Новости
хирургии

 Журнал включен
в систему цитирования Scopus
journal cover
android icon Приложение Android

2019 г. №4 Том 27

НАУЧHЫЕ ПУБЛИКАЦИИ
ЭКСПЕРИМЕHТАЛЬHАЯ ХИРУРГИЯ

Д.Б. АУЖАHОВ 1, М.Ж. АЙМАГАМБЕТОВ 1, Ж.А. ЖАГИПАРОВА 1, Y. NOSO 2

ВЛИЯHИЕ АЗАТИОПРИHА HА ФОРМИРОВАHИЕ СПАЕЧHОГО ПРОЦЕССА БРЮШHОЙ ПОЛОСТИ В ЭКСПЕРИМЕHТЕ

Государственный медицинский университет г. Семей,
Республика Казахстан 1,
Медицинский факультет университета Шиманэ, г. Идзумо,
Япония 2

Цель. Изучение влияния антиметаболита азатиоприна на формирование послеоперационных спаек в эксперименте на модели крыс.
Материал и методы. Основной эксперимент проводили на 30 (4-5-месячных) крысах самцах линии Вистар. Для инициации спаечного процесса была выполнена операция Блура. Крыс распределили на 2 группы (по 15 в каждой). Основная группа (ОГ) – животные получали азатиоприн в дозировке 1 мг/100 г веса перорально 1 раз в день в первые 3 суток (начиная со дня операции). Контрольная группа (КГ) – никаких препаратов не получали. На 7-е сутки все крысы были выведены из эксперимента. Оценка спаечного процесса проводилась по критериям: макроскопическая оценка (количественная оценка спаек – шкала Moreno, качественная оценка – шкала Binda), гистологическое исследование. Также исследовалось влияние изучаемого метода на некоторые показатели иммунного статуса (лейкоциты, лимфоциты, CD, CD4, CD8, ФЧ, ФИ).
Результаты. В КГ спаечный процесс отмечался в 100% (15 крыс), в ОГ – в 80% (12 крыс) случаев. При оценке спаечного процесса по шкалам Moreno и Binda в КГ количество спаек было больше – 38 против 13 (р<0,001). Также в КГ превалировала толщина спаек и их прочность (р<0,001). Объем соединительной ткани, удельный вес коллагеновых волокон, степень сосудистой пролиферации, фиброза в спайках ОГ менее выражены (р=0,029). Показатели иммунного статуса в ОГ после проведенной терапии на 7-е сутки снижены незначительно.
Заключение. Иммуносупрессия препаратом азатиоприн достоверно снижает тяжесть спаечного процесса брюшной полости. Применение препарата в терапевтической дозе в течение 3 дней не приводит к существенному угнетению важных показателей иммунитета (незначительное снижение лейкоцитов и лимфоцитов на 0,3 и 0,9, умеренное уменьшение Т-лимфоцитов не более чем на 2,0, снижение фагоцитарной активности на 5,8).

