЦИАЛЬHАЯ ДИАГHОСТИКА ОСТРОГО АППЕHДИЦИТА У ДЕТЕЙ С Covid-19 АССОЦИИРОВАHHЫМ МУЛЬТИСИСТЕМHЫМ ВОСПАЛИТЕЛЬHЫМ СИHДРОМОМ

Западно-Казахстанский медицинский университет имени Марата Оспанова 1,
Центр охраны материнства и детства 2, г. Актобе,
Республика Казахстан

В публикации описываются клинические наблюдения детей с мультисистемным воспалительным синдромом (МСВС), ассоциированным с SARS-CoV-2. Показаны трудности диагностики и дифференциальной диагностики с острым аппендицитом, перитонитом. В апреле 2020 года в Великобритании появились сообщения о наличии у детей картины болезни, похожей на неполный синдром Кавасаки или синдром токсического шока. Многие исследователи пришли к заключению, что МСВС – опасное системное инфекционное заболевание, характеризующееся воспалением крайней степени выраженности, лихорадкой, абдоминальными симптомами, конъюнктивитом и сыпью.
Считается, что причиной болей в животе при МСВС является брыжеечный лимфаденит, серозный перитонит. Незнание проявлений МСВС у детей ведет к поздней диагностике этой тяжелой патологии и напрасному оперативному вмешательству.
В настоящее время появилось множество публикаций с описанием МСВС, ассоциированного с SARS-CoV-2. ВОЗ разработала предварительное определение случая и форму отчета о случае мультисистемного воспалительного синдрома у детей и подростков. Предварительное определение случая заболевания отражает клинические и лабораторные особенности, наблюдаемые у детей, о которых сообщалось до настоящего времени, и служит для выявления подозрительных или подтвержденных случаев заболевания как с целью обеспечения лечения, так и для предварительной отчетности и наблюдения. Поэтому существует настоятельная необходимость в сборе стандартизированных данных, описывающих клинические проявления, тяжесть, исходы и эпидемиологию.
В период текущей пандемии при лечении детей с лихорадкой и острым животом детские хирурги должны иметь повышенную настороженность в отношении МСВС. Ранняя диагностика МСВС позволит избежать ненужных операций, которые могут ухудшить и без того тяжелое состояние больного.
С учетом трудностей проведения дифференциальной диагностики МСВС с острой хирургической патологией брюшной полости, нам представляется важным обеспечение мультидисциплинарного подхода в своевременной диагностике МСВС у тяжелобольных детей. Только совместный осмотр таких специалистов, как инфекционист, кардиолог, пульмонолог, гематолог, нефролог, педиатр, детский хирург и проведение лабораторных исследований (клинический анализ крови, С-реактивный белок, Д-димер, коагулограмма), эхокардиография, КТ позволят своевременно выявить МСВС у детей, исключить хирургическую патологию брюшной полости.

Ключевые слова: мультисистемный воспалительный синдром, острый аппендицит, перитонит, мезаденит, мультидисциплинарный подход
с. 127-136 оригинального издания
Список литературы
  1. Особенности клинических проявлений и лечения заболевания, вызванного новой короновирусной инфекцией (COVID-19) у детей. Методические рекомендации. Версия 2(03.07.2020) (утв. Минздравом России) [Электронный ресурс]. Режим доступа: https://static-0.minzdrav.gov.ru/system/attachments/attaches/000/050/914/original/03062020_%D0%B4%D0%B5%D1%82%D0%B8_COVID-19_v2.pdf
  2. Gottlieb M, Bridwell R, Ravera J, Long B. Multisystem inflammatory syndrome in children with COVID-19. Am J Emerg Med. 2021 Nov;49:148-52. doi: 10.1016/j.ajem.2021.05.076
  3. Esposito S, Principi N. Multisystem Inflammatory Syndrome in Children Related to SARS-CoV-2. Paediatr Drugs. 2021 Mar;23(2):119-29. doi: 10.1007/s40272-020-00435-x
  4. Blumfield E, Levin TL, Kurian J, Lee EY, Liszewski MC. Imaging Findings in Multisystem Inflammatory Syndrome in Children (MIS-C) Associated With Coronavirus Disease (COVID-19). AJR Am J Roentgenol. 2021 Feb;216(2):507-17. doi: 10.2214/AJR.20.24032
  5. Zhang QY, Xu BW, Du JB. Similarities and differences between multiple inflammatory syndrome in children associated with COVID-19 and Kawasaki disease: clinical presentations, diagnosis, and treatment. World J Pediatr. 2021 Aug;17(4):335-40. doi: 10.1007/s12519-021-00435-y
  6. Kest H, Kaushik A, DeBruin W, Colletti M, Goldberg D. Multisystem Inflammatory Syndrome in Children (MIS-C) Associated with 2019 Novel Coronavirus (SARS-CoV-2) Infection. Case Rep Pediatr. 2020 Jul 18;2020:8875987. doi: 10.1155/2020/8875987. eCollection 2020.
  7. Zou H, Lu J, Liu J, Wong JH, Cheng S, Li Q, Shen Y, Li C, Jia X. Characteristics of pediatric multi-system inflammatory syndrome (PMIS) associated with COVID-19: a meta-analysis and insights into pathogenesis. Int J Infect Dis. 2021 Jan;102:319-26. doi: 10.1016/j.ijid.2020.11.145
  8. World Health Organization (WHO). WHO Director-General’s opening remarks at the media briefing on COVID-19 – 11 March 2020 [Internet]. Available from: https://www.who.int/director-general/speeches/detail/who-director-general-s-opening-remarks-at-the-media-briefing-on-covid-19---11-march-2020
  9. Ahmed M, Advani S, Moreira A, Zoretic S, Martinez J, Chorath K, Acosta S, Naqvi R, Burmeister-Morton F, Burmeister F, Tarriela A, Petershack M, Evans M, Hoang A, Rajasekaran K, Ahuja S, Moreira A. Multisystem inflammatory syndrome in children: A systematic review. EClinicalMedicine. 2020 Sep;26:100527. doi: 10.1016/j.eclinm.2020.100527
  10. Ardila Gómez IJ, López PP, Duque DC, García DMS, Romero AF, Vega MRV, Ramos Castañeda JA. Abdominal manifestation of multisystemic inflammatory syndrome in children. J Pediatr Surg Case Rep. 2021 Nov;74:102042. doi: 10.1016/j.epsc.2021.102042
  11. Al Lawati Z, Al Rawahi H, Al Yazidi LS. Acute appendicitis mimicking multisystem inflammatory syndrome in children: case report and review of the literature. J Paediatr Child Health. 2021 Mar;57(3):461-62. doi: 10.1111/jpc.15398
  12. Unny AK, Rajashree P, Sundararajan L, Sankar J. Abdominal manifestations of multisystem inflammatory syndrome in children: a single-center experience. Indian Pediatr. 2022 Dec 15;59(12):936-38. doi: 10.1007/s13312-022-2667-2
  13. Rouva G, Vergadi E, Galanakis E. Acute abdomen in multisystem inflammatory syndrome in children: A systematic review. Acta Paediatr. 2022 Mar;111(3):467-72. doi: 10.1111/apa.16178
  14. Udochi N, Parker HJ, Owusu M. Abdominal pain, a red herring for Multisystem Inflammatory Syndrome in Children (MIS-C): a case report. J Fam Med Dis Prev. 2020;6:127. doi: 10.23937/2469-5793/1510127
  15. Valitutti F, Verde A, Pepe A, Sorrentino E, Veneruso D, Ranucci G, Orlando F, Mastrominico A, Grella MG, Mandato C. Multisystem inflammatory syndrome in children. An emerging clinical challenge for pediatric surgeons in the COVID 19 era. J Pediatr Surg Case Rep. 2021 Jun;69:101838. doi: 10.1016/j.epsc.2021.101838
  16. Jackson RJ, Chavarria HD, Hacking SM. A case of multisystem inflammatory syndrome in children mimicking acute appendicitis in a COVID-19. Pandemic Area Cureus. 2020;12(9):e10722. doi: 10.7759/cureus.10722
  17. Hwang M, Wilson K, Wendt L, Pohlman J, Densmore E, Kaeppler C, Van Arendonk K, Yale S. The great gut mimicker: a case report of MIS-C and appendicitis clinical presentation overlap in a teenage patient. BMC Pediatr. 2021 Jun 1;21(1):258. doi: 10.1186/s12887-021-02724-x
Адрес для корреспонденции:
030019, Республика Казахстан,
Актобе, ул. Маресьева, 68,
Западно-Казахстанский медицинский
университет имени Марата Оспанова,
кафедра детской хирургии,
Тел. +7 701 559-68-10,
e-mail: Dossag2011@mail.ru
Досмагамбетов Сагидулла Примжанович
Cведения об авторах:
Досмагамбетов Сагидулла Примжанович, к.м.н., доцент кафедры детской хирургии, Западно-Казахстанский медицинский университет им. Марата Оспанова, г. Актобе, Республика Казахстан.
http://orcid.org/0000-0002-6525-8438
Дженалаев Булат Канапьянович, д.м.н., профессор кафедры детской хирургии, Западно-Казахстанский медицинский университет им. Марата Оспанова, г. Актобе, Республика Казахстан.
http://orcid.org/0000-0001-7494-5072
Жумагалиева Галина Даутовна, к.м.н., доцент курса детских инфекционных заболеваний, Западно-Казахстанский медицинский университет им. Марата Оспанова, г. Актобе, Республика Казахстан.
http://orcid.org/0000-0002-5448-072X
Тусупкалиев Асылбек Балашевич, к.м.н., доцент кафедры детской хирургии, Западно-Казахстанский медицинский университет им. Марата Оспанова, г. Актобе, Республика Казахстан.
http://orcid.org/0000-0003-2386-2984
Бисалиев Бауыржан Нурниязович, к.м.н., доцент кафедры детской хирургии, Западно-Казахстанский медицинский университет им. Марата Оспанова, г. Актобе, Республика Казахстан.
http://orcid.org/0000-0002-4875-1140
Абдуллаева Гулжамал Зинноровна, заведующая отделением реанимации детского стационара Актюбинского медицинского центра, г. Актобе, Республика Казахстан.
http://orcid.org/0000-0002-9018-5891

