2022 г. №5 Том 30

НАУЧHЫЕ ПУБЛИКАЦИИ

С.Г. СУЧКОВ, Д.А. АЛЕКСАHДРОВ, В.А. НИКОЛАЕВЦЕВ, Д.С. СУЧКОВ, А.С. ТОЛСТОКОРОВ, П.М. ТОПЧИЕВ, А.А. СКОРОХОД

ОПРЕДЕЛЕHИЕ КРОВЕHАПОЛHЕHИЯ И ЖИЗHЕСПОСОБHОСТИ БИОЛОГИЧЕСКИХ ТКАHЕЙ С ПОМОЩЬЮ КОМПАКТHОГО ЁМКОСТHОГО СЕHСОРА

ФГБОУ ВО «Саратовский государственный медицинский университет им. В.И. Разумовского Минздрава России»,
ФГБОУ ВО «Саратовский национальный исследовательский государственный университет имени Н.Г. Чернышевского», г. Саратов,
Российская Федерация

Цель. Поиск оптимальных временных интервалов применения ёмкостного сенсора и получение с его помощью универсальных нормированных показателей кровенаполнения и жизнеспособности тканей в интересах медицины катастроф и неотложной хирургии.
Материал и методы. Используется факт значительного различия диэлектрической проницаемости тканей, не наполненных кровью, и диэлектрической проницаемости крови. Поэтому уровень кровенаполнения ткани можно характеризовать величиной измеренной ёмкости СТ(t) электродной структуры, приложенной к ткани. Для исследования влияния кровенаполнения и жизнеспособности биологических тканей на показания ёмкостного сенсора были проведены эксперименты на 20 самцах белых лабораторных крыс массой 200-250 г. В первой группе из 10 животных проводили исследование показателей СТ(t) на коже бедра в течение 10 секунд с фиксацией результатов каждые 5 секунд до введения адреналина и через 5 минут после его введения. Во второй группе из 10 животных были проведены измерения СТ(t) на коже бедра в течение 1 минуты с фиксацией значений ёмкости через каждые 10 секунд для определения универсальных нормированных показателей кровенаполнения и жизнеспособности СN(t). Оценку значимости различий парных измерений абсолютных значений СТ(t) проводили по критерию Уилкоксона. Для определения значимости различий между предложенными нормированными показателями СN(t) у живых и мертвых животных использовали критерий Стьюдента.
Результаты. Прибор показал достаточную чувствительность при изменении кровенаполнения кожи в ответ на введения адреналина. Показатели ёмкостного сенсора у живых животных быстро и статистически значимо растут в течение одной минуты непрерывного измерения в отличие от мертвых тканей, где показатели не меняются. Установлено, что необходимую и достаточную информацию предоставляют значения ёмкости на десятой и двадцатой секундах измерения. Результаты измерений показали значительный разброс абсолютных значений ёмкости сенсора у разных животных, но близкую динамику нарастания этих показателей в одинаковых условиях эксперимента. Эти данные позволили рассчитать универсальные нормированные показатели для практического применения ёмкостного сенсора.
Заключение. Предложенный компактный автономный ёмкостный сенсор имеет перспективы применения в неотложной и сосудистой хирургии для экстренной оценки кровенаполнения и жизнеспособности тканей и органов пациентов. Установлены оптимальные временные промежутки и нормированные показатели выполняемых измерений.

Ключевые слова: биологическая ткань, кровенаполнение, ёмкостный сенсор, диэлектрическая проницаемость
с. 425-433 оригинального издания
Список литературы
  1. Дерюжов ВМ. Интраоперационная оценка жизнеспособности мышечной ткани. Казан Мед Журн. 2009;90(2):287-89. https://elibrary.ru/download/elibrary_12979830_23939950.pdf
  2. Липницкий ЕМ, Леонтьев АВ, Николаева ЕА. Способ диагностики состояния микроциркуляторного русла в области межкишечного анастомоза для профилактики его недостаточности. Хирургия Журн им НИ Пирогова. 2019;(2):78-81. doi: 10.17116/hirurgia201902178
  3. Лашнев СТ, Милюков ВЕ, Нурахметов ТМ, Полунин СВ, Сапин МР. Электрофизический способ выявления границы между тканью с необратимыми патологическими изменениями и жизнеспособной тканью. Вестн Новых Медицинских Технологий. 2008;15(1):177-78. https://elibrary.ru/download/elibrary_13072001_54869210.pdf
  4. Тучин ВВ. Лазеры и волоконная оптика в биомедицинских исследованиях [Интернет]. 2-е изд., испр. и доп. Москва, РФ: Физматлит; 2010. 488 с. https://www.rfbr.ru/rffi/ru/books/o_68122
  5. Verkhovskii RA, Kozlova AA, Sindeeva OA, Kozhevnikov IO, Prikhozhdenko ES, Mayorova OA, Grishin OV, Makarkin MA, Ermakov AV, Abdurashitov AS, Tuchin VV, Bratashov DN. Lightsheet-based flow cytometer for whole blood with the ability for the magnetic retrieval of objects from the blood flow. Biomed Opt Express. 2020 Dec 15;12(1):380-94. doi: 10.1364/BOE.413845. eCollection 2021 Jan 1.
  6. Милюков ВЕ, Полунин СВ. Современные методы определения жизнеспособности мышечной ткани при выборе объема операции. Хирургия Журн им НИ Пирогова. 2011;(4):73-77. https://www.mediasphera.ru/issues/khirurgiya-zhurnal-im-n-i-
    pirogova/2011/4/downloads/ru/030023-12072011415
  7. Торнуев ЮВ, Колдышева ЕВ, Лапий ГА, Балахнин СМ, Бушманова ГМ, Преображенская ВК. Электроимпедансометрия в гистологической технологии. Фундам Исследования. 2013;(6 ч 5):1164-67. https://fundamental-research.ru/ru/article/view?id=31708
  8. Baer C, Schulz C, Noizon G, Rolfes I, Musxh Т. In: On the human blood permittivity: model parameters and substitution material for mmWave applications. 2015 IEEE MTT-S 2015 International Microwave Workshop Series on RF and Wireless Technologies for Biomedical and Healthcare Applications (IMWS-BIO); Taipei, Taiwan; 2015. p. 30-31. doi: 10.1109/IMWS-BIO.2015.7303760
  9. Beving H, Eriksson LE, Davey CL, Kell DB. Dielectric properties of human blood and erythrocytes at radio frequencies (0.2-10 MHz); dependence on cell volume fraction and medium composition. Eur Biophys J. 1994;23(3):207-15. doi: 10.1007/BF01007612
  10. Salahuddin S, Farrugia L, Sammut CV, O’Halloran M, Porter E. Dielectric Properties of Fresh Human Blood. In: 2017 International Conference on Electromagnetics in Advanced Applications (ICEAA); 2017. p. 356-59. https://www.um.edu.mt/library/oar/bitstream/123456789/25573/1/Paper_draft_V2.pdf
  11. Gun L, Ning D, Liang Z. Effective Permittivity of Biological Tissue: Comparison of Theoretical Model and Experiment. Math Probl Eng. 2017;(1):1-7. doi: 10.1155/2017/7249672
  12. Брихта М. (пер Власенко А.). Преобразователи ёмкости в цифровой код на основе сигма-дельта модулятора. Компоненты и Технологии [Интернет]. 2006;(1). 3 с. https://kit-e.ru/wp-content/uploads/2006_01_34.pdf
  13. Голуб В. Цифровая обработка сигналов: cигма-дельта АЦП. Электроника: Наука, Технология, Бизнес. 2001;(4):22-27. https://www.electronics.ru/files/article_pdf/1/article_1450_780.pdf
  14. Сучков СГ, Александров ДА, Николаевцев ВА, Сучков ДС, Толстиков АВ, Папаева ЖВ, Толстокоров АС. Измеритель кровенаполнения биотканей на основе ёмкостного датчика. Журн Радиоэлектроники [Электронный журнал]. 2019;(4). Режим доступа: http://jre.cplire.ru/jre/apr19/11/text.pdf. doi: 10.30898/1684-1719.2019.4.11
  15. Сучков СГ, Александров ДА, Николаевцев ВА, Сучков ДС, Толстокоров АС. О причине нестационарности показаний ёмкостного датчика кровенаполнения для живых биотканей. Журн Радиоэлектроники [Электронный журнал]. 2020;(6):13. Режим доступа: http://jre.cplire.ru/jre/jun20/10/text.pdf. doi: 10.30898/1684-1719.2020.6.10
  16. Gregory AP, Clarke RN. Dielectric metrology with coaxial sensors. Meas Sci Technol. 2007;18(5):1372-86. doi: 10.1088/0957-0233/18/5/026
  17. Липатов ВА, Крюков АА, Северинов ДА, Саакян АР. Этические и правовые аспекты проведения экспериментальных биомедицинских исследований in vivo. Часть I. Рос Мед-Биол Вестн им Акад ИП Павлова. 2019;27(1):80-92. doi: 10.23888/PAVLOVJ201927180-92
  18. Липатов ВА, Крюков АА, Северинов ДА, Саакян АР. Этические и правовые аспекты проведения экспериментальных биомедицинских исследований in vivo. Часть II. Рос Мед-Биол Вестн им Акад ИП Павлова. 2019;27(2):245-57. doi: 10.23888/PAVLOVJ2019272245-257
  19. Wilcoxon F. Individual comparisons by ranking methods. Biometrics. 1945 Dec;1(6):80-83. doi: 10.2307/3001968
  20. Лапач СН, Чубенко АВ, Бабич ПН. Статистика в науке и бизнесе. Киев, Украина: Морион; 2002. 630 с.
Адрес для корреспонденции:
410012, Российская Федерация,
Приволжский федеральный округ, Саратовская область, г. Саратов, ул. Большая Казачья 112, ФГБОУ ВО «Саратовский государственный медицинский университет им. В.И. Разумовского Минздрава России»,
кафедра хирургии и онкологии,
тел.: +7-987-823-06-09,
e-mail: denirov@bk.ru,
Александров Денис Анатольевич
Cведения об авторах:
Сучков Сергей Германович, д.ф.-м.н., старший научный сотрудник, директор Научно-технологического центра «Микро- и наноэлектроника» ФГБОУ ВО «Саратовский национальный исследовательский государственный университет имени Н.Г. Чернышевского», г. Саратов, Российская Федерация.
http://orcid.org/0000-0001-9159-3515
Александров Денис Анатольевич, д.м.н., профессор, профессор кафедры хирургии и онкологии ФГБОУ ВО «Саратовский государственный медицинский университет им. В.И. Разумовского Минздрава России», г. Саратов, Российская Федерация.
http://orcid.org/0000-0001-5503-8354
Николаевцев Виктор Андреевич, к.ф.-м.н., доцент, доцент кафедры микро- и наноэлектроники на базе АО «НПП «Контакт», ведущий инженер НТЦ «Микро- и наноэлектроника» ФГБОУ ВО «Саратовский национальный исследовательский государственный университет имени Н.Г. Чернышевского», г. Саратов, Российская Федерация.
http://orcid.org/0000-0002-1233-3983
Сучков Дмитрий Сергеевич, к.ф.-м.н., заместитель директора НИИ механики и физики ФГБОУ ВО «Саратовский национальный исследовательский государственный университет имени Н.Г.Чернышевского», г. Саратов, Российская Федерация.
http://orcid.org/0000-0003-4527-7874
Толстокоров Александр Сергеевич, д.м.н., профессор, заведующий кафедрой хирургии и онкологии ФГБОУ ВО «Саратовский государственный медицинский университет им. В.И. Разумовского Минздрава России», г. Саратов, Российская Федерация.
http://orcid.org/0000-0002-8541-5330
Топчиев Павел Михайлович, клинический ординатор кафедры хирургии и онкологии ФГБОУ ВО «Саратовский государственный медицинский университет им. В.И. Разумовского Минздрава России», г. Саратов, Российская Федерация.
http://orcid.org/0000-0002-7189-5396
Скороход Анатолий Андреевич, студент 3 курса ФГБОУ ВО «Саратовский государственный медицинский университет им. В.И. Разумовского Мин-здрава России», г. Саратов, Российская Федерация.
http://orcid.org/0000-0001-9071-6579