Ключевые слова: послеоперационные спайки, профилактика, эксперимент на животных, иммуносупрессия, крыса, азатиоприн
с. 369-378 оригинального издания
Список литературы
  1. Назаренко АА, Акимов ВП, Малышкин ПО. Эпидемиология, патогенез и профилактика послеоперационного спаечного процесса в брюшной полости. Вестн Хирургии им ИИ Грекова. 2016;175(5):114-18.
  2. Ouaïssi M, Gaujoux S, Veyrie N, Denève E, Brigand C, Castel B, Duron JJ, Rault A, Slim K, Nocca D. Post-operative adhesions after digestive surgery: their incidence and prevention: review of the literature. J Visc Surg. 2012 Apr;149(2):e104-14. doi: 10.1016/j.jviscsurg.2011.11.006
  3. Филенко БП, Земляной ВП, Борсак ИИ, Иванова АС. Спаечная болезнь: Профилактика и лечение: моногр. С-Петербург, РФ; 2013. 164 с. http://baltzdrav.ru/images/files/borsak_monography.pdf
  4. Stanciu D, Menzies D. The magnitude of adhesion-related problems. Colorectal Dis. 2007 Oct;9(Suppl 2):35-38. doi: 10.1111/j.1463-1318.2007.01346.x
  5. Rizzo A, Spedicato M, Mutinati M, Minoia G, Angioni S, Jirillo F, Pantaleo M, Sciorsci RL. Peritoneal adhesions in human and veterinary medicine: from pathogenesis to therapy. A review. Immunopharmacol Immunotoxicol. 2010 Sep;32(3):481-94. doi: 10.3109/08923970903524367
  6. Mais V, Cirronis MG, Peiretti M, Ferrucci G, Cossu E, Melis GB. Efficacy of auto-crosslinkedhyaluronan gel for adhesion prevention in laparoscopy and hysteroscopy: a systematic review and meta-analysis of randomized controlled trials. Eur J Obstet Gynecol Reprod Biol. 2012 Jan;160(1):1-5. doi: 10.1016/j.ejogrb.2011.08.002
  7. Kumar S, Wong PF, Leaper DJ. Intra-peritoneal prophylactic agents for preventing adhesions and adhesive intestinal obstruction after non-gynaecological abdominal surgery. Cochrane Database Syst Rev. 2009 Jan 21;(1):CD005080. doi: 10.1002/14651858.CD005080.pub2
  8. Binda MM, Molinas CR, Bastidas A, Koninckx PR. Effect of reactive oxygen species scavengers, antiinflammatory drugs, and calcium-channel blockers on carbon dioxide pneumoperitoneum-enhanced adhesions in a laparoscopic mouse model. Surg Endosc. 2007 Oct;21(10):1826-34. https://www.springermedizin.de/effect-of-reactive-oxygen-species-scavengers-antiinflammatory-dr/8531612
  9. diZerega GS, Tulandi T. Prevention of intra-abdominal adhesions in gynaecological surgery. Reprod Biomed Online. 2008 Sep;17(3):303-306. doi: 10.1016/S1472-6483(10)60211-8
  10. Arung W, Drion P, Cheramy JP, Honoré P, Meurisse M, Defraigne JO, Detry O. Intraperitoneal adhesions after open or laparoscopic abdominal procedure: an experimental study in the rat. J Laparoendosc Adv Surg Tech A. 2012 Sep;22(7):651-57. doi: 10.1089/lap.2012.0102
  11. Андреева ИВ, Виноградов АА. Атлас нормальной и ультразвуковой анатомии живота крысы [Электронный ресурс]. Москва, РФ: ГЭОТАР-Медиа; 2015. http://www.studentlibrary.ru/book/06-COS-2400.html
  12. Hooker GD, Taylor BM, Driman DK. Prevention of adhesion formation with use of sodium hyaluronate-based bioresorbable membrane in a rat model of ventral hernia repair with polypropylene mesh–a randomized, controlled study. Surgery. 1999 Feb;125(2):211-16. doi: 10.1016/s0039-6060(99)70267-9
  13. Hindocha A, Beere L, Dias S, Watson A, Ahmad G. Adhesion prevention agents for gynaecological surgery: an overview of Cochrane reviews. Cochrane Database Syst Rev. 2015 Jan 6;1:CD011254. doi: 10.1002/14651858.CD011254.pub2
  14. Ahmad G, O’Flynn H, Hindocha A, Watson A. Barrier agents for adhesion prevention after gynaecological surgery. Cochrane Database Syst Rev. 2015 Apr 30;(4):CD000475. doi: 10.1002/14651858.CD000475.pub3
  15. Pados G, Venetis CA, Almaloglou K, Tarlatzis BC. Prevention of intra-peritoneal adhesions in gynaecological surgery: theory and evidence. Reprod Biomed Online. 2010 Sep;21(3):290-303. doi: 10.1016/j.rbmo.2010.04.021
  16. Гасанов НГ, Брежнев ВФ, Новикова ОИ, Гришина ОВ, Вацик МВ. Профилактика спаечной болезни при хирургическом лечении злокачественных опухолей органов живота. Хирург. 2013;(2):46-50.
  17. Суфияров ИФ, Латыпов РЗ, Сибиряк СВ, Шафиков РМ. Влияние иммуносупрессии, индуцированной циклофосфамидом, на развитие послеоперационных брюшинных спаек. Мед Вестн Башкортостана. 2009;4(4):64-67. https://cyberleninka.ru/article/n/vliyanie-immunosupressii-indutsirovannoy-tsiklofosfamidom-na-razvitie-posleoperatsionnyh-bryushinnyh-spaek
Адрес для корреспонденции:
071400, Республика Казахстан,
г. Семей, ул. Абая Кунанбаева, д. 103,
Государственный медицинский
университет г. Семей,
кафедра госпитальной хирургии,
тел.: +7 777 264-89-42,
e-mail: daurenchik@mail.ru,
Аужанов Даурен Берикжанович
Cведения об авторах:
Аужанов Даурен Берикжанович, PhD, докторант Государственного медицинского университета г. Семей, Республика Казахстан.
https://orcid.org/0000-0001-8378-0054
Аймагамбетов Мейрбек Жаксыбекович, д.м.н, доцент, заведующий кафедрой интернатуры по хирургии Государственного медицинского университета г. Семей, Республика Казахстан.
https://orcid.org/0000-0002-8344-4445
Жагипарова Жанар Амангельдиновна, к.м.н., заведующая кафедрой специальных дисциплин Павлодарского филиала Государственного медицинского университета г. Семей, Республика Казахстан.
https://orcid.org/0000-0002-5619-3505
Noso Yoshihiro, MD, PhD, профессор кафедры общей медицины факультета медицины университета Шиманэ, г. Идзумо, Япония.
https://orcid.org/0000-0003-3477-1260