Н.А. КАРПУК 1, С.П. РУБHИКОВИЧ 2, И.В. ЖИЛЬЦОВ 1, О.Ч. МАЗУР 3, И.Ю. КАРПУК 1, Е.П. МИХАЛЕHКО 3

СОМАТИЧЕСКИЕ МУТАЦИИ ПРИ ПЛОСКОКЛЕТОЧHОМ РАКЕ СЛИЗИСТОЙ ОБОЛОЧКИ РТА

УО «Витебский государственный медицинский университет» 1, г. Витебск,
УО «Белорусский государственный медицинский университет» 2,
ГНУ «Институт генетики и цитологии Национальной академии наук Беларуси» 3, г. Минск,
Республика Беларусь

Количество случаев рака слизистой оболочки ротовой полости в мире ежегодно увеличивается. При этом прогнозирование развития и ранняя диагностика рака слизистой оболочки ротовой полости являются важными проблемами здравоохранения.
Цель исследования. Используя метод высокопроизводительного ДНК-секвенирования, идентифицировать патогенные соматические мутации у пациентов с плоскоклеточным раком слизистой оболочки ротовой полости.
Методы. Материалом для исследования являлись 24 образца изменённого эпителия пациентов с плоскоклеточным раком слизистой оболочки ротовой полости. Для выделения ДНК из образцов использовали набор «QIAamp DNA FFPE Tissue Kit» (Qiagen, Германия). ДНК-секвенирование выполняли при помощи секвенатора Illumina NextSeq 550 с использованием набора реагентов TruSight™ Oncology 500 DNA Kit, For Use with NextSeq (Illumina, США). Все операции по экстракции ДНК из биологических образцов, подготовке ДНК-библиотек и их секвенированию выполняли пошагово в строгом соответствии с инструкциями, прилагаемыми к соответствующим наборам реагентов. Биоинформационный анализ был выполнен опытным специалистом с использованием специализированного программного обеспечения Illumina BaseSpace и Galaxy Project и в соответствии с актуальными рекомендациями.
Результаты. Выявленные в настоящем исследовании патогенные и вероятно патогенные варианты генов ERCC3, HOXB13, KRAS, MSH3, MSH6, PIK3CA и TP53 с высокой вероятностью (ОР 90-22000) ассоциированы с развитием плоскоклеточного рака слизистой оболочки ротовой полости.
Заключение. Данная информация позволяет разработать ПЦР- и NGS-тест-системы для прогнозирования развития и ранней диагностики плоскоклеточного рака слизистой оболочки ротовой полости.