А.Т. ЩАСТHЫЙ, А.С. ОСОЧУК, А.Ф. МАРЦИHКЕВИЧ, С.С. ОСОЧУК

ВЛИЯHИЕ ТАКРОЛИМУСА HА ДИHАМИКУ ИЗМЕHЕHИЙ ПОКАЗАТЕЛЕЙ КЛЕТОЧHОГО ИММУHИТЕТА В РАHHИЕ СРОКИ ПОСЛЕ ТРАHСПЛАHТАЦИИ ПОЧКИ

Витебский государственный медицинский университет, г. Витебск,
Республика Беларусь

Цель. Изучить влияние такролимуса на динамику изменений некоторых показателей клеточного иммунитета после пересадки почки у мужчин и женщин.
Материалы и методы. В исследование включено 28 человек обоего пола (15 мужчин и 13 женщин второго периода зрелого возраста (36-60 лет – мужчины и 36-55 лет – женщины)) с пересадкой почки в связи с хронической почечной недостаточностью. Осуществлялся забор венозной крови при поступлении (перед операцией), после операции (перед первым назначением такролимуса), через 24 часа и на 7-е сутки после операции пересадки почки. Забранную кровь исследовали на проточном цитометре в течение не более 4 часов после её забора.
Результаты. У женщин с хронической почечной недостаточностью в предоперационном периоде количество дендритных клеток ниже, чем у мужчин. После трансплантации почки выявлено снижение количества дендритных клеток миелоидного и лимфоидного ряда, снижение количества общих Т-лимфоцитов за счет Т-хелперов и увеличение количества натуральных киллеров. Применение такролимуса вернуло количество общих Т-лимфоцитов к дооперационным значениям за счет Т-хелперов и уменьшило количество натуральных киллеров, увеличило количество пре-B и B-лимфоцитов.
Заключение. Обнаруженные динамические изменения показателей клеточного иммунитета после трансплантации почки могут являться благоприятными для приживаемости трансплантата. Однако обращает на себя внимание рост количества CD3+СD4+ после назначения такролимуса, а также рост содержания CD19, требующие дальнейших исследований для отнесения выявленных эффектов к позитивным или негативным.

Ключевые слова: такролимус, трансплантация почки, дендритные клетки, натуральные киллеры, T-лимфоциты, B-лимфоциты
с. 434-439 оригинального издания
Список литературы
  1. Клим Ф, Набоков АВ. Такролимус в базовой иммуносупрессии после трансплантации почки: практические рекомендации по применению. Нефрология. 2007;11(4):95-98. doi: 10.24884/1561-6274-2007-11-4-95-98
  2. Liu J, Farmer JD Jr, Lane WS, Friedman J, Weissman I, Schreiber SL. Calcineurin is a common target of cyclophilin-cyclosporin A and FKBP-FK506 complexes. Cell. 1991;66(4):807-15. doi: 10.1016/0092-8674(91)90124-h
  3. Stuetz A, Grassberger M, Meingassner JG. Pimecrolimus (Elidel, SDZ ASM 981)--preclinical pharmacologic profile and skin selectivity. Semin Cutan Med Surg. 2001;20(4):233-41. doi: 10.1053/sder.2001.29066
  4. Tornatore KM, Meaney CJ, Attwood K, Brazeau DA, Wilding GE, Consiglio JD, Gundroo A, Chang SS, Gray V, Cooper LM, Venuto RC. Race and sex associations with tacrolimus pharmacokinetics in stable kidney transplant recipients. Pharmacotherapy. 2022;42(2):94-105. doi: 10.1002/phar.
  5. He Y, Ma Y, Fu Q, Liang J, Yu X, Huang H, Zhong L, Huang B. The CYP3A5 and ABCB1 Gene Polymorphisms in Kidney Transplant Patients and Establishment of Initial Daily Tacrolimus Dosing Formula. Ann Pharmacother. 2022;56(4):393-400. doi: 10.1177/
  6. Бунак ВВ. Выделение этапов онтогенеза и хронологические границы возрастных периодов. В кн: Бунак ВВ. Советская педагогика. 1965;11:105-19.
  7. Bates D, Machler M, Bolker B. Walker S. Fitting Linear Mixed-Effects Models Using lme4. J. Stat. Softw. 2015;67(1):1-48. doi: 10.18637/jss.v067.i01
  8. Searle SR, Speed FM, Milliken GA. Population Marginal Means in the Linear Model: An Alternative to Least Squares Means. Am. Stat. 1980;34(4):216-21. doi: 10.1080/00031305.1980.10483031
  9. Hesselink DA, Vaessen LM, Hop WC, Schoordijk W, Ijzermans JN, Baan CC, Weimar W. The effects of renal transplantation on circulating dendritic cells. Clin Exp Immunol. 2005;140(2):384-93. doi: 10.1111/j.1365-2249.2005.02755.x
  10. Shodell M, Siegal FP. Corticosteroids depress IFN-alpha-producing plasmacytoid dendritic cells in human blood. J Allergy Clin Immunol. 2001;108(3):446-48. doi: 10.1067/mai.2001.117928.
  11. Roelen DL, Schuurhuis DH, van den Boogaardt DE, Koekkoek K, van Miert PM, van Schip JJ, Laban S, Rea D, Melief CJ, Offringa P, Ossendorp F, Claas FH. Prolongation of skin graft survival by modulation of the alloimmune response with alternatively activated dendritic cells. Transplantation. 2003;76(11):1608-15. doi: 10.1097/01.TP.0000086340.30817.BA
  12. Mirenda V, Berton I, Read J, Cook T, Smith J, Dorling A, lan Lechler R. Modified dendritic cells coexpressing self and allogeneic major histocompatability complex molecules: an efficient way to induce indirect pathway regulation. J Am Soc Nephrol. 2004;15(4):987-97. doi: 10.1097/01.asn.0000119575.98696.1d.
  13. Kogina K, Shoda H, Yamaguchi Y, Tsuno NH, Takahashi K, Fujio K, Yamamoto K. Tacrolimus differentially regulates the proliferation of conventional and regulatory CD4(+) T cells. Mol Cells. 2009;28(2):125-30. doi: 10.1007/s10059-009-0114-z
  14. Hirose T, Iwami D, Hotta K, Sasaki H, Higuchi H, Shinohara N. Percentage of CD19+ Cells in Peripheral Blood Lymphocytes After Rituximab-Based Desensitization as a Predictor of Acute Antibody-Mediated Rejection in ABO-Incompatible Kidney Transplantation. Transplant Proc. 2019;51(5):1382-86. doi: 10.1016/j.transproceed.2019.01.127
  15. Takahashi K, Saito K. ABO-incompatible kidney transplantation. Transplant Rev (Orlando). 2013;27(1):1-8. doi: 10.1016/j.trre.2012.07.003
  16. Wai LE, Fujiki M, Takeda S, Martinez OM, Krams SM. Rapamycin, but not cyclosporine or FK506, alters natural killer cell function. Transplantation. 2008;85(1):145-49. doi: 10.1097/01.tp.0000296817.28053.7b.
  17. Kitchens WH, Uehara S, Chase CM, Colvin RB, Russell PS, Madsen JC. The changing role of natural killer cells in solid organ rejection and tolerance. Transplantation. 2006;81(6):811-17. doi: 10.1097/01.tp.0000202844.33794.0e
  18. Miyairi S, Baldwin WM 3rd, Valujskikh A, Fairchild RL. Natural Killer Cells: Critical Effectors During Antibody-mediated Rejection of Solid Organ Allografts. Transplantation. 2021;105(2):284-90. doi: 10.1097/TP.0000000000003298
Адрес для корреспонденции:
210009, Республика Беларусь,
г. Витебск, пр-т Фрунзе, 27,
Витебский государственный
медицинский университет,
кафедра госпитальной хирургии
с курсом ФПК и ПК,
тел.: +375-29-595-04-03,
e-mail: aos19950207@gmail.com,
Осочук Александр Сергеевич
Cведения об авторах:
Щастный Анатолий Тадеушевич, д.м.н., профессор, ректор Витебского государственного медицинского университета, г. Витебск, Республика Беларусь. https://orcid.org/0000-0003-2796-4240
Осочук Александр Сергеевич, аспирант кафедры госпитальной хирургии с курсом ФПК и ПК, Витебский государственный медицинский университет, г. Витебск, Республика Беларусь.
https://orcid.org/0000-0002-5942-3601
Марцинкевич Александр Францевич, к.б.н., доцент кафедры общей и клинической биохимии с курсом ФПК и ПК, Витебский государственный медицинский университет, г. Витебск, Республика Беларусь. https://orcid.org/0000-0003-3655-4489
Осочук Сергей Стефанович, д.м.н., профессор, заведующий НИЛ ВГМУ, Витебский государственный медицинский университет, г. Витебск, Республика Беларусь.
https://orcid.org/0000-0003-2074-3832

ОБЩАЯ И ЧАСТHАЯ ХИРУРГИЯ

Д.С. СЁМИH, В.П. ЗЕМЛЯHОЙ, Б.В. СИГУА, Е.Г. ТИМОФЕЕВА, А.И. АHДРЕЕВА

ДИФФЕРЕHЦИРОВАHHЫЙ АЛГОРИТМ ВЫБОРА МЕТОДА МАЛОТРАВМАТИЧHОЙ ОПЕРАЦИИ ПРИ ПУПОЧHЫХ ГРЫЖАХ

Северо-Западный государственный университет имени И.И. Мечникова, г. Санкт-Петербург,
Российская Федерация