ОБЩАЯ И ЧАСТHАЯ ХИРУРГИЯ

Е.А. ИЛЬИЧЕВА 1,3, Д.А. БУЛГАТОВ 1,2,3, А.В. ЖАРКАЯ 1,3, В.Н. МАХУТОВ 3, Л.Б. КОРЯКИHА 1,3, С.В. РЫЖИКОВА 3, А.Н. ЗАГОРОДHЯЯ 3, Т.В. ИВАHОВА 3

ОЦЕHКА УРОВHЯ FGF23 ДО И ПОСЛЕ ХИРУРГИЧЕСКОГО ЛЕЧЕHИЯ ВТОРИЧHОГО ГИПЕРПАРАТИРЕОЗА

Иркутский научный центр хирургии и травматологии 1,
Иркутский государственный медицинский университет 2,
Иркутская областная клиническая больница 3, г. Иркутск,
Российская Федерация

Цель. Исследовать уровень FGF23 до и после хирургического лечения вторичного гиперпаратиреоза и в группах сравнения у пациентов, получающих гемодиализ, разделенных по уровню паратиреоидного гормона, и у практически здоровых людей.
Материал и методы. Исследован одномоментно уровень фактора роста фибробластов – 23 (FGF23; пг/мл) в крови до и после хирургического лечения по поводу вторичного гиперпаратиреоза у пациентов, получающих заместительную почечную терапию гемодиализом. В группах сравнения исследован уровень FGF23 в крови у пациентов, получающих хронический гемодиализ. Группы разделены в зависимости от уровня интактного паратиреоидного гормона (ПТГ) в крови: с гипопаратиреозом (ПТГ меньше 130 пг/мл), с допустимым уровнем ПТГ (130-600 пг/мл) и гиперпаратиреозом (ПТГ больше 600 пг/мл). Также исследован уровень FGF23 у здоровых лиц. Всего исследовано 77 человек (33 женщины, 44 мужчины). Для оценки минерально-костных нарушений выполнено стандартное лабораторное обследование: биохимический анализ крови с электролитами (альбумин, общий кальций с коррекцией по альбумину, фосфор), ПТГ в крови.
Результаты. Получены данные, что уровень FGF23 в группе здоровых людей статистически ниже, чем в остальных группах (pU=0,001). Между группами людей с терминальной стадией хронической болезни почек различие FGF23 статистически не достоверно (pU>0,05).
Заключение. У всех пациентов, получающих диализ, независимо от выраженности вторичного гиперпаратиреоза до и после хирургического лечения, имеется повышенный уровень FGF23 в сравнении со здоровыми людьми. Статистически достоверных различий по уровню FGF23 в зависимости от наличия или отсутствия вторичного гиперпаратиреоза и результата хирургического лечения вторичного гиперпаратиреоза не выявлено. Согласно полученным данным, необходимо проведение дальнейших исследований, направленных на выявление роли FGF23 в патогенезе вторичного гиперпаратиреоза.