Ключевые слова: ДНК-секвенирование, соматические мутации, плоскоклеточный рак
с. 137-145 оригинального издания
Список литературы
  1. van der Waal I. Oral leukoplakia, the ongoing discussion on definition and terminology. Med Oral Patol Oral Cir Bucal. 2015;20(6):e685-e692. Published 2015 Nov 1. doi: 10.4317/medoral.21007
  2. Kalavrezos N, Scully C. Mouth Cancer for Clinicians. Part 1: Cancer. Dent Update. 2015;42(3):250-60. doi: 10.12968/denu.2015.42.3.250
  3. Izumchenko E, Sun K, Jones S, Brait M, Agrawal N, Koch W, McCord CL, Riley DR, Angiuoli SV, Velculescu VE, Jiang WW, Sidransky D. Notch1 mutations are drivers of oral tumorigenesis. Cancer Prev Res (Phila). 2015 Apr;8(4):277-86. doi: 10.1158/1940-6207.CAPR-14-0257
  4. Новикова МВ, Рыбко ВА, Хромова НВ, Фармаковская МД, Копнин ПБ. Роль белков Notch в процессах канцерогенеза. Успехи Молекулярной Онкологии. 2015;(3):30-42. doi: 10.17650/2313-805X.2015.2.3.30-42
  5. Razavi SM, Jafari M, Heidarpoor M, Khalesi S. Minichromosome maintenance-2 (MCM2) expression differentiates oral squamous cell carcinoma from pre-cancerous lesions. Malays J Pathol. 2015 Dec;37(3):253-58.
  6. Ribeiro IP, Marques F, Barroso L, Rodrigues J, Caramelo F, Melo JB, Carreira IM. Genomic profile of oral squamous cell carcinomas with an adjacent leukoplakia or with an erythroleukoplakia that evolved after the treatment of primary tumor: A report of two cases. Mol Med Rep. 2017 Nov;16(5):6780-86. doi: 10.3892/mmr.2017.7428
  7. Núñez F, Domínguez O, Coto E, Suárez-Nieto C, Pérez P, López-Larrea C. Analysis of ras oncogene mutations in human squamous cell carcinoma of the head and neck. Surg Oncol. 1992 Dec;1(6):405-11. doi: 10.1016/0960-7404(92)90043-k
  8. Chung CM, Hung CC, Lee CH, Lee CP, Lee KW, Chen MK, Yeh KT, Ko YC. Variants in FAT1 and COL9A1 genes in male population with or without substance use to assess the risk factors for oral malignancy. PLoS One. 2019 Jan 18;14(1):e0210901. doi: 10.1371/journal.pone
  9. QIAamp® DNA FFPE Tissue Handbook [Electronic resource]. Publication February 2020. [дата обращения: 2022 Октябрь 27]. Available from: https://www.qiagen.com/us/products/discovery-and-translational-research/dna-rna-purification/dna-purification/genomic-dna/ qiaamp-dna-ffpe-tissue-kit/
  10. Illumina TruSight Oncology 500 Reference Guide [Electronic resource] [дата обращения: 2021 Май 26]. Available from: https://support.illumina.com/content/dam/illumina-support/documents/documentation/chemistry_documentation/trusight/oncology-500/trusight-oncology-500-reference-guide-1000000067621_07.pdf
  11. Kanzi AM, San JE, Chimukangara B, Wilkinson E, Fish M, Ramsuran V, de Oliveira T. Next Generation Sequencing and Bioinformatics Analysis of Family Genetic Inheritance. Front Genet. 2020 Oct 23;11:544162. doi: 10.3389/fgene.2020.544162
  12. Каюмов АР. Молекулярный анализ генома. Казань, РФ: КФУ; 2016. 60 с.
  13. Fox AJ, Hiemenz MC, Lieberman DB, Sukhadia S, Li B, Grubb J, Candrea P, Ganapathy K, Zhao J, Roth D, Alley E, Loren A, Morrissette JJ. Next Generation Sequencing for the Detection of Actionable Mutations in Solid and Liquid Tumors. J Vis Exp. 2016 Sep 20;(115):52758. doi: 10.3791/52758
  14. Buzdugan L, Kalisch M, Navarro A, Schunk D, Fehr E, Bühlmann P. Assessing statistical significance in multivariable genome wide association analysis. Bioinformatics. 2016 Jul 1;32(13):1990-2000. doi: 10.1093/bioinformatics/btw128
  15. Polakis P. Wnt signaling in cancer. Cold Spring Harb Perspect Biol. 2012 May 1;4(5):a008052. doi: 10.1101/cshperspect.a008052
  16. Ouhtit A, Al-Kindi MN, Kumar PR, Gupta I, Shanmuganathan S, Tamimi Y. Hoxb13, a potential prognostic biomarker for prostate cancer. Front Biosci (Elite Ed). 2016 Jan 1;8(1):40-45. doi: 10.2741/E749
  17. Skoda AM, Simovic D, Karin V, Kardum V, Vranic S, Serman L. The role of the Hedgehog signaling pathway in cancer: A comprehensive review. Bosn J Basic Med Sci. 2018 Feb 20;18(1):8-20. doi: 10.17305/bjbms.2018.2756
  18. Aburjania Z, Jang S, Whitt J, Jaskula-Stzul R, Chen H, Rose JB. The Role of Notch3 in Cancer. Oncologist. 2018 Aug;23(8):900-11. doi: 10.1634/theoncologist.2017-0677
  19. Ibrahim A, Chopra S. Succinate Dehydrogenase-Deficient Gastrointestinal Stromal Tumors. Arch Pathol Lab Med. 2020 May;144(5):655-60. doi: 10.5858/arpa.2018-0370-RS
  20. Mercado-Asis LB, Wolf KI, Jochmanova I, Taïeb D. Pheochromocytoma: a genetic and diagnostic update. Endocr Pract. 2018 Jan;24(1):78-90. doi: 10.4158/EP-2017-0057
  21. Liu B, Wang T, Wang H, Zhang L, Xu F, Fang R, Li L, Cai X, Wu Y, Zhang W, Ye L. Oncoprotein HBXIP enhances HOXB13 acetylation and co-activates HOXB13 to confer tamoxifen resistance in breast cancer. J Hematol Oncol. 2018 Feb 23;11(1):26. doi: 10.1186/s13045-018-0577-5
  22. Ouhtit A, Al-Kindi MN, Kumar PR, Gupta I, Shanmuganathan S, Tamimi Y. Hoxb13, a potential prognostic biomarker for prostate cancer. Front Biosci (Elite Ed). 2016 Jan 1;8(1):40-45. doi: 10.2741/E749
  23. Griffith M, Spies NC, Krysiak K, McMichael JF, Coffman AC, Danos AM, Ainscough BJ, Ramirez CA, Rieke DT, Kujan L, Barnell EK, Wagner AH, Skidmore ZL, Wollam A, Liu CJ, Jones MR, Bilski RL, Lesurf R, Feng YY, Shah NM, Bonakdar M, Trani L, Matlock M, Ramu A, Campbell KM, Spies GC, Graubert AP, Gangavarapu K, Eldred JM, Larson DE, Walker JR, Good BM, Wu C, Su AI, Dienstmann R, Margolin AA, Tamborero D, Lopez-Bigas N, Jones SJ, Bose R, Spencer DH, Wartman LD, Wilson RK, Mardis ER, Griffith OL. CIViC is a community knowledgebase for expert crowdsourcing the clinical interpretation of variants in cancer. Nat Genet. 2017 Jan 31;49(2):170-74. doi: 10.1038/ng.3774
  24. Richards S, Aziz N, Bale S, Bick D, Das S, Gastier-Foster J, Grody WW, Hegde M, Lyon E, Spector E, Voelkerding K, Rehm HL; ACMG Laboratory Quality Assurance Committee. Standards and guidelines for the interpretation of sequence variants: a joint consensus recommendation of the American College of Medical Genetics and Genomics and the Association for Molecular Pathology. Genet Med. 2015 May;17(5):405-24. doi: 10.1038/gim.2015.30
  25. The Genome Aggregation Database (gnomAD) [Electronic resource]. [Дата обращения: 2022 Июль 25]. Available from: https://gnomad.broadinstitute.org
  26. Loeb LA, Loeb KR, Anderson JP. Multiple mutations and cancer. Proc Natl Acad Sci U S A. 2003 Feb 4;100(3):776-81. doi: 10.1073/pnas.0334858100
  27. Loeb KR, Loeb LA. Significance of multiple mutations in cancer. Carcinogenesis. 2000 Mar;21(3):379-85. doi: 10.1093/carcin/21.3.379
  28. Saito Y, Koya J, Kataoka K. Multiple mutations within individual oncogenes. Cancer Sci. 2021 Feb;112(2):483-89. doi: 10.1111/cas.14699
  29. Nussinov R, Tsai CJ, Jang H. How can same-gene mutations promote both cancer and developmental disorders? Sci Adv. 2022 Jan 14;8(2):eabm2059. doi: 10.1126/sciadv.abm2059
Адрес для корреспонденции:
210009, Республика Беларусь
г. Витебск, пр. Фрунзе, 27,
Витебский государственный
медицинский университет,
тел.: +375 29 711-97-36,
е-mail: ikarpuk@mail.ru,
Карпук Наталья Анатольевна
Cведения об авторах:
Карпук Наталья Анатольевна, к.м.н, доцент, доцент кафедры общей и ортопедической стоматологии с курсом ФПК и ПК, Витебский государственный медицинский университет, г. Витебск, Республика Беларусь.
http://orcid.org/0000-0001-9991-7034
Рубникович Сергей Петрович, член-корреспондент, д.м.н., профессор, ректор Белорусского государственного медицинского университета, г. Минск, Республика Беларусь.
http://orcid.org/0000-0002-7450-3757
Жильцов Иван Викторович, д.м.н., профессор, заведующий кафедрой доказательной медицины и клинической диагностики ФПК и ПК, Витебский государственный медицинский университет, г. Витебск, Республика Беларусь.
http://orcid.org/0000-0002-4912-2880
Мазур Оксана Чеславовна, науч. сотрудник, лаборатория экологической генетики и биотехнологии, Институт генетики и цитологии НАН Беларуси, г. Минск, Республика Беларусь.
http://orcid.org/0000-0002-6093-4548.
Карпук Иван Юрьевич, д.м.н., доцент, декан стоматологического факультета, профессор кафедры общей и ортопедической стоматологии с курсом ФПК и ПК, Витебский государственный медицинский университет, г. Витебск, Республика Беларусь.
http://orcid.org/0000-0001-9991-7035
Михаленко Елена Петровна, к.б.н., ведущий научный сотрудник, лаборатория экологической генетики и биотехнологии, Институт генетики и цитологии НАН Беларуси, г. Минск, Республика Беларусь.
http://orcid.org/0000-0003-4543-2862

ОБЗОРЫ

К.С. РУССКОВА, К.Ф. ЧЕРHОУСОВ, Р.В. КАРПОВА

РОЛЬ АHГИОГЕHЕЗА И КОАГУЛОПАТИИ В ПАТОГЕHЕЗЕ ПОРТАЛЬHОЙ ГИПЕРТЕHЗИИ У БОЛЬHЫХ ЦИРРОЗОМ ПЕЧЕHИ

Первый Московский государственный медицинский университет имени И.М. Сеченова
(Сеченовский Университет), г. Москва,
Российская Федерация

Портальная гипертензия представляет собой наиболее грозное осложнение хронических заболеваний печени. К нему приводят три тесно связанных между собой процесса: персистирующее воспаление, фиброз и патологический ангиогенез. Ряд исследований показал, что антиангиогенная терапия позволяет предотвратить прогрессирование цирроза и портальной гипертензии. Последние работы говорят о том, что роль ангиогенеза в прогрессировании фибротических изменений и их реорганизации сложна и неоднозначна. Большое внимание уделяется синусоидальному ангиогенезу и перисинусоидальному фибролизису, их вкладу в уменьшение внутрипеченочного сопротивления и компенсации портальной гипертензии. На протяжении многих лет основным проявлением нарушений коагуляции у пациентов с циррозом печени считали геморрагические осложнения, однако у 16-23% больных встречается тромбоз вен портальной системы. В настоящее время цирроз печени рассматривают как протромботическое состояние, которое требует проведения тщательной диагностики и лечения. Имеются данные, согласно которым больные циррозом, принимающие антикоагулянты, имеют меньший риск развития кровотечений из варикозно-расширенных вен пищевода и реже переходят в декомпенсированную стадию. Однако результатов проведенных на сегодняшний день клинических исследований недостаточно для формирования четких показаний к медикаментозному и хирургическому лечению тромботических осложнений у больных циррозом печени, в связи с чем данный вопрос требует дальнейшего изучения.