Цель. Оптимизация алгоритма выбора малотравматичного оперативного лечения пациентов с пупочными грыжами.
Материал и методы. С 2011 по 2018 г. было пролечено 214 пациентов с пупочными грыжами. Эффективность лечения оценивалась по критерию рецидивирования (выявлен у 42 (19,6%) пациентов). При анализе результатов лечения пациентов данной группы оценка результатов проводилась по шкале GAIS. Были отобраны 56 (26,2%) пациентов в возрасте от 25 до 44 лет. Полученные результаты оценены как неудовлетворительные. Это побудило разработать и внедрить в клиническую практику дифференцированный алгоритм выбора метода малотравматиченой операции при пупочных грыжах. Основную группу составили 54 пациента, оперированных по разработанному алгоритму. Противопоказаниями к использованию эндопротеза считались: планируемая беременность и/или индивидуальная непереносимость синтетических материалов. Суть алгоритма состоит в выборе подходящей малотравматиченой операции и достижении хорошего косметического эффекта. Для профилактики формирования деформаций после оперативного лечения в данной зоне рекомендовано выполнять операции через верхний интраумбиликальный доступ. На завершающем этапом операции выполняют умбиликопластику, производя реконструкцию нормальной анатомии пупка за счет формирования поверхностного и трех внутренних циркулярных швов рассасывающейся атравматической монофиламентной нитью.
Результаты. Пациентам, которым проводилась умбиликопластика, оценка косметического эффекта осуществлялась по международной шкале GAIS. 12 пациентов с реконструкцией пупочной области были женщинами, а деформация была связана с перенесенными родами. При оценке по шкале GAIS полностью были удовлетворены результатом лечения 83% (10) респондентов, а в 2 (17%) наблюдениях отмечено, что пациентки частично удовлетворены результатом. Оценка отдаленных результатов осуществлялась во всех случаях. Пациенты наблюдались от 6 до 12 месяцев. Рецидивов не выявлено.
Заключение. Дифференцированный алгоритм выбора метода малотравматиченой операции при пупочных грыжах позволяет выбрать эффективный тип хирургического вмешательства с достижением максимально возможного косметического эффекта.

Ключевые слова: пупочная грыжа, передняя брюшная стенка, пупочное кольцо, хирургическое вмешательство
с. 440-446 оригинального издания
Список литературы
  1. Жебровский ВВ. Хирургия грыж живота. Москва, РФ: Мед информ агентство; 2005. 384 с.
  2. Григорьев ГС, Кривощеков ЕП, Григорьева ТС, Костин АЮ. Особенности внутрибрюшного эндопротезирования пупочных и послеоперационных вентральных грыж. Сарат Науч-Мед Журн. 2012;8(1):141-45. http://ssmj.ru/system/files/201201_141-145_.pdf
  3. Воскресенский ПВ. Хирургия грыж брюшной стенки [Интернет]. Москва: Медицина; 1965. 326 с. https://royallib.com/book/voskresenskiy_nikolay/hirurgiya_grig_bryushnoy_stenki
  4. Diaspro A, Cavallini M, Piersini P, Sito G. Gummy Smile Treatment: Proposal for a Novel Corrective Technique and a Review of the Literature. Aesthet Surg J. 2018 Nov 12;38(12):1330-38. doi: 10.1093/asj/sjy174
  5. Schwarz J, Reinpold W, Bittner R. Endoscopic mini/less open sublay technique (EMILOS)-a new technique for ventral hernia repair. Langenbecks Arch Surg. 2017 Feb;402(1):173-80. doi: 10.1007/s00423-016-1522-0
Адрес для корреспонденции:
195067, Российская Федерация,
г. Санкт-Петербург, Пискаревский пр., 47,
Северо-Западный государственный
медицинский университет
имени И.И. Мечникова,
кафедра факультетской
хирургии имени И.И. Грекова,
тел.: +7 921 748 08 58,
e-mail: cosmo@list.ru,
Сёмин Дмитрий Сергеевич
Cведения об авторах:
Сёмин Дмитрий Сергеевич, врач-хирург хирургическогоотделения №2 ФГБОУ ВО СЗГМУ им. И.И. Мечникова Минздрава России, г. Санкт-Петербург, Российская Федерация.
ORCID: 0000-0002-5630-4914
Земляной Вячеслав Петрович, д.м.н., профессор, заведующий кафедрой факультетской хирургии им. И.И. Грекова ФГБОУ ВО СЗГМУ им. И.И. Мечникова Минздрава России, декан хирургического факультета ФГБОУ ВО СЗГМУ им. И.И. Мечникова Минздрава России, Заслуженный врач РФ, г. Санкт-Петербург, Российская Федерация.
https://orcid.org/0000-0002-2329-0023
Сигуа Бадри Валериевич, д.м.н, руководитель Центра клинической нкологии СЗГМУ им. И.И. Мечникова, заместитель главного врача по онкологии, профессор кафедры факультетской хирургии им. И.И. Грекова ФГБОУ ВО СЗГМУ им. И.И. Мечникова Минздрава России, г. Санкт-Петербург, Российская Федерация.
https://orcid.org/0000-0002-4556-4913
Тимофеева Елена Георгиевна, клинический ординатор кафедры факультетской хирургии им. И.И. Грекова ФГБОУ ВО СЗГМУ им. И.И. Мечникова Минздрава России, г. Санкт-Петербург, Российская Федерация.
https://orcid.org/0000-0003-4989-5362
Андреева Арина Игоревна, студент лечебного факультета ФГБОУ ВО СЗГМУ им. И.И. Мечникова Минздрава России, г. Санкт-Петербург, Российская Федерация.
https://orcid.org/0000-0003-4365-5210

М.Д. ЛЕВИH 1, 2, В.И. АВЕРИH 1, 3, Ю.Г. ДЕГТЯРЕВ 1, 3, Т.М. БОЛБАС 1

МЕТОД ОПРЕДЕЛЕHИЯ ОБЪЕМА ПРАВОГО ЛЕГКОГО И ЕГО РОЛЬ В ДИАГHОСТИКЕ HЕКОТОРЫХ ЗАБОЛЕВАHИЙ ЛЕГКИХ

ГУ «Республиканский научно-практический центр детской хирургии» 1, г. Минск, Республика Беларусь,
Дорот, Государственный гериатрический центр, Нетания, Израиль 2,
УО «Белорусский государственный медицинский университет» 3, г. Минск,
Республика Беларусь

Цель. Повысить точность диагностики заболеваний, сопровождающихся изменением объема легких, как у детей, так и у взрослых пациентов и более точно оценить динамику процесса.
Материал и методы. Проводим горизонтальную линию (изолинию) через нижний край 10 грудного позвонка. Справа по среднеключичной линии определяем высоту купола в сантиметрах. Она представляет собой перпендикуляр от купола до изолинии, который опускается (со знаком +) или возводится к изолинии (со знаком –). Мы также определяем глубину синуса, как расстояние от пересечения изолинии с правым краем грудной клетки до крайней точки пазухи. Если эта линия находится выше изолинии, то она имеет знак «плюс» (+), если ниже – «минус» (–). Интегральная характеристика объема легких, то есть индекс диафрагмы (ИД), представляет собой сумму высоты купола и глубины синуса в сантиметрах.
Результаты. В контрольной группе ИД (3,04 ± 0,15) у детей достоверно не отличался от ИД у взрослых (3,12 ± 0,07). При ателектазе легкого или при гидротораксе ИД увеличивается более чем на 5 у 93% пациентов. ИД был отрицательным при острой респираторной вирусной инфекции, аспирации, хронической обструктивной болезни легких (ХОБЛ) и астме.
Заключение. Предлагаемый способ применим как у детей, так и у взрослых пациентов. Он позволяет более точно диагностировать заболевания, сопровождающиеся изменением объема легких, и оценить динамику процесса. При ИД 5 и более вероятность ателектаза приближается к 93%. ХОБЛ и хронические неспецифические заболевания легких (ХНЗЛ) могут иметь сходные клинические симптомы, но ИД снижается при ХОБЛ, а при ХНЗЛ увеличивается, что является надежным дифференциально-диагностическим признаком.

Ключевые слова: ателектаз, аспирация, хроническая обструктивная болезнь легких, объем легких, рентгенограмма легких
с. 447-452 оригинального издания
Список литературы
  1. Goodman LR, ed. Felson’s Principles of Chest Roentgenology, A Programmed Text. Fifth ed. Philadelphia, United States; 2020.
  2. Левин МД. Метод определения объема легких и его роль в диагностике некоторых заболеваний у детей. Здравоохранение Белоруссии. 1988;(11):51-55.
  3. Elsallabi O, Smer A, DeVrieze B, Sirineni G. Scimitar Syndrome. J Gen Intern Med. 2016 Feb;31(2):253-54. doi: 10.1007/s11606-015-3358-7
  4. Butler JP, Malhotra A, Loring SH. Revisiting atelectasis in lung units with low ventilation/perfusion ratios. J Appl Physiol (1985). 2019 Mar 1;126(3):782-86. doi: 10.1152/japplphysiol.00354.2018
Адрес для корреспонденции:
220116, Республика Беларусь,
г. Минск, пр. Дзержинского, 83,
Белорусский государственный медицинский университет, кафедра детской хирургии,
тел. раб.: +375 017 290-49-23,
e-mail: averinvi@mail.ru,
Аверин Василий Иванович
Cведения об авторах:
Левин Михаил Давидович, д.м.н., рентгенолог Государственного гериатрического центра (Дорот), Нетания, Израиль.
https://orcid.org/0000-0001-7830-1944
Аверин Василий Иванович, доктор мед наук, профессор, заведующий кафедрой детской хирургии, Белорусский государственный медицинский университет, г. Минск, Республика Беларусь.
https://orcid.org/0000-0003-3343-8810
Дегтярев Юрий Григорьевич, доктор мед наук, профессор кафедры детской хирургии Белорусский государственный медицинский университет, г. Минск, Республика Беларусь.
https://orcid.org/0000-0002-2696-4989
Болбас Тамара Матвеевна, врач-рентгенолог, РНПЦ детской хирургии, г. Минск, Республика Беларусь.
https://orcid.org/0000-0002-5291-9356

П.С. АHДРЕЕВ, О.Е. ДАВЫДОВА, С.Е. КАТОРКИH, М.М. НИКОЛАЕВ

КОМПЛЕКСHОЕ ЛЕЧЕHИЕ ПАЦИЕHТОВ С ТЯЖЕЛЫМИ ФОРМАМИ ЯЗВЕHHОГО КОЛИТА

ФГБОУ ВО «Самарский государственный медицинский университет» Минздрава России, г. Самара, Российская Федерация