Ключевые слова: вторичный гиперпаратиреоз, хроническая почечная болезнь, фосфатонин, фактор роста фибробластов – 23, FGF23, минерально-костные нарушения
с. 379-385 оригинального издания
Список литературы
  1. Егшатян ЛВ, Рожинская ЛЯ, Кузнецов НС, Ким ИВ, Артемова АМ, Мордик АИ, Пушкина АВ, Борисов ВН, Шило ВЮ, Бухман АИ, Ремизов ОВ, Ильин АВ, Сазонова НИ, Чернова ТО. Лечение вторичного гиперпаратиреоза, рефрактерного к альфакальцидолу, у пациентов, получающих заместительную почечную терапию программным гемодиализом. Эндокрин Хирургия. 2012; (2):27-41. http://vidar.ru/Article.asp?fid=ESR_2012_2_27
  2. Ассоциация нефрологов Научное общество нефрологов России. Минеральные и костные нарушения при хронической болезни почек (Национальные рекомендации) [Электронный ресурс]. 2015. http://www.nephro.ru/content/files/recomendations/ckdmbdNationalGuidelines.pdf (дата обращения: 19.09.2018).
  3. Волгина Г, Селезнев Д, Балкарова О, Ловчинский Е. Внекостная кальцификация у пациентов с хронической болезнью почек. Врач. 2012;(7):2-8. http://nephro.rusvrach.ru/archive/vrach-2012-07-01.pdf
  4. Волков ММ, Смирнов AB. Рентгенологическая оценка кальцификации брюшной аорты у больных с хронической болезнью почек, получающих гемодиализ. Частота выявления и ассоциированные факторы. Нефрология. 2010;14(3):37-45. doi: 10.24884/1561-6274-2010-14-3-37-45
  5. Дегтерева ОА, Волков ММ, Шевякова ЕВ. Кальцификация сердечных клапанов у пациентов с хронической болезнью почек на додиализном периоде. Нефрология и Диализ. 2007;9(3):266-67. http://journal.nephro.ru/index.php?r=journal/issueView&journalId=31
  6. KDIGO clinical practice guideline for the diagnosis, evaluation, prevention, and treatment of Chronic Kidney Disease-Mineral and Bone Disorder (CKD-MBD). Kidney Int Suppl. 2009 Aug;(113):S1-130. doi: 10.1038/ki.2009.188
  7. National Kidney Foundation. K/DOQI clinical practice guidelines for bone metabolism and disease in chronic kidney disease. Am J Kidney Dis. 2003 Oct;42(4 Suppl 3):S1-201. doi: 10.1016/S0272-6386(03)00905-3
  8. Булгатов ДА, Ильичева ЕА. Спорные вопросы хирургического лечения вторичного гиперпаратиреоза: обзор литературы. Нефрология и Диализ. 2017;19(3):359-70. doi: 10.28996/1680-4422-2017-3-359-370
  9. Шутов ЕВ. Значение фактора роста фибробластов-23 у больных хронической болезнью почек. Лечащий Врач. 2012;8:12-19. https://www.lvrach.ru/2012/08/15435495/ (дата обращения: 19.09.2018).
  10. Gutierrez O, Isakova T, Rhee E, Shah A, Holmes J, Collerone G, Jüppner H, Wolf M. Fibroblast growth factor-23 mitigates hyperphosphatemia but accentuates calcitriol deficiency in chronic kidney disease. JASN. 2005 Jul;16(7):2205-15. doi: 10.1681/ASN.2005010052
  11. Gutiérrez OM, Mannstadt M, Isakova T, Rauh-Hain JA, Tamez H, Shah A, Smith K, Lee H, Thadhani R, Jüppner H, Wolf M. Fibroblast growth factor 23 and mortality among patients undergoing hemodialysis. N Engl J Med. 2008 Aug 7;359(6):584-92. doi: 10.1056/NEJMoa0706130
  12. Sato T, Tominaga Y, Ueki T, Goto N, Matsuoka S, Katayama A, Haba T, Uchida K, Nakanishi S, Kazama JJ, Gejyo F, Yamashita T, Fukagawa M. Total parathyroidectomy reduces elevated circulating fibroblast growth factor 23 in advanced secondary hyperparathyroidism. AJKD. 2004 Sep;44(3):481-87. doi: 10.1053/j.ajkd.2004.05.026
  13. Liao SC, Moi SH, Chou FF, Yang CH, Chen JB. Changes in serum concentrations of fibroblast growth factor 23 and soluble klotho in hemodialysis patients after total parathyroidectomy. Biomed Res Int. 2016; 2016:6453803. doi: 10.1155/2016/6453803
Адрес для корреспонденции:
664003, Российская Федерация,
г. Иркутск, ул. Красного Восстания, д. 1,
Иркутский государственный медицинский
университет Минздрава России,
кафедра госпитальной хирургии,
тел.: 8 (3952) 407809,
е-mail: bbd-x@mail.ru,
Булгатов Дмитрий Александрович
Cведения об авторах:
Ильичева Елена Алексеевна, д.м.н., профессор, заведующий научным отделом клинической хирургии, Иркутский научный центр хирургии и травматологии; врач-хирург торакального хирургического отделения, Иркутская областная клиническая больница, г. Иркутск, Российская Федерация.
https://orcid.org/0000-0002-2081-8665
Булгатов Дмитрий Александрович, очный аспирант кафедры госпитальной хирургии, Иркутский государственный медицинский университет; врач-хирург отделения гнойной хирургии № 1, Иркутский научный центр хирургии и травматологии; врач-хирург торакального хирургического отделения, Иркутская областная клиническая больница, г. Иркутск, Российская Федерация.
https://orcid.org/0000-0002-2440-0813
Жаркая Анастасия Валерьевна, к.м.н., м.н.с., Иркутский научный центр хирургии и травматологии; врач-хирург эндокринологического центра, Иркутская областная клиническая больница, г. Иркутск, Российская Федерация.
https://orcid.org/0000-0002-9337-2369
Махутов Валерий Николаевич, к.м.н., заведующий торакальным хирургическим отделением, Иркутская областная клиническая больница, г. Иркутск, Российская Федерация.
https://orcid.org/0000-0001-7318-7193
Корякина Лариса Борисовна, к.м.н., заведующий центром лабораторных исследований, Иркутская областная клиническая больница, г. Иркутск, Российская Федерация.
https://orcid.org/0000-0002-4545-2049
Рыжикова Светлана Валентиновна, врач центра лабораторных исследований, Иркутская областная клиническая больница, г. Иркутск, Российская Федерация.
https://orcid.org/0000-0003-3070-7720
Иванова Татьяна Витальевна, врач центра лабораторных исследований, Иркутская областная клиническая больница, г. Иркутск, Российская Федерация.
https://orcid.org/0000-0002-9277-1587
Загородняя Анна Николаевна, врач центра лабораторных исследований, Иркутская областная клиническая больница, г. Иркутск, Российская Федерация.
https://orcid.org/0000-0003-0685-2426