Ключевые слова: портальная гипертензия, цирроз печени, ангиогенез, реорганизация фиброза, коагуляционные свойства крови, гиперкоагуляция
с. 146-156 оригинального издания
Список литературы
  1. Gunarathne LS, Rajapaksha H, Shackel N, Angus PW, Herath CB. Cirrhotic portal hypertension: From pathophysiology to novel therapeutics. World J Gastroenterol. 2020 Oct 28;26(40):6111-40. doi: 10.3748/wjg.v26.i40.6111
  2. Jepsen P, Younossi ZM. The global burden of cirrhosis: A review of disability-adjusted life-years lost and unmet needs. J Hepatol. 2021 Jul;75(Suppl 1):S3-S13. doi: 10.1016/j.jhep.2020.11.042
  3. Анисимов АЮ, Верткин АЛ, Девятов АВ, Дзидзава ИИ, Жигалова СБ, Затевахин ИИ, Ивашкин ВТ, Киценко ЕА, Котив БН, Лебезев ВМ, Лопаткина ТН, Маевская МВ, Манукьян ГВ, Монахов ДВ, Назыров ФГ, Огурцов ПП, Павлов ЧС, Прудков МИ, Хоронько ЮВ, Цициашвили МШ, Чжао АВ, Шерцингер АГ, Шиповский ВН. Клинические рекомендации по лечению кровотечений из варикозно расширенных вен пищевода и желудка [Интернет]. Российское общество хирургов, ассоциация гепатопанкреатобилиарных хирургов стран СНГ [доступно 2022 Июнь 08]. Москва, РФ; 2014. 45 с. https://www.mrckb.ru/files/krovotecheniya_iz_varikoznorasshirennyx_ven_pishhevoda_i_zheludka.PDF
  4. Iwakiri Y, Trebicka J. Portal hypertension in cirrhosis: Pathophysiological mechanisms and therapy. JHEP Reports [Electronic resource]. 2021 [cited 2022 Mar 02]. Available from: https://www.jhep-reports.eu/article/S2589-5559(21)00092-6/fulltext
  5. EASL Clinical Practice Guidelines for the management of patients with decompensated cirrhosis. J Hepatol [Electronic resource]. 2018. [cited 2022 Mar 02]. Available from: https://linkinghub.elsevier.com/retrieve/pii/S0168-8278(18)31966-4
  6. Черноусов АФ, Хоробрых ТВ, Карпова РВ, Зенкова КИ. Регенерация печени при циррозе под действием криопреципитата. Новости Хирургии. 2017;25(4):350-58. https://dx.doi.org/10.18484/2305-0047.2019.1.108
  7. Черноусов АФ, Хоробрых ТВ, Карпова РВ. Регенерация цирротической печени кроликов при внутрипеченочном введении криопреципитата. Бюл Эксперим Биологии и Медицины. 2012;154(9):384-86.
  8. Черноусов АФ, Хоробрых ТВ, Карпова РВ. Регенерация печеночной ткани под воздействием криопреципитата и аллопланта. Хирургия. Журн им НИ Пирогова. 2015;(7):27-33. doi: 10.17116/hirurgia2015727-33
  9. Черноусов АФ, Хоробрых ТВ, Карпова РВ. Малоинвазивные хирургические вмешательства под контролем УЗИ в лечении диффузных заболеваний печени. Вестн Хирург Гастроэнтерологии. 2011;(4):4-9.
  10. Iwakiri Y. Endothelial dysfunction in the regulation of cirrhosis and portal hypertension. Liver Int. 2012 Feb;32(2):199-13. doi: 10.1111/j.1478-3231.2011.02579.x
  11. Гарбузенко ДВ. Аспекты патогенетической фармакотерапии портальной гипертензии при циррозе печени. Терапевт Арх. 2016;88(2):101-108. doi: 10.17116/terarkh2016888101-108
  12. Park S, Kim JW, Kim JH, Lim CW, Kim B. Differential Roles of Angiogenesis in the Induction of Fibrogenesis and the Resolution of Fibrosis in Liver. Biol Pharm Bull. 2015;38(7):980-85. doi: 10.1248/bpb.b15-00325
  13. Selicean S, Wang C, Guixé-Muntet S, Stefanescu H, Kawada N, Gracia-Sancho J. Regression of portal hypertension: underlying mechanisms and therapeutic strategies. Hepatol Int. 2021 Feb;15(1):36-50. doi: 10.1007/s12072-021-10135-4
  14. Wang YQ, Ikeda K, Ikebe T, Hirakawa K, Sowa M, Nakatani K, Kawada N, Kaneda K. Inhibition of hepatic stellate cell proliferation and activation by the semisynthetic analogue of fumagillin TNP-470 in rats. Hepatology. 2000 Nov;32(5):980-9. doi: 10.1053/jhep.2000.18658
  15. Huang Y, Feng H, Kan T, Huang B, Zhang M, Li Y, Shi C, Wu M, Luo Y, Yang J, Xu F. Bevacizumab attenuates hepatic fibrosis in rats by inhibiting activation of hepatic stellate cells. PLoS One. 2013 Aug 30;8(8):e73492. doi: 10.1371/journal.pone.0073492. eCollection 2013.
  16. Pinter M, Sieghart W, Reiberger T, Rohr-Udilova N, Ferlitsch A, Peck-Radosavljevic M. The effects of sorafenib on the portal hypertensive syndrome in patients with liver cirrhosis and hepatocellular carcinoma–a pilot study. Aliment Pharmacol Ther. 2012 Jan;35(1):83-91. doi: 10.1111/j.1365-2036.2011.04896.x
  17. Marrone G, Maeso-Díaz R, García-Cardena G, Abraldes JG, García-Pagán JC, Bosch J, Gracia-Sancho J. KLF2 exerts antifibrotic and vasoprotective effects in cirrhotic rat livers: behind the molecular mechanisms of statins. Gut. 2015 Sep;64(9):1434-43. doi: 10.1136/gutjnl-2014-308338
  18. Mejias M, Garcia-Pras E, Tiani C, Bosch J, Fernandez M. The somatostatin analogue octreotide inhibits angiogenesis in the earliest, but not in advanced, stages of portal hypertension in rats. J Cell Mol Med. 2008 Sep-Oct;12(5A):1690-99. doi: 10.1111/j.1582-4934.2008.00218.x
  19. Kemp W, Colman J, Thompson K, Madan A, Vincent M, Chin-Dusting J, Kompa A, Krum H, Roberts S. Norfloxacin treatment for clinically significant portal hypertension: results of a randomised double-blind placebo-controlled crossover trial. Liver Int. 2009 Mar;29(3):427-33. doi: 10.1111/j.1478-3231.2008.01850.x
  20. Garcia-Tsao G, Fuchs M, Shiffman M, Borg BB, Pyrsopoulos N, Shetty K, Gallegos-Orozco JF, Reddy KR, Feyssa E, Chan JL, Yamashita M, Robinson JM, Spada AP, Hagerty DT, Bosch J. Emricasan (IDN-6556) Lowers Portal Pressure in Patients With Compensated Cirrhosis and Severe Portal Hypertension. Hepatology. 2019 Feb;69(2):717-28. doi: 10.1002/hep.30199
  21. Elpek GÖ. Angiogenesis and liver fibrosis. World J Hepatol. 2015 Mar 27;7(3):377-91. doi: 10.4254/wjh.v7.i3.377
  22. Iredale JP, Benyon RC, Pickering J, McCullen M, Northrop M, Pawley S, Hovell C, Arthur MJ. Mechanisms of spontaneous resolution of rat liver fibrosis. Hepatic stellate cell apoptosis and reduced hepatic expression of metalloproteinase inhibitors. J Clin Invest. 1998 Aug 1;102(3):538-49. doi: 10.1172/JCI1018
  23. Lee YA, Wallace MC, Friedman SL. Pathobiology of liver fibrosis: a translational success story. Gut. 2015 May;64(5):830-41. doi: 10.1136/gutjnl-2014-306842
  24. Chang TT, Liaw YF, Wu SS, Schiff E, Han KH, Lai CL, Safadi R, Lee SS, Halota W, Goodman Z, Chi YC, Zhang H, Hindes R, Iloeje U, Beebe S, Kreter B. Long-term entecavir therapy results in the reversal of fibrosis/cirrhosis and continued histological improvement in patients with chronic hepatitis B. Hepatology. 2010 Sep;52(3):886-93. doi: 10.1002/hep.23785