Цель. Улучшить результаты лечения пациентов с язвенным колитом с помощью персонифицированной антибактериальной терапии, подобранной на основании микробиологического исследования биоптатов слизистой толстой кишки.
Материал и методы. Работа основана на анализе результатов лечения 80 пациентов, у которых была диагностирована тяжелая атака язвенного колита. В основной группе пациентов (n=40) комплексное лечение дополняли назначением антибактериальной терапии с учетом чувствительности к ней микроорганизмов, полученных из биоптатов стенки толстой кишки. В контрольной группе пациентам (n=40) назначали общепринятое лечение. Ближайшие результаты лечения у пациентов групп сравнения отслежены в течение 30 и 90 дней. Отдаленные результаты проанализированы через 6 и 12 месяцев.
Результаты. Через 2 недели у всех пациентов основной группы стул нормализовался, у пациентов группы сравнения нормализация стула была отмечена лишь через 1 месяц от начала лечения. У 24 (60 %) пациентов основной группы на 7-е сутки лечения уровень лейкоцитов крови был в пределах нормы, тогда как в группе сравнения этот показатель нормализовался только у 4 (10 %) пациентов. На 7,5 % чаще пациенты в контрольной группе подвергались хирургическому лечению. В контрольной группе у 6 (15 %) из 7 оперированных пациентов случились осложнения в стационаре.
В основной группе лишь у 1 (2,5 %) пациента зарегистрирован рецидив заболевания через 6 месяцев после проведенного лечения, тогда как в контрольной группе рецидив возникал в 4 раза чаще.
Заключение. Использование персонифицированной антибактериальной терапии, подобранной на основании результатов микробиологического исследования биоптатов слизистой толстой кишки, улучшает результаты лечения пациентов с тяжелыми формами язвенного колита, позволяя добиться скорой ремиссии заболевания с увеличением ее сроков, а при хирургическом лечении пациентов уменьшить количество периоперационных осложнений.

Ключевые слова: язвенный колит, микробиологическое исследование, антибактериальная терапия, колэктомия
с. 453-461 оригинального издания
Список литературы
  1. Ивашкин ВТ, Шелыгин ЮА, Белоусова ЕА, Абдулганиева ДИ, Алексеева ОА, Ачкасов СИ, Валуйских ЕЮ, Варданян АВ, Веселов АВ, Веселов ВВ, Головенко ОВ, Губонина ИВ, Жигалова ТН, Кашников ВН, Князев ОВ, Макарчук ПА, Москалев АИ, Нанаева БА, Низов АА, Никитина НВ, Николаева НН, Павленко ВВ, Полуэктова ЕА, Светлова ИО, Тарасова ЛВ, Ткачев АВ, Фролов СА, Хлынова ОВ, Чашкова ЕЮ, Шапина МВ, Шептулин АА, Шифрин ОС, Щукина ОБ. Проект клинических рекомендаций по диагностике и лечению язвенного колита. Колопроктология. 2019;18(4):7-37. doi: 10.33878/2073-7556-2019-18-4-7-36
  2. Жуков БН, Сухобоков АА. Результаты комплексного лечения больных неспецифическим язвенным колитом с применением ксеноспленотерапии. Лечащий Врач. 2011;(3):84-86. https://www.lvrach.ru/2011/03/15435156
  3. Cosnes J, Gower-Rousseau C, Seksik P, Cortot A. Epidemiology and natural history of inflammatory bowel diseases. Gastroenterology. 2011 May;140(6):1785-94. doi: 10.1053/j.gastro.2011.01.055
  4. Белоусова ЕА, Абдулганиева ДИ, Алексеева ОП, Алексеенко СА, Барановский АЮ, Валуйских ЕЮ, Головенко АО, Головенко ОВ, Жигалова ТН, Князев ОВ, Куляпин АВ, Лахин АВ, Ливзан МА, Лубянская ТГ, Николаева НН, Никитина НВ, Никулина ИВ, Осипенко МФ, Павленко ВВ, Парфенов АИ, Рогачиков ЮЕ, Светлова ИО, Ткачев АВ, Ткаченко ЕИ, Халиф ИЛ, Чашкова ЕЮ, Щукина ОБ, Язенок НС, Яковлев АА. Социально–демографическая характеристика, особенности течения и варианты лечения воспалительных заболеваний кишечника в России. Результаты двух многоцентровых исследований. Альм Клин Медицины. 2018;46(5):445-63. doi: 10.18786/2072-0505-2018-46-5-445-463
  5. Кузнецова ЭЭ, Горохова ВГ, Богородская СЛ. Микробиота кишечника. Роль в развитии различных патологий. Клин Лаб Диагностика. 2016;61(10):723-26. doi: 10.18821/0869-2084-2016-61-10-723-726
  6. Alipour M, Zaidi D, Valcheva R, Jovel J, Martínez I, Sergi C, Walter J, Mason AL, Wong GK, Dieleman LA, Carroll MW, Huynh HQ, Wine E. Mucosal Barrier Depletion and Loss of Bacterial Diversity are Primary Abnormalities in Paediatric Ulcerative Colitis. J Crohns Colitis. 2016 Apr;10(4):462-71. doi: 10.1093/ecco-jcc/jjv223
  7. Карпухин ОЮ, Хасанов ЭР, Бикбов БШ. Трансплантация фекальной микробиоты в современной клинической практике. Практ Медицина [Интернет]. 2017 [ссылка активна 2022 Июнь 08];(6):7-12. http://pmarchive.ru/el-arxiv/arxiv-za-2017-god/prakticheskaya-medicina-6-107-xirurgiya/
  8. Халиф ИЛ, Шапина МВ, Головенко АО, Белоусова ЕА, Чашкова ЕЮ, Лахин АВ, Князев ОВ, Барановский АЮ, Николаева НН, Ткачев АВ. Течение хронических воспалительных заболеваний кишечника и методы их лечения, применяемые в Российской Федерации (Результаты многоцентрового популяционного одномоментного наблюдательного исследования). Рос Журн Гастроэнтерологии, Гепатологии, Колопроктологии. 2018;28(3):54-62. doi: 10.22416/1382-4376-2018-28-3-54-62
  9. Белоус СС, Халиф ИЛ, Головенко ОВ, Корнева ТК. Эффективность антибактериальной терапии в комплексном лечении язвенного колита с проявлениями синдрома раздраженного кишечника. Фарматека [Интернет]. 2015 [доступно 2022 Июнь 08];(2):66-71. https://pharmateca.ru/ru/archive/article/30800
  10. Першко АМ, Гриневич ВБ, Соловьев ИА, Шотик АВ, Курило ДП. Частные вопросы патогенеза воспалительных заболеваний кишечника. Эксперим и Клин Гастроэнтерология. 2018;(5):140-49.
  11. Khan KJ, Ullman TA, Ford AC, Abreu MT, Abadir A, Marshall JK, Talley NJ, Moayyedi P. Antibiotic therapy in inflammatory bowel disease: a systematic review and meta-analysis. Am J Gastroenterol. 2011 Apr;106(4):661-73. doi: 10.1038/ajg.2011.72
  12. Царьков ПВ, Кравченко АЮ, Тулина ИА, Киценко ЮЕ. Непосредственные и отдаленные результаты трехэтапного хирургического лечения язвенного колита с формированием J-образного илеорезервуара. Рос Журн Гастроэнтерологии, Гепатологии, Колопроктологии. 2016; 26(2): 64-72. doi: 10.22416/1382-4376-2016-26-2-64-72
  13. Рыбальченко ОВ, Бондаренко ВМ, Орлова ОГ. Структура и функции бактериальных биопленок симбиотических и условно-патогенных бактерий. Верхневолж Мед Журн. 2013;11(4):37-42.
  14. Шумилов П. Нерешенные вопросы патогенеза воспалительных заболеваний кишечника у детей. Роль пристеночной микрофлоры кишечника. Педиатр Фармакология. 2010; 7 (5): 54-58.
Адрес для корреспонденции:
443099, Российская Федерация,
г. Самара, ул. Чапаевская, 89,
Самарский государственный
медицинский университет,
кафедра госпитальной хирургии,
тел.: +7 927 206-71-02,
e-mail: katorkinse@mail.ru,
Каторкин Сергей Евгеньевич
Cведения об авторах:
Андреев Павел Сергеевич, к.м.н., доцент кафедры госпитальной хирургии, заведующий колопроктологическим отделением клиники госпитальной хирургии ФГБОУ ВО «Самарский государственный медицинский университет» Минздрава России, г. Самара, Российская Федерация.
http://orcid.org/0000-0002-0264-7305
Давыдова Ольга Евгеньевна, к.м.н., врач колопроктолог клиники госпитальной хирургии, ассистент кафедры госпитальной хирургии ФГБОУ ВО «Самарский государственный медицинский университет» Минздрава России, г. Самара, Российская Федерация.
http://orcid.org/0000-0002-2403-1990
Каторкин Сергей Евгеньевич, д.м.н., профессор, заведующий кафедрой и клиникой госпитальной хирургии ФГБОУ ВО «Самарский государственный медицинский университет» Минздрава России, г. Самара, Российская Федерация.
http://orcid.org/0000-0001-7473-6692
Николаев Михаил Михайлович – врач колопроктолог клиники госпитальной хирургии, старший лаборант кафедры госпитальной хирургии ФГБОУ ВО «Самарский государственный медицинский университет» Минздрава России, г. Самара, Российская Федерация.
http://orcid.org/0000-0001-7438-5212

В.Л. ДЕHИСЕHКО 1, 2

СРАВHИТЕЛЬHАЯ ОЦЕHКА HЕПОСРЕДСТВЕHHЫХ РЕЗУЛЬТАТОВ ЛЕЧЕHИЯ И КАЧЕСТВА ЖИЗHИ ПАЦИЕHТОВ ПОСЛЕ РАЗЛИЧHЫХ ВАРИАHТОВ ХИРУРГИЧЕСКИХ ВМЕШАТЕЛЬСТВ ПРИ ХРОHИЧЕСКОМ ГЕМОРРОЕ

УО «Витебский государственный ордена Дружбы народов медицинский университет» 1,
УЗ «Витебский областной клинический специализированный центр» 2, г. Витебск,
Республика Беларусь

Цель. Провести сравнительную оценку непосредственных результатов лечения и качества жизни пациентов после различных вариантов хирургических вмешательств при хроническом геморрое.
Материал и методы. Объектом исследования явились результаты лечения 90 пациентов с хроническим геморроем 2-4 стадии. В первую группу включено 30 пациентов, которым проводили закрытую геморроидэктомию по стандартной методике. Во вторую группу вошли 30 пациентов, которым произведено лигирование геморроидальных узлов используя латексные кольца. Для лигирования использовали вакуумный лигатор фирмы «Karl Storz». В третью группу вошли 15 пациентов, которым произвели дезартеризацию геморроидальных узлов, подслизистый лифтинг и мукопексию. Операцию производили с ис-пользованием аппарата фирмы A.M.I. (Австрия) и специальной насадки RAR-2013 для выполнения мукопексии и лифтинга слизистой, а также модифицированного аноскопа Moricorn-RAR-2011. В 4 группу включено 15 пациентов, для лечения которых использовали аппарат LigaSure.
Результаты. Применение миниинвазивных методов лечения хронического геморроя 2-4 стадии (латексное лигирование геморроидальных узлов, лигирование геморроидальных артерий под контролем ультразвука, лечение хронического геморроя и использованием аппарата Ligasure) позволяют минимизировать назначение опиоидных препаратов в послеоперационном периоде, снизить сроки пребывания пациентов в стационаре, сократить временную нетрудоспособность на амбулаторном этапе лечения.
Заключение. Пребывание в стационаре в первой группе пациентов восстановлено в среднем за 10,3±0,4 дней (M±σ), во второй группе – 1,8±0,3 дней (M±σ), в третей – 1,3±0,3 дней (M±σ), в четвертой группе - 7,8±1,8 дней (M±σ).