В.В. БОЙКО 1, В.А. ВОВК 2

ПРИМЕHЕHИЕ МИHИИHВАЗИВHЫХ ВМЕШАТЕЛЬСТВ ПРИ ЛЕЧЕHИИ ХОЛАHГИОГЕHHЫХ АБСЦЕССОВ ПЕЧЕHИ

Институт общей и неотложной хирургии им. В.Т. Зайцева НАМН Украины 1,
Областная клиническая больница 2, г. Харьков,
Украина

Цель. Усовершенствовать хирургическое лечение пациентов с холангиогенными абсцессами печени при помощи внедрения миниинвазивных технологий.
Материал и методы. В представленном исследовании приведены результаты лечения 49 пациентов с абсцессами печени билиарной этиологии. Среди них были 31 женщина и 18 мужчин в возрасте от 37 до 69 лет. Хирургические вмешательства по поводу печеночных абсцессов проводились одновременно с устранением первичного патологического процесса желчевыводящей системы, который стал причиной возникновения холангита, или в ближайшее время (до 3 суток) после дренирования желчевыводящих путей.
Результаты. Дренирование под ультразвуковым контролем выполнено 21 пациенту с одиночными и 7 пациентам с двумя и большим количеством холангиогенных абсцессов печени. Одновременно и абсцесс печени, и желчный проток дренированы 8 пациентам в условиях рентгенологической операционной. Лапароскопические вмешательства проведены 21 пациенту.
Среди пациентов, оперированных с применением миниинвазивных технологий, возникло 7 осложнений (14,3%): у 2 пациентов – желчеистечение, у 1 – правосторонний гидроторакс, у 1 – правосторонняя эмпиема плевры, у 1 – нагноение послеоперационной раны и у 2 остались конкременты в общем желчном протоке. Умер 1 пациент (2,0%) вследствие развития сепсиса при обструкции желчных путей злокачественной этиологии.
Заключение. Чрескожное дренирование абсцессов печени под ультразвуковым контролем целесообразно проводить не только при одиночных абсцессах, но и при их большем количестве. Доказана возможность одновременного дренирования абсцесса печени и желчного протока. Чрескожное дренирование абсцесса печени, дренирование желчевыводящих путей и лапароскопическое хирургическое вмешательство являются взаимодополняющими составными компонентами миниинвазивного хирургического вмешательства при лечении абсцессов печени билиарного происхождения. При локализации абсцессов в краевых сегментах печени наиболее целесообразна лапароскопическая атипичная резекция печени с абсцессом.