  25. Ding BS, Cao Z, Lis R, Nolan DJ, Guo P, Simons M, Penfold ME, Shido K, Rabbany SY, Rafii S. Divergent angiocrine signals from vascular niche balance liver regeneration and fibrosis. Nature. 2014 Jan 2;505(7481):97-102. doi: 10.1038/nature12681
  26. Garcia-Irigoyen O, Carotti S, Latasa MU, Uriarte I, Fernández-Barrena MG, Elizalde M, Urtasun R, Vespasiani-Gentilucci U, Morini S, Banales JM, Parks WC, Rodriguez JA, Orbe J, Prieto J, Páramo JA, Berasain C, Ávila MA. Matrix metalloproteinase-10 expression is induced during hepatic injury and plays a fundamental role in liver tissue repair. Liver Int. 2014 28. Kantari-Mimoun C, Castells M, Klose R, Meinecke AK, Lemberger UJ, Rautou PE, Pinot-Roussel H, Badoual C, Schrödter K, Österreicher CH, Fandrey J, Stockmann C. Resolution of liver fibrosis requires myeloid cell-driven sinusoidal angiogenesis. Hepatology. 2015 Jun;61(6):2042-55. doi: 10.1002/hep.27635
  27. Zhao W, Li JJ, Cao DY, Li X, Zhang LY, He Y, Yue SQ, Wang DS, Dou KF. Intravenous injection of mesenchymal stem cells is effective in treating liver fibrosis. World J Gastroenterol. 2012 Mar 14;18(10):1048-58. doi: 10.3748/wjg.v18.i10.1048.
  28. Chen L, Brenner DA, Kisseleva T. Combatting Fibrosis: Exosome-Based Therapies in the Regression of Liver Fibrosis. Hepatol Commun. 2018 Dec 13;3(2):180-92. doi: 10.1002/hep4.1290. eCollection 2019 Feb.
  29. Kisseleva T, Brenner D. Molecular and cellular mechanisms of liver fibrosis and its regression. Nat Rev Gastroenterol Hepatol. 2021 Mar;18(3):151-66.
  30. Куркина ИА, Маевская МВ, Ивашкин ВТ. Гиперкоагуляция и тромбоз у больных циррозом печени. Поликлиника. 2015;(4-2):20-26.
  31. O’Leary JG, Greenberg CS, Patton HM, Caldwell SH. AGA Clinical Practice Update: Coagulation in Cirrhosis. Gastroenterology. 2019 Jul;157(1):34-43.e1. doi: 10.1053/j.gastro.2019.03.070
  32. Intagliata NM, Caldwell SH, Tripodi A. Diagnosis, Development, and Treatment of Portal Vein Thrombosis in Patients With and Without Cirrhosis. Gastroenterology. 2019 May;156(6):1582-99.e1. doi: 10.1053/j.gastro.2019.01.265
  33. Ma SD, Wang J, Bezinover D, Kadry Z, Northup PG, Stine JG. Inherited thrombophilia and portal vein thrombosis in cirrhosis: A systematic review and meta-analysis. Res Pract Thromb Haemost. 2019 Sep 10;3(4):658-67. doi: 10.1002/rth2.12253. eCollection 2019 Oct
  34. Karpova RV, Russkova KS, Lavrentieva YN. Increases in Autoantibody Level Associated with Degenerative Changes in the Intestinal Mucosa in Liver Cirrhosis. Clin Exp Gastroenterol. 2020 Aug 26;13:315-320. doi: 10.2147/CEG.S263176. eCollection 2020.
  35. Shamseddeen H, Patidar KR, Ghabril M, Desai AP, Nephew L, Kuehl S, Chalasani N, Orman ES. Features of Blood Clotting on Thromboelastography in Hospitalized Patients With Cirrhosis. Am J Med. 2020 Dec;133(12):1479-87.e2. doi: 10.1016/j.amjmed.2020.04.029
  36. Labidi A, Baccouche H, Fekih M, Mahjoub S, BenMustapha N, Serghini M, BenRomdhane N, Boubaker J. The relationship between coagulation disorders and the risk of bleeding in cirrhotic patients. Ann Hepatol. 2019 Jul-Aug;18(4):627-32. doi: 10.1016/j.aohep.2018.12.007
  37. Margini C, Berzigotti A. Portal vein thrombosis: The role of imaging in the clinical setting. Dig Liver Dis. 2017 Feb;49(2):113-20. doi: 10.1016/j.dld.2016.11.013
  38. O’Shea RS, Davitkov P, Ko CW, Rajasekhar A, Su GL, Sultan S, Allen AM, Falck-Ytter Y. AGA Clinical Practice Guideline on the Management of Coagulation Disorders in Patients With Cirrhosis. Gastroenterology. 2021 Nov;161(5):1615-27.e1. doi: 10.1053/j.gastro.2021.08.015
  39. Mohan BP, Aravamudan VM, Khan SR, Ponnada S, Asokkumar R, Adler DG. Treatment response and bleeding events associated with anticoagulant therapy of portal vein thrombosis in cirrhotic patients: Systematic review and meta-analysis. Ann Gastroenterol. 2020 Sep-Oct;33(5):521-27. doi: 10.20524/aog.2020.0503
  40. Zhang R, Huang X, Jiang Y, Wang J, Chen S. Effects of Anticoagulants on Experimental Models of Established Chronic Liver Diseases: A Systematic Review and Meta-Analysis. Can J Gastroenterol Hepatol. 2020 Dec 11;2020:8887574. doi: 10.1155/2020/8887574. eCollection 2020.
  41. Duplantier JG, Dubuisson L, Senant N, Freyburger G, Laurendeau I, Herbert JM, Desmoulière A, Rosenbaum J. A role for thrombin in liver fibrosis. Gut. 2004 Nov;53(11):1682-87. doi: 10.1136/gut.2003.032136
  42. Borensztajn K, von der Thüsen JH, Peppelenbosch MP, Spek CA. The coagulation factor Xa/protease activated receptor-2 axis in the progression of liver fibrosis: a multifaceted paradigm. J Cell Mol Med. 2010 Jan;14(1-2):143-53. doi: 10.1111/j.1582-4934.2009.00980.x
  43. Groeneveld D, Pereyra D, Veldhuis Z, Adelmeijer J, Ottens P, Kopec AK, Starlinger P, Lisman T, Luyendyk JP. Intrahepatic fibrin(ogen) deposition drives liver regeneration after partial hepatectomy in mice and humans. Blood. 2019 Mar 14;133(11):1245-56. doi: 10.1182/blood-2018-08-869057
Адрес для корреспонденции:
119435, Российская Федерация,
г. Москва, ул. Б. Пироговская, дом 6, стр. 1,
Первый Московский государственный медицинский университет
им. И.М. Сеченова (Сеченовский Университет),
кафедра факультетской хирургии № 1
Института клинической медицины
им. Н.В. Склифосовского,
тел.: +7 905 016-40-54,
e-mail: russkova.ksy@gmail.com,
Русскова Ксения Сергеевна
Cведения об авторах:
Русскова Ксения Сергеевна, аспирант кафедры факультетской хирургии № 1 Института клинической медицины им. Н.В. Склифосовского, Первый МГМУ им. И.М. Сеченова (Сеченовский Университет), г. Москва, Российская Федерация. https://orcid.org/0000-0003-2150-7567
Черноусов Кирилл Федорович, аспирант кафедры факультетской хирургии № 1 Института клинической медицины им. Н.В. Склифосовского, Первый МГМУ им. И.М. Сеченова (Сеченовский Университет), г. Москва, Российская Федерация. https://orcid.org/0000-0002-1751-4601
Карпова Радмила Владимировна, д.м.н., профессор кафедры факультетской хирургии № 1 Института клинической медицины им. Н.В. Склифосовского, Первый МГМУ им. И.М. Сеченова (Сеченовский Университет), г. Москва, Российская Федерация. https://orcid.org/0000-0003-0608-9846