Ключевые слова: Хронический геморрой, хирургическое лечение геморроя, лигирование геморроидальных артерий по HAL-RAR технологии, аппарат Ligasure в лечении хрон
с. 462-468 оригинального издания
Список литературы
  1. Воробьев ГИ. Основы колопроктологии. Ростов-на-Дону, РФ: Феникс; 2001. 416 с.
  2. Аррегви МЕ, Сакиера ДМ. Малоинвазивная колопроктология. Москва, РФ: Медицина; 1999. 280 с.
  3. Подпрятов СС, Подпрятов СЕ, Лебедев ОВ. Исполнение малоинвазивной геморроидэктомии с использованием с использованием электрокаогуляции. Acta Medica Leopoliensia. 2005;11(2):77-78.
  4. Масляк ВМ, Павловский МП, Лозинский ЮС, Варивода ИМ. Практическая колопроктология. Львов, Украина: Свит; 1990. 184 с.
  5. Ривкин ВЛ, Бронштейн АС, Фаин СН. Руководство по колопроктологии. Москва, РФ: Медпрактика; 2001. 300 с.
  6. Ривкин ВЛ, Капуллер ЛЛ, Дульцев ЮВ. Геморрой и другие заболевания анального канала и промежности. Москва, РФ; 1994. 128 с.
  7. Ривкин ВЛ, Кронштейн АС, Файн СН. Руководство по колопроктологии. Москва, РФ: Медпрактика; 2001. 300 с.
  8. Румянцев ВГ. Болезни толстой кишки и аноректальной области. Москва, РФ: Анахарсис; 2007. 224 с. .8.
  9. Kim SY, Joo J, Kim TW, Hong YS, Kim JE, Hwang IG, Kim BG, Lee KW, Kim JW, Oh HS, Ahn JB, Zang DY, Kim DY, Oh JH, Baek JY. A Randomized Phase 2 Trial of Consolidation Chemotherapy After Preoperative Chemoradiation Therapy Versus Chemoradiation Therapy Alone for Locally Advanced Rectal Cancer: KCSG CO 14-03. Int J Radiat Oncol Biol Phys. 2018 Jul 15;101(4):889-99. doi: 10.1016/j.ijrobp.2018.04.013
  10. Федоров ВД, Дульцев ЮВ. Проктология. Москва, РФ: Медицина, 1984. 384 с.
  11. Petrelli F, Trevisan F, Cabiddu M, Sgroi G, Bruschieri L, Rausa E, Ghidini M, Turati L. Total Neoadjuvant Therapy in Rectal Cancer: A Systematic Review and Meta-analysis of Treatment Outcomes. Ann Surg. 2020 Mar;271(3):440-48. doi: 10.1097/SLA.0000000000003471
  12. Ambrose NS, Morris D, Alexander-Williams J, Keighley MR. A randomized trial of photocoagulation or injection sclerotherapy for the treatment of first- and second-degree hemorrhoids. Dis Colon Rectum. 1985 Apr;28(4):238-40. doi: 10.1007/BF02554043
  13. Azin A, Khorasani M, Quereshy FA. Neoadjuvant chemoradiation in locally advanced rectal cancer: the surgeon’s perspective. J Clin Pathol. 2019 Feb;72(2):133-34. doi: 10.1136/jclinpath-2018-205595
  14. Brown SR. Haemorrhoids: an update on management. Ther Adv Chronic Dis. 2017 Oct;8(10):141-47. doi: 10.1177/2040622317713957
  15. Yang J, Cui PJ, Han HZ, Tong DN. Meta-analysis of stapled hemorrhoidopexy vs LigaSure hemorrhoidectomy. World J Gastroenterol. 2013 Aug 7;19(29):4799-807. doi: 10.3748/wjg.v19.i29.4799
  16. Schneider R, Jäger P, Ommer A. Long-Term Results After Stapled Hemorrhoidopexy: A 15-Year Follow-Up. World J Surg. 2019 Oct;43(10):2536-43. doi: 10.1007/s00268-019-05065-0
  17. Sturiale A, Fabiani B, Menconi C, Cafaro D, Fusco F, Bellio G, Schiano di Visconte M, Naldini G. Long-term results after stapled hemorrhoidopexy: a survey study with mean follow-up of 12 years. Tech Coloproctol. 2018 Sep;22(9):689-96. doi: 10.1007/s10151-018-1860-8
  18. Simillis C, Thoukididou SN, Slesser AA, Rasheed S, Tan E, Tekkis PP. Systematic review and network meta-analysis comparing clinical outcomes and effectiveness of surgical treatments for haemorrhoids. Br J Surg. 2015 Dec;102(13):1603-18. doi: 10.1002/bjs.9913
  19. De Nardi P, Capretti G, Corsaro A, Staudacher C. A prospective, randomized trial comparing the short- and long-term results of doppler-guided transanal hemorrhoid dearterialization with mucopexy versus excision hemorrhoidectomy for grade III hemorrhoids. Dis Colon Rectum. 2014 Mar;57(3):348-53. doi: 10.1097/DCR.0000000000000085
  20. Denoya PI, Fakhoury M, Chang K, Fakhoury J, Bergamaschi R. Dearterialization with mucopexy versus haemorrhoidectomy for grade III or IV haemorrhoids: short-term results of a double-blind randomized controlled trial. Colorectal Dis. 2013;15(10):1281-88. doi: 10.1111/codi.12303
Адрес для корреспонденции:
210001, Республика Беларусь,
г. Витебск, ул. Некрасова, 10,
УЗ «Витебский областной клинический
специализированный центр»,
тел.: +375 212 332247,
e-mail: vl_denisenko@mail.ru,
Денисенко Валерий Ларионович
Cведения об авторах:
Денисенко Валерий Ларионович, д.м.н., доцент кафедры общей хирургии УО «Витебский государственный ордена Дружбы народов медицинский университет», главный врач УЗ «Витебский областной клинический специализированный центр», г. Витебск, Республика Беларусь.
https://orcid.org/0000-0003-2394-340X

ТРАВМАТОЛОГИЯ И ОРТОПЕДИЯ

Ш.М. МУМИHОВ, Т.Р. МИHАЕВ, О.Н. НИЗОВ, Д.А. ХУДАЙHАЗАРОВ, А.Б. ХАКИМОВ, Ж.Х. ДАВЛАТОВ, Х.Р. СУВОHОВ

ЭКСТРЕHHЫЕ РЕКОHСТРУКТИВHЫЕ ВМЕШАТЕЛЬСТВА ПРИ ТРАВМАТИЧЕСКИХ ДЕФЕКТАХ СУХОЖИЛИЙ ВЕРХHЕЙ КОHЕЧHОСТИ

Республиканский научный центр экстренной медицинской помощи, Ташкент,
Республика Узбекистан

В статье проанализирован опыт лечения 15 больных, с открытыми сочетанными травмами верхних конечностей с обширными дефектами сухожилий сгибателей или разгибателей на значительном протяжении, реконструированных в экстренном порядке. У 11 (73,3%) больных произведена мышечно-сухожильная транспозиция, у 4 (26,7%) аутосухожильная пластика, с использованием широкой фасции бедра – у 3 (20%) и свободных фрагментов утильных сухожилий – у 1 (6,7%). Кожные дефекты в 10 (66,7%) случаях закрыты местными перемещенными лоскутами. Лучевой лоскут был использован в 4 (25,7%), а лоскут на ножке с передней стенки живота – в 1 (6,7%) случае. У 7 (46,7%) больных выполнялся интрамедуллярный остеосинтез. В ближайшем периоде отмечено 2 (13,3%) случая осложнений в виде краевых кожных некрозов перемещенных лоскутов, которые не потребовали дополнительных вмешательств. Основной вывод, экстренные реконструкции по сравнению с восстановлением сухожилий в плановом порядке, могут сократить период нетрудоспособности минимум на 3 месяца.