Ключевые слова: абсцесс печени, холангит, миниинвазивные процедуры, билиарное дренирование, дренирование абсцесса печени
с. 386-393 оригинального издания
Список литературы
  1. Rahimian J, Wilson T, Oram V, Holzman RS. Pyogenic liver abscess: recent trends in etiology and mortality. Clin Infect Dis. 2004 Dec 1;39(11):1654-59. doi: 10.1086/425616
  2. Peng YC, Lin CL, Sung FC. Risk of pyogenic liver abscess and endoscopic sphincterotomy: a population-based cohort study. BMJ Open. 2018 Mar 3;8(3):e018818. doi: 10.1136/bmjopen-2017-018818
  3. Su YJ, Lai YC, Lin YC, Yeh YH. Treatment and prognosis of pyogenic liver abscess. Int J Emerg Med. 2010 Dec;3(4):381-84. Published online 2010 Nov 5. doi: 10.1007/s12245-010-0232-6
  4. Lai SW, Liao KF, Lin CL, Chen PC. Pyogenic liver abscess correlates with increased risk of acute pancreatitis: a population-based cohort study. J Epidemiol. 2015;25(3):246-53. doi: 10.2188/jea.JE20140152
  5. Ерюхин ИА, Гельфанд БР, Шляпников СА, ред. Хирургические инфекции: рук. С-Петербург, РФ: Питер; 2003. 864 с. http://kingmed.info/knigi/Hiryrgia/Gnoinaa_hiryrgia/book_1989/Hirurgicheskie_infektsii_2-e_izdanie-Eryuhin_IA_Gelfand_BR_Shlyapnikov_SA-2003-djvu
  6. Serraino C, Elia C, Bracco C, Rinaldi G, Pomero F, Silvestri A, Melchio R, Fenoglio LM. Characteristics and management of pyogenic liver abscess: A European experience. Medicine (Baltimore). 2018 May;97(19):e0628. doi: 10.1097/MD.0000000000010628
  7. Shi S, Xia W, Guo H, Kong H, Zheng S. Unique characteristics of pyogenic liver abscesses of biliary origin. Surgery. 2016 May;159(5):1316-24. doi: 10.1016/j.surg.2015.11.012
  8. Cerwenka H. Pyogenic liver abscess: differences in etiology and treatment in Southeast Asia and Central Europe. World J Gastroenterol. 2010 May 28;16(20):2458-62. doi: 10.3748/wjg.v16.i20.2458
  9. Czerwonko ME, Huespe P, Bertone S, Pellegrini P, Mazza O, Pekolj J, de Santibañes E, Hyon SH, de Santibañes M. Pyogenic liver abscess: current status and predictive factors for recurrence and mortality of first episodes. HPB (Oxford). 2016 Dec;18(12):1023-30. Published online 2016 Oct 3. doi: 10.1016/j.hpb.2016.09.001
  10. Liu CH, Gervais DA, Hahn PF, Arellano RS, Uppot RN, Mueller PR. Percutaneous hepatic abscess drainage: do multiple abscesses or multiloculated abscesses preclude drainage or affect outcome? J Vasc Interv Radiol. 2009 Aug;20(8):1059-65. doi: 10.1016/j.jvir.2009.04.062
Адрес для корреспонденции:
61022, Украина,
г. Харьков, пр. Незалежности, д. 13,
Областная клиническая больница,
хирургическое отделение,
тел.: +38 (050) 924-61-56,
e-mail: valery_vals@ukr.net,
Вовк Валерий Анатольевич
Cведения об авторах:
Бойко Валерий Владимирович, член-корреспондент Национальной Академии медицинских наук Украины, доктор медицинских наук, профессор, директор, Институт общей и неотложной хирургии им. В.Т. Зайцева НАМН Украины, г. Харьков, Украина.
https://orcid.org/0000-0001-8675-2702
Вовк Валерий Анатольевич, кандидат медицинских наук, доцент, врач-хирург хирургического отделения, Областная клиническая больница, г. Харьков, Украина.
https://orcid.org/0000-0003-0888-1837