С.А. ПЛАКСИH

ДИАГHОСТИКА И ЛЕЧЕHИЕ ГЕМОТОРАКСА ПРИ ЗАКРЫТОЙ ТРАВМЕ ГРУДИ (ОБЗОР ЛИТЕРАТУРЫ)

Пермский государственный медицинский университет им. академика. Е.А. Вагнера, г. Пермь,
Российская Федерация

Частота гемоторакса при закрытой травме груди достигает 15-58%. Полученные при компьютерной томографии и эхосонографии данные повысили эффективность диагностики и повлияли на изменение ряда подходов к лечению гемоторакса. Представленный обзор литературы посвящен актуальным проблемам сравнительной оценки рутинного рентгеновского исследования и новых методов для распознавания гемоторакса и изменению на основе полученных результатов хирургической тактики. Описаны критерии классификации различных видов гемоторакса – острого, резидуального, позднего, скрытого. Показано, что компьютерная томография выявляет до 28-80% не распознанных при рентгенографии гемотораксов. Консервативное лечение и динамическое наблюдение возможно при малом гемотораксе, на основании количественных результатов сепарации листков плевры по данным ультразвукового исследования и компьютерной томографии. Видеоторакоскопия служит основным методом оперативного лечения гемоторакса и показана у гемодинамически стабильных пациентов для удаления сохраняющегося, резидуального, позднего, свернувшегося гемоторакса или при необходимости других вмешательств в плевральной полости. Наилучшие результаты торакоскопии отмечаются в первые 48-72 часа после травмы. Торакотомия показана при нестабильной гемодинамике, массивном гемотораксе и продолжающемся кровотечении. Частота осложнений дренирования плевральной полости равняется 19% и сохраняется примерно на одном уровне. Осложнения подразделяются на осложнения введения, положения, удаления, инфекционно-иммунологические и функционирования дренажей. Имеются исследования, показывающие отсутствие влияния диаметра дренажей на исходы и эффективность удаления гемоторакса. Для лечения свернувшегося гемоторакса используется видеоторакоскопия, показана возможность успешного удаления сгустка внутриплевральным введением протеолитических ферментов и свежезамороженной плазмы.