Ключевые слова: травматический дефект сухожилий, мышечно-сухожильная транспозиция, аутосухожильная пластика
с. 469-474 оригинального издания
Список литературы
  1. Мигулева ИЮ, Охотский ВП. К вопросу о сроках выполнения пластики сухожилий сгибателей пальцев кисти. Анналы Травматологии и Ортопедии. 1997;(3-4):50-53.
  2. Волкова АМ. Хирургия кисти. Екатеринбург, РФ: ИПП Уральский рабочий; 1991;1. 300 с.
  3. Бейдик ОВ, Щербаков МА, Зарецков АВ, Левченко КК, Киреев СИ. Применение сухожильной пластики в лечении больных с повреждениями сухожилий сгибателей 2–5 пальцев в «критической» зоне. Сарат Науч-Мед Журн. 2009;5(2):248-50. https://ssmj.ru/system/files/200902_248_250.pdf
  4. Белоусов АЕ. Пластическая, реконструктивная и эстетическая хирургия. С-Петербург, РФ: Гиппократ; 1998. 744 с.
  5. Охотский ВП, Мигулева ИЮ. Пластика сухожилий сгибателей пальцев: интра- или экстрасиновиальный трансплантат? Вестн Травматологии и Ортопедии им НН Приорова. 1998;5(2):7-11. https://journals.eco-vector.com/0869-8678/article/view/104477/78732
  6. Healy C, Mulhall KJ, Bouchier-Hayes DJ, Kneafsey B. Practice patterns in flexor tendon repair. Ir J Med Sci. 2007 Mar;176(1):41-44. doi: 10.1007/s11845-007-0009-y
  7. Beris AE, Darlis NA, Korompilias AV, Vekris MD, Mitsionis GI, Soucacos PN. Two-stage flexor tendon reconstruction in zone II using a silicone rod and a pedicled intrasynovial graft. J Hand Surg Am. 2003 Jul;28(4):652-60. doi: 10.1016/s0363-5023(03)00146-1
  8. Науменко ИЮ, Дараган РИ. Новые возможности ранней функциональной реабилитации при повреждениях сухожилий сгибателей пальцев кисти в «критической зоне». Вісник Ортопедії, Травматології та Протезування. 2000;(1):46-47.
  9. Chan TK, Ho CO, Lee WK, Fung YK, Law YF, Tsang CY. Functional outcome of the hand following flexor tendon repair at the ‘no man’s land’. J Orthop Surg (Hong Kong). 2006 Aug;14(2):178-83. doi: 10.1177/230949900601400214
  10. Freilich AM, Chhabra AB. Secondary flexor tendon reconstruction, a review. J Hand Surg Am. 2007 Nov;32(9):1436-42. doi: 10.1016/j.jhsa.2007.08.018
Адрес для корреспонденции:
100060, г. Ташкент, Республика Узбекистан,
Яккасарайский р-н, ул. Яккасарайская 2/5
e-mail mshm22@rambler.ru
Тел. +998911344524
Муминов Шухрат Манапович
Cведения об авторах:
Муминов Шухрат Манапович, д.м.н., професор, заведующий. отделением, Республиканский научный центр экстренной медицинской помощи, г. Ташкент, Республика Узбекистан.
https://orcid.org/0000-0001-5845-0432
Минаев Тимур Рафаэльевич, к.м.н., ординатор, Республиканский научный центр экстренной медицинской помощи, г. Ташкент, Республика Узбекистан.
https://orcid.org/0000-0002-7780-9305
Низов Олег Николаевич. к.м.н., ординатор, Республиканский научный центр экстренной медицинской помощи, г. Ташкент, Республика Узбекистан.
https://orcid.org/0000-0002-5159-4326
Худайназаров Дилшод Абдуллаевич, ординатор, Республиканский научный центр экстренной медицинской помощик, г. Ташкент, Республика Узбекистан.
https://orcid.org/0000-0001-5675-5830
Хакимов Анвар Баходирович,. ординатор, Республиканский научный центр экстренной медицинской помощи, г. Ташкент, Республика Узбекистан.
https://orcid.org/0000-0003-4876-474X
Давлатов Жахонгир Хамиджон угли, ординатор, Республиканский научный центр экстренной медицинской помощи, г. Ташкент, Республика Узбекистан.
Суванов Хусниддин Рустамович,. ординатор, Республиканский научный центр экстренной медицинской помощи, г. Ташкент, Республика Узбекистан.

ОБЗОРЫ

С.В. ЯКУБОВСКИЙ 1, Г.Г. КОHДРАТЕHКО 1, В.А. ЛЕМЕШ 2, В.Н. КИПЕHЬ 2

НОВООБРАЗОВАHИЯ ЩИТОВИДHОЙ ЖЕЛЕЗЫ: РОЛЬ МОЛЕКУЛЯРHЫХ МАРКЕРОВ В ДИФФЕРЕHЦИАЛЬHОЙ ДИАГHОСТИКЕ И ВЫБОРЕ ЛЕЧЕБHОЙ ТАКТИКИ

УО «Белорусский государственный медицинский университет» 1,
ГНУ «Институт генетики и цитологии Национальной академии наук Беларуси» 2, г. Минск,
Республика Беларусь

Узловой зоб является широко распространенной патологией щитовидной железы. Установление морфологической природы этих узловых образований основывается на комплексном обследовании, включающем тонкоигольную аспирационную биопсию, являющуюся окончательным методом верификации диагноза на дооперационном этапе. Однако до 20-30% заключений тонкоигольной аспирационной биопсии может носить неопределенный характер, что затрудняет выбор адекватной лечебной тактики. Исследования, проведенные в последние десятилетия, позволили приблизиться к пониманию генетических механизмов возникновения и развития рака щитовидной железы. Эти данные обусловили попытки использовать молекулярно-генетическое тестирование для дифференциальной диагностики узловых образований щитовидной железы.
В статье представлен обзор наиболее распространенных молекулярно-генетических панелей, описаны факторы, влияющие на их диагностическую эффективность, обсуждены показания и условия применения молекулярного тестирования в клинической практике.