В.И. КОЛОМИЙЦЕВ, О.М. ТЕРЛЕЦКИЙ, М.М. БУФАH

АHАЛИЗ ДИАГHОСТИЧЕСКИХ КРИТЕРИЕВ МАЛОСИМПТОМHОГО ХОЛЕДОХОЛИТИАЗА У ПАЦИЕHТОВ С ОСТРЫМ КАЛЬКУЛЕЗHЫМ ХОЛЕЦИСТИТОМ

Львовский национальный медицинский университет имени Данила Галицкого, г. Львов,
Украина

Цель. Определить диагностические критерии малосимптомного холедохолитиаза у пациентов, страдающих острым калькулезным холециститом, на основании изучения лабораторных данных и методов инструментального обследования.
Материал и методы. В исследование включено 219 пациентов, находившихся на лечении в клинике хирургии № 1 Львовского национального медицинского университета имени Данила Галицкого в период c 2007 по 2017 гг. Среди пациентов было выделено 2 группы. Первая группа – пациенты с острым калькулезным холециститом и малосимптомным холедохолитиазом, выявленным с помощью эндоскопической ретроградной холангиопанкреатографии (169 человек). Во вторую группу вошли пациенты с острым калькулезным холециститом без холедохолитиаза (50 человек), составившие группу сравнения.
Результаты. В результате однофакторного анализа с помощью метода логистической регрессии было определено 5 из 47 факторов, определяющих наличие малосимптомного холедохолитиаза: диаметр холедоха (по данным трансабдоминального ультразвукового исследования), активность щелочной фосфатазы, аланинаминотрансферазы, аспартатаминотрансферазы, уровень общего билирубина. Разработана модель совокупного влияния вышеперечисленных факторов на вероятность наличия у пациента малосимптомного холедохолитиаза. В результате ROC-анализа (The Receiver Operating Characteristic) модели было выявлено ее высокое качество прогноза наличия малосимптомного холедохолитиаза (AUC=0,97). С помощью анализа специфичности, чувствительности и точности предлагаемой модели определен оптимальный порог установления принадлежности пациента к группе с малосимптомным холедохолитиазом, который составил 0,62. При данном значении порога чувствительность теста составляет 93,02%, специфичность – 92,06%, а точность – 92,31%.
Заключение. Определены диагностические критерии наличия малосимптомного холедохолитиаза (р<0,05): диаметр холедоха, активность аланинаминотрансферазы, аспартатаминотрансферазы, щелочной фосфатазы, а также уровень общего билирубина. Применение разработанной многофакторной модели прогнозирования наличия малосимптомного холедохолитиаза у пациентов с острым калькулезным холециститом позволит уменьшить необходимость применения дополнительных методов обследования, в частности таких, как магнитно-резонансная холангиопанкреатография, компьютерная томография, эндосонография, эндоскопическая ретроградная холангиография.