Ключевые слова: закрытая травма груди, гемоторакс, торакоскопия, компьютерная томография, ультразвуковое исследование, дренирование, повреждения груди
с. 157-165 оригинального издания
Список литературы
  1. Bertoglio P, Guerrera F, Viti A, Terzi AC, Ruffini E, Lyberis P, Filosso PL. Chest drain and thoracotomy for chest trauma. J Thorac Dis. 2019 Feb;11(Suppl 2):S186-S191. doi: 10.21037/jtd.2019.01.53
  2. Dogrul BN, Kiliccalan I, Asci ES, Peker SC. Blunt trauma related chest wall and pulmonary injuries: An overview. Chin J Traumatol. 2020 Jun;23(3):125-38. doi: 10.1016/j.cjtee.2020.04.003
  3. Микаилов УС, Мамедов ЗМ, Дадашов СГ, Ахадов ДШ. Этиологическая структура травмы грудной клетки у лиц различных возрастных групп. Журн Теорет, Клин и Эксперим Морфологии. 2021;(1-2):99-106. doi: 10.28942/jtcem.v3i1-2.173
  4. Tsai Y, Lin K, Huang T. Outcomes of patients with blunt chest trauma encountered at emergency department and possible risk factors affecting mortality. J Med Sci. 2017;37:97e101. doi: 10.4103/jmedsci.jmedsci_123_16
  5. Коробушкин ГВ, Шигеев СВ, Жуков АИ. Анализ причин смерти в выборке пациентов с политравмой в Москве. Политравма. 2020;(2):47-53. doi: 10.24411/1819-1495-2020-10019
  6. Корымасов ЕА, Бенян АС. Оптимизация показаний к торакоскопии при травме грудной клетки. Наука и Инновации в Медицине. 2017;(1):65-72. https://innoscience.ru/2500-1388/article/download/21521/17761
  7. Chrysou K, Halat G, Hoksch B, Schmid RA, Kocher GJ. Lessons from a large trauma center: impact of blunt chest trauma in polytrauma patients-still a relevant problem? Scand J Trauma Resusc Emerg Med. 2017 Apr 20;25(1):42. doi: 10.1186/s13049-017-0384-y
  8. Ахадов TA, Карасева ОВ, Мельников ИА, Костикова ТД, Ахлебинина МИ, Ублинский МВ. Мультиспиральная компьютерная томография легких при политравме у детей. Мед Визуализация. 2020;24(1):96-104. doi: 10.24835/1607-0763-2020-1-96-104
  9. Beshay M, Mertzlufft F, Kottkamp HW, Reymond M, Schmid RA, Branscheid D, Vordemvenne T. Analysis of risk factors in thoracic trauma patients with a comparison of a modern trauma centre: a mono-centre study. World J Emerg Surg. 2020 Jul 31;15(1):45. doi: 10.1186/s13017-020-00324-1
  10. Malekpour M, Widom K, Dove J, Blansfield J, Shabahang M, Torres D, Wild JL. Management of computed tomography scan detected hemothorax in blunt chest trauma: What computed tomography scan measurements say? World J Radiol. 2018 Dec 28;10(12):184-89. doi: 10.4329/wjr.v10.i12.184
  11. Choi J, Villarreal J, Andersen W, Min JG, Touponse G, Wong C, Spain DA, Forrester JD. Scoping review of traumatic hemothorax: Evidence and knowledge gaps, from diagnosis to chest tube removal. Surgery. 2021 Oct;170(4):1260-67. doi: 10.1016/j.surg.2021.03.030
  12. Zeiler J, Idell S, Norwood S, Cook A. Hemothorax: A Review of the Literature. Clin Pulm Med. 2020 Jan;27(1):1-12. doi: 10.1097/CPM.0000000000000343
  13. Demetri L, Martinez Aguilar MM, Bohnen JD, Whitesell R, Yeh DD, King D, de Moya M. Is observation for traumatic hemothorax safe? J Trauma Acute Care Surg. 2018 Mar;84(3):454-58. doi: 10.1097/TA.0000000000001793
  14. Chang SW, Ryu KM, Ryu JW. Delayed massive hemothorax requiring surgery after blunt thoracic trauma over a 5-year period: complicating rib fracture with sharp edge associated with diaphragm injury. Clin Exp Emerg Med. 2018 Mar 30;5(1):60-65. doi: 10.15441/ceem.16.190. eCollection 2018 Mar.
  15. Купрюшин АС, Ефимов АА, Логинов СН, Вишнякова ЖС, Латынова ИВ, Семина МН, Годухина ЕМ. Клинические проявления и судебно-медицинская оценка гемоторакса. Сарат Науч-Мед Журн. 2017;13(2):221-224. https://www.ssmj.ru/system/files/2017_02_221-224.pdf
  16. Gonzalez G, Robert C, Petit L, Biais M, Carrié C. May the initial CT scan predict the occurrence of delayed hemothorax in blunt chest trauma patients? Eur J Trauma Emerg Surg. 2021 Feb;47(1):71-78. doi: 10.1007/s00068-020-01391-4
  17. Parlak S, Beşler MS. Investigation of the relationship of the number, localization, and displacement of rib fractures with intrathoracic structures and abdominal solid organ complications using computed tomography. Eur J Trauma Emerg Surg. 2022 Feb;48(1):211-17. doi: 10.1007/s00068-020-01547-2
  18. Mancini M, Scanlin T, Serebrisky D. Hemothorax. Medscape [Internet]. 2019 [cited 2019 Dec 2] Available from: https://emedicine.medscape.com/article/2047916-overview
  19. Сопуев АА, Султакеев МЗ, Ташиев ММ, Мамбетов АК, Касымбеков ТМ. Место видеоторакоскопической и видеоассистированной торакоскопической хирургии при остаточном гемотораксе. Научное Обозрение. 2021;(1):25-31 https://s.science-medicine.ru/pdf/2020/1/1097.pdf
  20. Chang SW, Ryu KM, Ryu JW. Delayed massive hemothorax requiring surgery after blunt thoracic trauma over a 5-year period: complicating rib fracture with sharp edge associated with diaphragm injury. Clin Exp Emerg Med. 2018 Mar 30;5(1):60-65. doi: 10.15441/ceem.16.190. eCollection 2018 Mar.
  21. Dillon D.G., Rodriguez R.M. Screening performance of the chest X-ray in adult blunt trauma evaluation: Is it effective and what does it miss? Am J Emerg Med. 2021 Nov;49:310-14. doi: 10.1016/j.ajem.2021.06.034
  22. Bozzay J.D., Bradley M.J. Management of post-traumatic retained hemothorax. Trauma. 2019;21:14e20. doi: 10.1177/1460408617752985
  23. Chung MH, Hsiao CY, Nian NS, Chen YC, Wang CY, Wen YS, Shih HC, Yen DH. The Benefit of Ultrasound in Deciding Between Tube Thoracostomy and Observative Management in Hemothorax Resulting from Blunt Chest Trauma. World J Surg. 2018 Jul;42(7):2054-60. doi: 10.1007/s00268-017-4417-5
  24. Jahanshir A, Moghari SM, Ahmadi A, Moghadam PZ, Bahreini M. Value of point-of-care ultrasonography compared with computed tomography scan in detecting potential life-threatening conditions in blunt chest trauma patients. Ultrasound J. 2020 Aug 4;12(1):36. doi: 10.1186/s13089-020-00183-6
  25. Patel BH, Lew CO, Dall T, Anderson CL, Rodriguez R, Langdorf MI. Chest tube output, duration, and length of stay are similar for pneumothorax and hemothorax seen only on computed tomography vs. chest radiograph. Eur J Trauma Emerg Surg. 2021 Aug;47(4):939-47. doi: 10.1007/s00068-019-01198-y
  26. Rodriguez RM, Canseco K, Baumann BM, Mower WR, Langdorf MI, Medak AJ, Anglin DR, Hendey GW, Addo N, Nishijima D, Raja AS. Pneumothorax and hemothorax in the era of frequent chest computed tomography for the evaluation of adult patients with blunt trauma. Ann Emerg Med. 2019 Jan;73(1):58-65. doi: 10.1016/j.annemergmed.2018.08.423
  27. Гасымзаде ГШ. Сравнительная характеристика компьютерной томографии и рентгенографии в диагностике тупой травмы грудной клетки. Казан Мед Журн. 2020;101(6): 926-29. doi: 10.17816/KMJ2020-926
  28. Choi J, Villarreal J, Andersen W, Min JG, Touponse G, Wong C, Spain DA, Forrester JD. Scoping review of traumatic hemothorax: Evidence and knowledge gaps, from diagnosis to chest tube removal. Surgery. 2021 Oct;170(4):1260-67. doi: 10.1016/j.surg.2021.03.030
  29. Kim M, Moore JE. Chest Trauma: Current Recommendations for Rib Fractures,Pneumothorax, and Other Injuries. Curr Anesthesiol Rep. 2020;10(1):61-68. doi: 10.1007/s40140-020-00374-w
  30. Pumarejo GL, Tran VH. Hemothorax. 2022 Aug 8. StatPearls [Internet]. Treasure Island (FL): StatPearls Publishing; 2022 Jan. Available from: https://www.ncbi.nlm.nih.gov/books/NBK538219/
  31. Dokoupil M, Marecová K, Uvíra M, Joukal M, Mrázková E, Chmelová J, Handlos P. Fatal delayed hemopericardium and hemothorax following blunt chest trauma. Forensic Sci Med Pathol. 2019 Jun;15(2):272-75. doi: 10.1007/s12024-018-0069-5
  32. Malekpour M, Widom K, Dove J, Blansfield J, Shabahang M, Torres D, Wild JL. Management of computed tomography scan detected hemothorax in blunt chest trauma: What computed tomography scan measurements say? World J Radiol. 2018 Dec 28;10(12):184-89. doi: 10.4329/wjr.v10.i12.184
  33. Пикало ИА, Подкаменев ВВ, Семенов АВ, Мишеков РГ, Степанов ЦБ, Савельев ДС, Пономарев АВ. Метод точного определения объема свободной жидкости в плевральной полости при эхосонографии. Детская Хирургия. 2020;24(10): 65.
  34. Sritharen Y, Hernandez MC, Haddad NN, Kong V, Clarke D, Zielinski MD, Aho JM. External Validation of a Tube Thoracostomy Complication Classification System. World J Surg. 2018 Mar;42(3):736-41. doi: 10.1007/s00268-017-4260-8
  35. Gilbert RW, Fontebasso AM, Park L, Tran A, Lampron J. The management of occult hemothorax in adults with thoracic trauma: A systematic review and meta-analysis. J Trauma Acute Care Surg. 2020 Dec;89(6):1225-32. doi: 10.1097/TA.0000000000002936
  36. Huang JF, Ou Yang CH, Cheng CT, Hsu CP, Wen CT, Liao CH, Hsieh CH, Fu CY. Could video-assisted thoracoscopic surgery be feasible for blunt trauma patients with massive haemothorax? Injury. 2022 Aug 14;S0020-1383(22)00589-7. doi: 10.1016/j.injury.2022.08.029
  37. Зайцев ДА, Мовчан КН, Лишенко ИВ, Слободкина АС, Кочетков АВ, Гедгафов РМ, Русакевич КИ. Использование торакоскопии под местным обезболиванием и протеолитических ферментов в устранении свернувшегося гемоторакса. Вестн Санкт-Петербург ун-та. Медицина. 2018;13(3):271-81. doi: 10.21638/11701/spbu11.2018.304
  38. Цеймах ЕА, Бондаренко АВ, Меньшиков АА, Тимошникова АА. Применение современных технологий в комплексном лечении больных политравмой с доминирующими повреждениями груди. Бюл Мед Науки. 2017;(2):61-67. http://newbmn.asmu.ru/index.php/bmn/issue/view/19
  39. Huang JF, Hsu CP, Fu CY, Ou Yang CH, Cheng CT, Liao CH, Kuo IM, Hsieh CH. Is massive hemothorax still an absolute indication for operation in blunt trauma? Injury. 2021 Feb;52(2):225-30. doi: 10.1016/j.injury.2020.12.016
  40. Nascimento IKD, Morad HM, Perlingeiro JAG, Parreira JG, Assef JC. Predictors of pleural complications in trauma patients undergoing tube thoracostomy: A prospective observational study. Rev Col Bras Cir. 2022 Aug 22;49:e20223300. doi: 10.1590/0100-6991e-20223300-en. eCollection 2022. [Article in English, Portuguese]
  41. Mergan Iliklerden D, Çobanoğlu U, Say?r F, Iliklerden ÜH. Late complications due to thoracic traumas. Ulus Travma Acil Cerrahi Derg. 2022 Mar;28(3):328-35. doi: 10.14744/tjtes.2020.07242
  42. Grant HM, Knee A, Tirabassi MV. Factors Associated with Successful Video-Assisted Thoracoscopic Surgery and Thoracotomy in the Management of Traumatic Hemothorax. J Surg Res. 2022 Jan;269:83-93. doi: 10.1016/j.jss.2021.08.007
  43. Csonka Á, Dózsai D, Ecseri T, Gárgyán I, Csonka I, Varga E. Drainage data analysis of chest-injured patients. Orv Hetil. 2019 Feb;160(5):172-78. doi: 10.1556/650.2019.31252 [Article in Hungarian]
  44. Hernandez MC, El Khatib M, Prokop L, Zielinski MD, Aho JM. Complications in tube thoracostomy: Systematic review and meta-analysis. J Trauma Acute Care Surg. 2018 Aug;85(2):410-16. doi: 10.1097/TA.0000000000001840
  45. Tanizaki S, Maeda S, Sera M, Nagai H, Hayashi M, Azuma H, Kano KI, Watanabe H, Ishida H. Small tube thoracostomy (20-22 Fr) in emergent management of chest trauma. Injury. 2017 Sep;48(9):1884-87. doi: 10.1016/j.injury.2017.06.021
  46. Fortune JB, Murphy S, Tiller K. Optimal Initial Positioning of Chest Tubes to Prevent Retained Hemothorax Using a Novel Steerable Chest Tube With Extendable Infusion Cannula. Mil Med. 2021 Jan 25;186(Suppl 1):324-30. doi: 10.1093/milmed/usaa295
Адрес для корреспонденции:
614990, Российская Федерация,
г. Пермь, ул. Петропавловская, 26,
Пермский государственный
медицинский университет им. акад. Е.А. Вагнера,
кафедра хирургии с курсом сердечно-сосудистой хирургии и инвазивной кардиологии,
тел.: +7 342 239-29-72,
e-mail: splaksin@mail.ru,
Плаксин Сергей Александрович
Cведения об авторах:
Плаксин Сергей Александрович, д.м.н., профессор кафедры хирургии с курсом сердечно-сосудистой хирургии и инвазивной кардиологии, Пермский государственный медицинский университет им. акад. Е.А. Вагнера, г. Пермь, Российская Федерация.
http://orcid.org/0000-0001-8108-1655