Ключевые слова: щитовидная железа, узлы щитовидной железы, рак щитовидной железы, молекулярно-генетические исследования, тонкоигольная аспирационная био
с. 475-486 оригинального издания
Список литературы
  1. Guth S, Theune U, Aberle J, Galach A, Bamberger CM. Very high prevalence of thyroid nodules detected by high frequency (13 MHz) ultrasound examination. Eur J Clin Invest. 2009 Aug;39(8):699-706. doi: 10.1111/j.1365-2362.2009.02162.x
  2. Hegedüs L. Clinical practice. The thyroid nodule. N Engl J Med. 2004 Oct 21;351(17):1764-71. doi: 10.1056/NEJMcp031436
  3. Baloch ZW, LiVolsi VA. Current role and value of fine-needle aspiration in nodular goitre. Best Pract Res Clin Endocrinol Metab. 2014 Aug;28(4):531-44. doi: 10.1016/j.beem.2014.01.010
  4. Лущик МЛ, Валуевич ВВ, Григорович АС, Корытько СС, Караник ВС, Дрозд ВМ, Демидчик ЮЕ, Данилова ЛИ. Метод дифференциальной диагностики новообразований щитовидной железы: инструкция по применению. Минск, РБ; 2015. 15 с.
  5. Baloch ZW, LiVolsi VA, Asa SL, Rosai J, Merino MJ, Randolph G, Vielh P, DeMay RM, Sidawy MK, Frable WJ. Diagnostic terminology and morphologic criteria for cytologic diagnosis of thyroid lesions: a synopsis of the National Cancer Institute Thyroid Fine-Needle Aspiration State of the Science Conference. Diagn Cytopathol. 2008;36:425-37 doi: 10.1002/dc.20830
  6. Cibas ES, Ali SZ. The 2017 Bethesda System for Reporting Thyroid Cytopathology. Thyroid. 2017 Nov;27(11):1341-46. doi: 10.1089/thy.2017.0500
  7. Bongiovanni M, Spitale A, Faquin WC, Mazzucchelli L, Baloch ZW. The Bethesda System for Reporting Thyroid Cytopathology: a meta-analysis. Acta Cytol. 2012;56(4):333-39. doi: 10.1159/000339959
  8. Ferris RL, Baloch Z, Bernet V, Chen A, Fahey TJ 3rd, Ganly I, Hodak SP, Kebebew E, Patel KN, Shaha A, Steward DL, Tufano RP, Wiseman SM, Carty SE; American Thyroid Association Surgical Affairs Committee. American Thyroid Association Statement on Surgical Application of Molecular Profiling for Thyroid Nodules: Current Impact on Perioperative Decision Making. Thyroid. 2015 Jul;25(7):760-68. doi: 10.1089/thy.2014.0502
  9. Jegerlehner S, Bulliard JL, Aujesky D, Rodondi N, Germann S, Konzelmann I, Chiolero A; NICER Working Group. Overdiagnosis and overtreatment of thyroid cancer: A population-based temporal trend study. PLoS One. 2017 Jun 14;12(6):e0179387. doi: 10.1371/journal.pone.0179387. eCollection 2017.
  10. Miccoli P, Biricotti M, Matteucci V, Ambrosini CE, Wu J, Materazzi G. Minimally invasive video-assisted thyroidectomy: reflections after more than 2400 cases performed. Surg Endosc. 2016 Jun;30(6):2489-95. doi: 10.1007/s00464-015-4503-4
  11. Ha SM, Sung JY, Baek JH, Na DG, Kim JH, Yoo H, Lee D, Whan Choi D. Radiofrequency ablation of small follicular neoplasms: initial clinical outcomes. Int J Hyperthermia. 2017 Dec;33(8):931-37. doi: 10.1080/02656736.2017.1331268
  12. Cancer Genome Atlas Research Network. Integrated genomic characterization of papillary thyroid carcinoma. Cell. 2014 Oct 23;159(3):676-90. doi: 10.1016/j.cell.2014.09.050
  13. Ji JH, Oh YL, Hong M, Yun JW, Lee HW, Kim D, Ji Y, Kim DH, Park WY, Shin HT, Kim KM, Ahn MJ, Park K, Sun JM. Identification of Driving ALK Fusion Genes and Genomic Landscape of Medullary Thyroid Cancer. PLoS Genet. 2015 Aug 21;11(8):e1005467. doi: 10.1371/journal.pgen.1005467. eCollection 2015 Aug.
  14. Kunstman JW, Juhlin CC, Goh G, Brown TC, Stenman A, Healy JM, Rubinstein JC, Choi M, Kiss N, Nelson-Williams C, Mane S, Rimm DL, Prasad ML, Höög A, Zedenius J, Larsson C, Korah R, Lifton RP, Carling T. Characterization of the mutational landscape of anaplastic thyroid cancer via whole-exome sequencing. Hum Mol Genet. 2015 Apr 15;24(8):2318-29. doi: 10.1093/hmg/ddu749
  15. Landa I, Ibrahimpasic T, Boucai L, Sinha R, Knauf JA, Shah RH, Dogan S, Ricarte-Filho JC, Krishnamoorthy GP, Xu B, Schultz N, Berger MF, Sander C, Taylor BS, Ghossein R, Ganly I, Fagin JA. Genomic and transcriptomic hallmarks of poorly differentiated and anaplastic thyroid cancers. J Clin Invest. 2016 Mar 1;126(3):1052-66. doi: 10.1172/JCI85271
  16. Durante C, Grani G, Lamartina L, Filetti S, Mandel SJ, Cooper DS. The Diagnosis and Management of Thyroid Nodules: A Review. JAMA. 2018 Mar 6;319(9):914-924. doi: 10.1001/jama.2018.0898
  17. Nikiforov YE, Ohori NP, Hodak SP, Carty SE, LeBeau SO, Ferris RL, Yip L, Seethala RR, Tublin ME, Stang MT, Coyne C, Johnson JT, Stewart AF, Nikiforova MN. Impact of mutational testing on the diagnosis and management of patients with cytologically indeterminate thyroid nodules: a prospective analysis of 1056 FNA samples. J Clin Endocrinol Metab. 2011 Nov;96(11):3390-97. doi: 10.1210/jc.2011-1469
  18. Steward DL, Kloos RT. Clinical diagnostic gene expression thyroid testing. Otolaryngol Clin North Am. 2014 Aug;47(4):573-93. doi: 10.1016/j.otc.2014.04.009
  19. Friedman RC, Farh KK, Burge CB, Bartel DP. Most mammalian mRNAs are conserved targets of microRNAs. Genome Res. 2009 Jan;19(1):92-105. doi: 10.1101/gr.082701.108
  20. Iorio MV, Croce CM. MicroRNA dysregulation in cancer: diagnostics, monitoring and therapeutics. A comprehensive review. EMBO Mol Med. 2012 Mar;4(3):143-59. doi: 10.1002/emmm.201100209
  21. Boufraqech M, Klubo-Gwiezdzinska J, Kebebew E. MicroRNAs in the thyroid. Best Pract Res Clin Endocrinol Metab. 2016 Oct;30(5):603-19. doi: 10.1016/j.beem.2016.10.001
  22. Nikiforova MN, Tseng GC, Steward D, Diorio D, Nikiforov YE. MicroRNA expression profiling of thyroid tumors: biological significance and diagnostic utility. J Clin Endocrinol Metab. 2008 May;93(5):1600-8. doi: 10.1210/jc.2007-2696
  23. Mancikova V, Castelblanco E, Pineiro-Yanez E, Perales-Paton J, de Cubas AA, Inglada-Perez L, Matias-Guiu X, Capel I, Bella M, Lerma E, Riesco-Eizaguirre G, Santisteban P, Maravall F, Mauricio D, Al-Shahrour F, Robledo M. MicroRNA deep-sequencing reveals master regulators of follicular and papillary thyroid tumors. Mod Pathol. 2015 Jun;28(6):748-57. doi: 10.1038/modpathol.2015.44
  24. Chu YH, Lloyd RV. Medullary Thyroid Carcinoma: Recent Advances Including MicroRNA Expression. Endocr Pathol. 2016 Dec;27(4):312-24. doi: 10.1007/s12022-016-9449-0
  25. Fuziwara CS, Kimura ET. MicroRNA Deregulation in Anaplastic Thyroid Cancer Biology. Int J Endocrinol. 2014;2014:743450. doi: 10.1155/2014/743450
  26. Rosignolo F, Memeo L, Monzani F, Colarossi C, Pecce V, Verrienti A, Durante C, Grani G, Lamartina L, Forte S, Martinetti D, Giuffrida D, Russo D, Basolo F, Filetti S, Sponziello M. MicroRNA-based molecular classification of papillary thyroid carcinoma. Int J Oncol. 2017 May;50(5):1767-77. doi: 10.3892/ijo.2017.3960
  27. Lara OD, Wang Y, Asare A, Xu T, Chiu HS, Liu Y, Hu W, Sumazin P, Uppal S, Zhang L, Rauh-Hain JA, Sood AK. Pan-cancer clinical and molecular analysis of racial disparities. Cancer. 2020 Feb 15;126(4):800-807. doi: 10.1002/cncr.32598
  28. Kim J, Park WJ, Jeong KJ, Kang SH, Kwon SY, Kim S, Park JW. Racial Differences in Expression Levels of miRNA Machinery-Related Genes, Dicer, Drosha, DGCR8, and AGO2, in Asian Korean Papillary Thyroid Carcinoma and Comparative Validation Using the Cancer Genome Atlas.Int J Genomics. 2017;2017:5789769. doi: 10.1155/2017/5789769
  29. Xing M. BRAF mutation in thyroid cancer. Endocr Relat Cancer. 2005 Jun;12(2):245-62. doi: 10.1677/erc.1.0978
  30. Nikiforov YE. Role of molecular markers in thyroid nodule management: then and now. Endocr Pract. 2017 Aug;23(8):979-88. doi: 10.4158/EP171805.RA
  31. Nishino M, Krane JF. Role of Ancillary Techniques in Thyroid Cytology Specimens. Acta Cytol. 2020;64(1-2):40-51. doi: 10.1159/000496502
  32. Labourier E, Shifrin A, Busseniers AE, Lupo MA, Manganelli ML, Andruss B, Wylie D, Beaudenon-Huibregtse S. Molecular Testing for miRNA, mRNA, and DNA on Fine-Needle Aspiration Improves the Preoperative Diagnosis of Thyroid Nodules With Indeterminate Cytology. J Clin Endocrinol Metab. 2015 Jul;100(7):2743-50. doi: 10.1210/jc.2015-1158
  33. Lupo MA, Walts AE, Sistrunk JW, Giordano TJ, Sadow PM, Massoll N, Campbell R, Jackson SA, Toney N, Narick CM, Kumar G, Mireskandari A, Finkelstein SD, Bose S. Multiplatform molecular test performance in indeterminate thyroid nodules. Diagn Cytopathol. 2020 Dec;48(12):1254-64. doi: 10.1002/dc.24564
  34. Steward DL, Carty SE, Sippel RS, Yang SP, Sosa JA, Sipos JA, Figge JJ, Mandel S, Haugen BR, Burman KD, Baloch ZW, Lloyd RV, Seethala RR, Gooding WE, Chiosea SI, Gomes-Lima C, Ferris RL, Folek JM, Khawaja RA, Kundra P, Loh KS, Marshall CB, Mayson S, McCoy KL, Nga ME, Ngiam KY, Nikiforova MN, Poehls JL, Ringel MD, Yang H, Yip L, Nikiforov YE. Performance of a Multigene Genomic Classifier in Thyroid Nodules With Indeterminate Cytology: A Prospective Blinded Multicenter Study. JAMA Oncol. 2019 Feb 1;5(2):204-212. doi: 10.1001/jamaoncol.2018.4616
  35. Marti JL, Avadhani V, Donatelli LA, Niyogi S, Wang B, Wong RJ, Shaha AR, Ghossein RA, Lin O, Morris LG, Ho AS. Wide Inter-institutional Variation in Performance of a Molecular Classifier for Indeterminate Thyroid Nodules. Ann Surg Oncol. 2015 Nov;22(12):3996-4001. doi: 10.1245/s10434-015-4486-3
  36. Patel KN, Angell TE, Babiarz J, Barth NM, Blevins T, Duh QY, Ghossein RA, Harrell RM, Huang J, Kennedy GC, Kim SY, Kloos RT, LiVolsi VA, Randolph GW, Sadow PM, Shanik MH, Sosa JA, Traweek ST, Walsh PS, Whitney D, Yeh MW, Ladenson PW. Performance of a Genomic Sequencing Classifier for the Preoperative Diagnosis of Cytologically Indeterminate Thyroid Nodules. JAMA Surg. 2018 Sep 1;153(9):817-824. doi: 10.1001/jamasurg.2018.1153
  37. Duh QY, Busaidy NL, Rahilly-Tierney C, Gharib H, Randolph G. A Systematic Review of the Methods of Diagnostic Accuracy Studies of the Afirma Gene Expression Classifier. Thyroid. 2017 Oct;27(10):1215-1222. doi: 10.1089/thy.2016.0656.
  38. Partyka KL, Randolph ML, Lawrence KA, Cramer H, Wu HH. Utilization of direct smears of thyroid fine-needle aspirates for ancillary molecular testing: A comparison of two proprietary testing platforms. Diagn Cytopathol. 2018 Apr;46(4):320-325. doi: 10.1002/dc.23902
  39. Livhits MJ, Kuo EJ, Leung AM, Rao J, Levin M, Douek ML, Beckett KR, Zanocco KA, Cheung DS, Gofnung YA, Smooke-Praw S, Yeh MW. Gene Expression Classifier vs Targeted Next-Generation Sequencing in the Management of Indeterminate Thyroid Nodules. J Clin Endocrinol Metab. 2018 Jun 1;103(6):2261-68. doi: 10.1210/jc.2017-02754
  40. Al-Qurayshi Z, Deniwar A, Thethi T, Mallik T, Srivastav S, Murad F, Bhatia P, Moroz K, Sholl AB, Kandil E. Association of Malignancy Prevalence With Test Properties and Performance of the Gene Expression Classifier in Indeterminate Thyroid Nodules. JAMA Otolaryngol Head Neck Surg. 2017 Apr 1;143(4):403-408. doi: 10.1001/jamaoto.2016.3526
  41. Valderrabano P, Hallanger-Johnson JE, Thapa R, Wang X, McIver B. Comparison of Postmarketing Findings vs the Initial Clinical Validation Findings of a Thyroid Nodule Gene Expression Classifier: A Systematic Review and Meta-analysis. JAMA Otolaryngol Head Neck Surg. 2019 Sep 1;145(9):783-792. doi: 10.1001/jamaoto.2019.1449
  42. Marcadis AR, Valderrabano P, Ho AS, Tepe J, Swartzwelder CE, Byrd S, Sacks WL, Untch BR, Shaha AR, Xu B, Lin O, Ghossein RA, Wong RJ, Marti JL, Morris LGT. Interinstitutional variation in predictive value of the ThyroSeq v2 genomic classifier for cytologically indeterminate thyroid nodules. Surgery. 2019 Jan;165(1):17-24. doi: 10.1016/j.surg.2018.04.062
  43. Jug R, Foo WC, Jones C, Ahmadi S, Jiang XS. High-risk and intermediate-high-risk results from the ThyroSeq v2 and v3 thyroid genomic classifier are associated with neoplasia: Independent performance assessment at an academic institution. Cancer Cytopathol. 2020 Aug;128(8):563-69. doi: 10.1002/cncy.22283
  44. San Martin VT, Lawrence L, Bena J, Madhun NZ, Berber E, Elsheikh TM, Nasr CE. Real-world Comparison of Afirma GEC and GSC for the Assessment of Cytologically Indeterminate Thyroid Nodules. J Clin Endocrinol Metab. 2020 Mar 1;105(3):dgz099. doi: 10.1210/clinem/dgz099
  45. Корнеенков АА, Рязанцев СВ, Вяземская ЕЭ. Вычисление и интерпретация показателей информативности диагностических медицинских технологий. Mед Совет. 2019;(20):45-51. doi: 10.21518/2079-701X-2019-20-45-51
  46. Haugen BR, Alexander EK, Bible KC, Doherty GM, Mandel SJ, Nikiforov YE, Pacini F, Randolph GW, Sawka AM, Schlumberger M, Schuff KG, Sherman SI, Sosa JA, Steward DL, Tuttle RM, Wartofsky L. 2015 American Thyroid Association Management Guidelines for Adult Patients with Thyroid Nodules and Differentiated Thyroid Cancer: The American Thyroid Association Guidelines Task Force on Thyroid Nodules and Differentiated Thyroid Cancer. Thyroid. 2016 Jan;26(1):1-133. doi: 10.1089/thy.2015.0020
  47. Paschke R, Cantara S, Crescenzi A, Jarzab B, Musholt TJ, Simoes MS. European Thyroid Association Guidelines regarding Thyroid Nodule Molecular Fine-Needle Aspiration Cytology Diagnostics. Eur Thyroid J. 2017 Jul;6(3):115-29. doi: 10.1159/000468519
  48. Ohori NP, Schoedel KE. Variability in the atypia of undetermined significance/follicular lesion of undetermined significance diagnosis in the Bethesda System for Reporting Thyroid Cytopathology: sources and recommendations. Acta Cytol. 2011;55(6):492-98. doi: 10.1159/000334218
  49. Cibas ES, Baloch ZW, Fellegara G, LiVolsi VA, Raab SS, Rosai J, Diggans J, Friedman L, Kennedy GC, Kloos RT, Lanman RB, Mandel SJ, Sindy N, Steward DL, Zeiger MA, Haugen BR, Alexander EK. A prospective assessment defining the limitations of thyroid nodule pathologic evaluation. Ann Intern Med. 2013 Sep 3;159(5):325-32. doi: 10.7326/0003-4819-159-5-201309030-00006
  50. Parajuli S, Jug R, Ahmadi S, Jiang XS. Hurthle cell predominance impacts results of Afirma gene expression classifier and ThyroSeq molecular panel performance in indeterminate thyroid nodules. Diagn Cytopathol. 2019 Nov;47(11):1177-83. doi: 10.1002/dc.24290
  51. Hernandez-Prera JC, Valderrabano P, Creed JH, de la Iglesia JV, Slebos RJC, Centeno BA, Tarasova V, Hallanger-Johnson J, Veloski C, Otto KJ, Wenig BM, Yoder SJ, Lam CA, Park DS, Anderson AR, Raghunand N, Berglund A, Caudell J, Gerke TA, Chung CH. Molecular Determinants of Thyroid Nodules with Indeterminate Cytology and RAS Mutations. Thyroid. 2021 Jan;31(1):36-49. doi: 10.1089/thy.2019.0650
  52. Najafian A, Noureldine S, Azar F, Atallah C, Trinh G, Schneider EB, Tufano RP, Zeiger MA. RAS Mutations, and RET/PTC and PAX8/PPAR-gamma Chromosomal Rearrangements Are Also Prevalent in Benign Thyroid Lesions: Implications Thereof and A Systematic Review. Thyroid. 2017 Jan;27(1):39-48. doi: 10.1089/thy.2016.0348
  53. Zanocco KA, Wang MM, Yeh MW, Livhits MJ. Selective use of Molecular Testing Based on Sonographic Features of Cytologically Indeterminate Thyroid Nodules: A Decision Analysis. World J Surg. 2020 Feb;44(2):393-401. doi: 10.1007/s00268-019-05177-7
  54. Najafzadeh M, Marra CA, Lynd LD, Wiseman SM. Cost-effectiveness of using a molecular diagnostic test to improve preoperative diagnosis of thyroid cancer. Value Health. 2012 Dec;15(8):1005-13. doi: 10.1016/j.jval.2012.06.017
Адрес для корреспонденции:
220116, Республика Беларусь,
г. Минск, пр. Дзержинского, 83,
Белорусский государственный
медицинский университет,
кафедра хирургии и трансплантологии,
тел. офис: +375 017 3400252,
e-mail: yakub-2003@yandex.ru,
Якубовский Сергей Васильевич
Cведения об авторах:
Якубовский Сергей Владимирович, к.м.н., доцент 1-й кафедры хирургических болезней УО «Белорусский государственный медицинский университет», г. Минск, Республика Беларусь.
https://orcid.org/0000-0003-3759-7050
ККондратенко Геннадий Георгиевич, д.м.н., профессор, профессор кафедры хирургии и трансплантологии УО «Белорусский государственный медицинский университет», г. Минск, Республика Беларусь.
https://orcid.org/0000-0001-5295-1068
Лемеш Валентина Александровна к.б.н., доцент, руководитель лаборатории генетической и клеточной инженерии ГНУ «Институт генетики и цитологии Национальной академии наук Беларуси»г. Минск, Республика Беларусь.
https://orcid.org/0000-0003-1348-8642
Кипень Вячеслав Николаевич к.б.н., ведущий научный сотрудник лаборатории генетической и клеточной инженерии ГНУ «Институт генетики и цитологии Национальной академии наук Беларуси», г. Минск, Республика Беларусь.
https://orcid.org/000-0002-7822-0746