СЛУЧАИ ИЗ ПРАКТИКИ

С.А. ГОЛОБОРОДЬКО 1, 2, А.Е. ГАВРИКОВ 1, 2

АHОМАЛЬHЫЙ ДЛИHHЫЙ АБДУКТОР 1 ПАЛЬЦА КИСТИ: ОПИСАHИЕ СЛУЧАЯ

Харьковская медицинская академия последипломного образования 1,
КНП ХОС «Областная клиническая травматологическая больница» 2, г. Харьков,
Украина

Обычно одно мышечное брюшко длинного абдуктора 1 пальца кисти берет свое начало от задней поверхности локтевой кости чуть дистальнее места прикрепления мышцы супинатора, от межкостной мембраны и задней поверхности лучевой кости, затем в виде сухожилия проходит в первом костно-фиброзном канале разгибателей и прикрепляется к основанию 1 пястной кости. Иннервируется длинный абдуктор 1 пальца задним межкостным нервом. Однако существует множество особенностей строения длинного абдуктора 1 пальца. Описываемый в статье клинический случай является иллюстрацией одного необычного варианта анатомического строения длинного абдуктора 1 пальца. Девочка, 15 лет, предъявляла жалобы на наличие опухолевидного образования в области возвышения 1 пальца правой кисти, периодические боли в покое и значительные при физической нагрузке, нарушение функции кисти. Инструментальные методы исследования патологии не выявили. Установлен предварительный клинический диагноз: мягкотканное опухолевидное образование 1 пальца правой кисти. Во время операции выявлено, что несколько проксимальнее запястно-пястного сустава от наиболее радиально расположенной мышцы тенара в проксимальном направлении отходило обычное сухожилие, которое располагалось в первом костно-фиброзном канале разгибателей несколько радиальнее сухожилия длинного абдуктора 1 пальца. Нетипичное мышечное брюшко в дистальном направлении продолжалось до пястно-фалангового сустава 1 пальца. Выполнена лигаментотомия первого костно-фиброзного канала разгибателей. Положительный отдаленный результат операции подтвердил правильность выбранной тактики лечения.

Ключевые слова: аномальный длинный абдуктор 1 пальца кисти, клиническое наблюдение
с. 166-170 оригинального издания
Список литературы
  1. Hiit В, Seyhan Н, Wagner М, Zumhasch R, editors. Hand and wrist anatomy and biomechanics: A comprehensive guide. Stuttgart, New York, Delhi, Rio de Janeiro: Georg Thieme Verlag KG; 2017. 108 p.
  2. Cerqueira PC, Silveira D, Siqueira SL, Silva AT, Franco AG, Gama HVP, Sales MC, Casagrande MM, Oliveira BVM. Anomalous origin of the abductor pollicis longus (APL): clinical and surgical applications. J Morphol Sci. 2013;30 (3):152-55. http://www.jms. periodikos.com.br/article/587cb4bd7f8c9d0d058b4840/ pdf/jms-30-3-587cb4bd7f8c9d0d058b4840.pdf
  3. Iliev A, Georgiev GP, Kotov G, Landzhov B. The abductor pollicis longus tendon as grafting material for reconstructive surgery of the hand. Acta Morphol. Anthropol (Sofia);2017;24(1-2):68-73. http://www.iempam. bas.bg/journals/acta/acta24/68-73.pdf
  4. Karauda P, Olewnik L, Podgórski M, Polguj M, Ruzik K, Szewczyk B, Topol M. Anatomical variations of the abductor pollicis longus: a pilot study. Folia Morphol (Warsz). 2020;79(4):817-22. doi: 10.5603/FM.a2019.0134
  5. Mishall PL, Marsh AN, Perez D, Quezada XH, Stahl MC, Weinstock RE, Downie SA. Novel, bilateral, two-bellied muscles span the extensor forearm, thenar eminence to insert on the proximal phalanx of the thumb: clinical and embryological significance. Folia Morphol (Warsz). 2020;79(1):182-87. doi: 10.5603/FM.a2019.0067
  6. Rayan GM, Mustafa E. Anomalous abductor pollicis longus insertion in the thenar muscles. J Hand Surg Am. 1989 May;14(3):550-52. doi: 10.1016/s0363-5023(89)80023-1
  7. Elliott BG. Abductor pollicis longus: a case of mistaken identity. J Hand Surg Br. 1992 Aug;17(4):476-78. doi: 10.1016/s0266-7681(05)80278-5
  8. Rai R, Ranade AV, Mamatma T, Jui PJ, D’Costa S, Maneshvary C. A rare origin of abductor pollicis longus. Rom J Morphol Embryol. 2010;51(2):399-400. https://rjme.ro/RJME/resources/files/510210399400.pdf
  9. Soni G, Kumar BR. Bilateral double bellies of abductor pollicis longus. Int J Anat Res. 2017:5(Is.4.2): 4566-69. doi: 10.16965/ ijar.2017.397
  10. El-Beshbishy RA, Abdel-Hamid GA. Variations of the abductor pollicis longus tendon: an anatomic study. Folia Morphol (Warsz). 2013 May;72(2):161-66. doi: 10.5603/fm.2013.0027
  11. Ranade AV, Rai R, Murlimanju BV, Eladl MA. Atypical insertion of the abductor pollicis longus muscle, an anatomical case report. Ital J Anat Embryol. 2017;122(2):147-50. doi: 10.13128/IJAE-21319
  12. Macalister A. Additional observations on muscular anomalies in human anatomy (third series), with a catalogue of the principal muscular variations hitherto published. Trans Roy Irish Acad. 1875;25:1-130. http://www.jstor.org/stable/30079154
  13. Shetty P, Nayak SB. Additional digastric muscle associated with abductor pollicis longus muscle. OA Case Reports 2014 May 15;3(5):43.
  14. Rabi S, Indrasingh I, Koshy S, Holla SJ, Vettivel S. An accessory digastric abductor pollicis longus muscle: report of a case. Eur J Anat. 2006;10(2):79-81. https://www.researchgate.net/publication/28183585_ An_accessory_digastric_abductor_pollicis_longus_ muscle_Report_of_a_case
Адрес для корреспонденции:
61145, Украина,
г. Харьков, ул. Новгородская, 8, кв. 31,
моб. тел.: +38-068-919-89-14,
e-mail: golosa@ukr.net,
Голобородько Сергей Анатольевич
Cведения об авторах:
Голобородько Сергей Анатольевич, к.м.н., доцент кафедры комбустиологии, реконструктивной и пластической хирургии Харьковской медицинской академии последипломного образования, КНП ХОС «Областная клиническая травматологическая больница», г. Харьков, Украина.
https://orcid.org/0000-0002-0153-8158
Гавриков Александр Евгеньевич, к.м.н., доцент кафедры неотложных состояний и медицины катастроф Харьковской медицинской академии последипломного образования, директор, КНП ХОС «Областная клиническая травматологическая больница», г. Харьков, Украина.
https://orcid.org/0000-0002-6711-3689
Контакты | ©Витебский государственный медицинский университет, 2007-2023