СЛУЧАИ ИЗ ПРАКТИКИ

А.Н. БЕЛЯЕВ 1, С.П. ГРАЧЕВ 2

СЛУЧАЙ АОРТО-ЭЗОФАГАЛЬHОЙ ФИСТУЛЫ, МАСКИРОВАHHОЙ СИHДРОМОМ МАЛЛОРИ-ВЕЙССА

Национальный исследовательский Мордовский государственный университет им. Н. П. Огарева 1,
Мордовская республиканская центральная клиническая больница 2, г. Саранск,
Российская Федерация

В публикации описывается клиническое наблюдение аорто-эзофагальной фистулы у пациентки, 55 лет, которая неоднократно оперирована по поводу эпизодов массивных желудочных кровотечений с интраоперационной находкой разрывов слизистой кардиального отдела желудка и массивного тромба в просвете. Последний эпизод массивного кровотечения осложнился тяжелым геморрагическим шоком, интраоперационной остановкой сердца и летальным исходом. На аутопсии диагностирована аорто-эзофагальная фистула вследствие перфорации пищевода и аорты рыбьей костью. В данном случае типичный анамнез с интраоперационной диагностикой разрывов слизистой кардиального отдела пищевода не вызывали сомнения в диагнозе синдрома Маллори-Вейсса. Однако несоответствие между тяжестью кровотечения и обнаруженными небольшими разрывами слизистой пищевода и желудка, эпизоды повторных массивных кровотечений, подтекание алой крови из кардиального отдела желудка и пищевода указывали на возможный другой источник кровотечения. Рыбья кость и перфорация пищевода не были обнаружены при эзофагоскопии, скорее всего, из-за массивных сгустков крови. Перфорация пищевода инородным телом с образованием аорто-эзофагальной фистулы встречается крайне редко и сопровождается высокой летальностью из-за развития профузных кровотечений. Лечение аорто-пищеводных фистул является сложным и связано с высоким уровнем смертности. Нет четких рекомендаций относительно оперативного лечения с учетом особенностей пациента и клинической ситуации. В большинстве случаев лечебные рекомендации включают междисциплинарную команду кардиоторакальных и общих хирургов по восстановлению повреждения пищевода и аорты.

Ключевые слова: аорто-эзофагальная фистула, инородное тело, кровотечение
с. 487-491 оригинального издания
Список литературы
  1. Göbölös L, Miskolczi S, Pousios D, Tsang GM, Livesey SA, Barlow CW, Kaarne M, Shambrook J, Lipnevicius A, Ohri SK. Management options for aorto-oesophageal fistula: case histories and review of the literature. Perfusion. 2013 Jul;28(4):286-90. doi: 10.1177/0267659113476329
  2. Xi EP, Zhu J, Zhu SB, Liu Y, Yin GL, Zhang Y, Zhang XM, Dong YQ. Surgical treatment of aortoesophageal fistula induced by a foreign body in the esophagus: 40 years of experience at a single hospital. Surg Endosc. 2013 Sep;27(9):3412-6. doi: 10.1007/s00464-013-2926-3
  3. Hanif MZ, Li D, Jabeen S, Fan Q. Endovascular repair in penetrating aortoesophageal foreign body injury. Ann Thorac Surg. 2013 Oct;96(4):1457-59. doi: 10.1016/j.athoracsur.2012.12.046
  4. Wu MH, Lai WW. Aortoesophageal fistula induced by foreign bodies. Ann Thorac Surg. 1992 Jul;54(1):155-56. doi: 10.1016/0003-4975(92)91168-9
  5. Evangelista A. Historia natural y ttatamiento del sindrome aortico agudo. Rev Esp Cardiol. 2004;57(7):667-79. doi: 10.1016/S1885-5857(06)60291-0
  6. Lemos DW, Raffetto JD, Moore TC, Menzoian JO. Primary aortoduodenal fistula: a case report and review of the literature. J Vasc Surg. 2003 Mar;37(3):686-89. doi: 10.1067/mva.2003.101
  7. Xi EP, Zhu J, Zhu SB, Liu Y, Yin GL, Zhang Y, Zhang XM, Dong YQ. Surgical treatment of aortoesophageal fistula induced by a foreign body in the esophagus: 40 years of experience at a single hospital. Surg Endosc. 2013 Sep;27(9):3412-6. doi: 10.1007/s00464-013-2926-3
  8. Ochoa Chaar CI, Zafar MA, Velasquez C, Saeyeldin A, Elefteriades JA. Complex two-stage open surgical repair of an aortoesophageal fistula after thoracic endovascular aortic repair. J Vasc Surg Cases Innov Tech. 2019 Jun 25;5(3):261-63. doi: 10.1016/j.jvscit.2019.02.011. eCollection
  9. Small AB, Ellis PR. Laceration of the distal esophagus due to vomiting (the Mallory-Weiss syndrome): report of a case with massive hemorrhage and recovery after repair of the laceration. N Engl J Med. 1958 Feb 6;258(6):285-86. doi: 10.1056/NEJM195802062580607
  10. Kieffer E, Chiche L, Gomes D. Aortoesophageal fistula: value of in situ aortic allograft replacement. Ann Surg. 2003 Aug;238(2):283-90. doi: 10.1097/01.sla.0000080828.37493.e0
  11. Akashi H, Kawamoto S, Saiki Y, Sakamoto T, Sawa Y, Tsukube T, Kubota S, Matsui Y, Karube N, Imoto K, Yamanaka K, Kondo S, Tobinaga S, Tanaka H, Okita Y, Fujita H. Therapeutic strategy for treating aortoesophageal fistulas. Gen Thorac Cardiovasc Surg. 2014 Oct;62(10):573-80. doi: 10.1007/s11748-014-0452-4
  12. Sugiyama K, Iwahashi T, Koizumi N, Nishibe T, Fujiyoshi T, Ogino H. Surgical treatment for secondary aortoesophageal fistula. J Cardiothorac Surg. 2020 Sep 11;15(1):251. doi: 10.1186/s13019-020-01293-x
Адрес для корреспонденции:
430005, Российская Федерация,
г. Саранск, ул. Большевистская, 68,
ФГБОУ ВО «МГУ им. Н.П. Огарёва»,
кафедра общей хирургии им. проф. Н.И. Атясова,
тел.: +79876933217,
e-mail: belyaevan@mail.ru,
Беляев Александр Назарович

Address for correspondence

430013, Republic of Mordovia,
Saransk, Pobeda st., 14/5, 1,
Department of General Surgery
named after Professor N.I. Atyasov,
tel.: +79876933217,
e-mail: belyaevan@mail.ru,
Belyaev Alexander N.
Cведения об авторах:
Беляев Александр Назарович, д.м.н., профессор, заведующий кафедрой общей хирургии имени профессора Н.И. Атясова, Национальный исследовательский Мордовский государственный университет им. Н.П. Огарева, г. Саранск, Российская Федерация.
https://orcid.org/0000-0002-0698-3007
Грачев Сергей Петрович, к.м.н., заведующий отделением чистой хирургии, Мордовская республиканская центральная клиническая больница, г. Саранск, Российская Федерация.
https://orcid.org/0000-0002-2397-5885
Контакты | ©Витебский государственный медицинский университет, 2007-2023