Ключевые слова: острый калькулезный холецистит, холедохолитиаз, модель прогноза холедохолитиаза, диагностические критерии, эндоскопическая ретроградна
с. 394-401 оригинального издания
Список литературы
  1. Horwood J, Akbar F, Davis K, Morgan R. Prospective evaluation of a selective approach to cholangiography for suspected common bile duct stones. Ann R Coll Surg Engl. 2010 Apr;92(3):206-10. doi: 10.1308/003588410X12628812458293
  2. Шаповальянц СГ, Ардасенов ТБ, Фрейдович ДА, Мыльников АГ, Паньков АГ, Будзинский СА, Никонов АА. Проблемы современной диагностики холедохолитиаза. Рос Журн Гастроэнтерологии, Гепатологии, Колопроктологии. 2011;(21)2:22-29.
  3. Yokoe M, Hata J, Takada T, Strasberg SM, Asbun HJ, Wakabayashi G, Kozaka K, Endo I, Deziel DJ, Miura F, Okamoto K, Hwang TL, Huang WS, Ker CG, Chen MF, Han HS, Yoon YS, Choi IS, Yoon DS, Noguchi Y, Shikata S, Ukai T, Higuchi R, Gabata T, Mori Y, Iwashita Y, Hibi T, Jagannath P, Jonas E, Liau KH, Dervenis C, Gouma DJ, Cherqui D, Belli G, Garden OJ, Giménez ME, de Santibañes E, Suzuki K, Umezawa A, Supe AN, Pitt HA, Singh H, Chan ACW, Lau WY, Teoh AYB, Honda G, Sugioka A, Asai K, Gomi H, Itoi T, Kiriyama S, Yoshida M, Mayumi T, Matsumura N, Tokumura H, Kitano S, Hirata K, Inui K, Sumiyama Y, Yamamoto M. Tokyo Guidelines 2018: diagnostic criteria and severity grading of acute cholecystitis. J Hepatobiliary Pancreat Sci. 2018 Jan;25(1):41-54. doi: 10.1002/jhbp.515
  4. Ansaloni L, Pisano M, Coccolini F, Peitzmann AB, Fingerhut A, Catena F, Agresta F, Allegri A, Bailey I, Balogh ZJ, Bendinelli C, Biffl W, Bonavina L, Borzellino G, Brunetti F, Burlew CC, Camapanelli G, Campanile FC, Ceresoli M, Chiara O, Civil I, Coimbra R, De Moya M, Di Saverio S, Fraga GP, Gupta S, Kashuk J, Kelly MD, Koka V, Jeekel H, Latifi R, Leppaniemi A, Maier RV, Marzi I, Moore F, Piazzalunga D, Sakakushev B, Sartelli M, Scalea T, Stahel PF, Taviloglu K, Tugnoli G, Uraneus S, Velmahos GC, Wani I, Weber DG, Viale P, Sugrue M, Ivatury R, Kluger Y, Gurusamy KS, Moore EE. 2016 WSES guidelines on acute calculous Cholecystitis. World J Emerg Surg. 2016 Jun;14:11-25. doi: 10.1186/s13017-016-0082-5
  5. Bourgouin S, Truchet X, Lamblin G, De Roulhac J, Platel JP, Balandraud P. Dynamic analysis of commonly used biochemical parameters to predict common bile duct stones in patients undergoing laparoscopic cholecystectomy. Surg Endosc. 2017 Nov;31(11):4725-34. doi: 10.1007/s00464-017-5549-2
  6. Chandrasekhara V, Khashab MA, Muthusamy VR, Acosta RD, Agrawal D, Bruining DH, Eloubeidi MA, Fanelli RD, Faulx AL, Gurudu SR, Kothari S, Lightdale JR, Qumseya BJ, Shaukat A, Wang A, Wani SB, Yang J, DeWitt JM. Adverse events associated with ERCP. Gastrointest Endosc. 2017 Jan;85(1):32-47. https://www.giejournal.org/article/S0016-5107(16)30335-2/fulltext
  7. Chen W, Mo JJ, Lin L, Li CQ, Zhang JF. Diagnostic value of magnetic resonance cholangiopancreatography in choledocholithiasis. World J Gastroenterol. 2015 Mar 21;21(11):3351-60. doi: 10.3748/wjg.v21.i11.3351
  8. Singh A, Mann HS, Thukral CL, Singh NR. Diagnostic accuracy of MRCP as compared to ultrasound/CT in patients with obstructive jaundice. J Clin Diagn Res. 2014 Mar;8(3):103-107. doi: 10.7860/JCDR/2014/8149.4120
  9. Jovanović P, Salkić NN, Zerem E, Ljuca F. Biochemical and ultrasound parameters may help predict the need for therapeutic endoscopic retrograde cholangiopancreatography (ERCP) in patients with a firm clinical and biochemical suspicion for choledocholithiasis. Eur J Intern Med. 2011 Dec;22(6):e110-14. doi: 10.1016/j.ejim.2011.02.008
  10. Isherwood J, Garcea G, Williams R, Metcalfe M, Dennison AR. Serology and ultrasound for diagnosis of choledocholithiasis. Ann R Coll Surg Engl. 2014 Apr;96(3):224-28. doi: 10.1308/003588414X13814021678033
  11. Sherman JL, Shi EW, Ranasinghe NE, Sivasankaran MT, Prigoff JG, Divino CM. Validation and improvement of a proposed scoring system to detect retained common bile duct stones in gallstone pancreatitis. Surgery. 2015 Jun;157(6):1073-79. doi: 10.1016/j.surg.2015.01.005
  12. Kim KM, Lee JK, Bahng S, Shin JU, Lee KH, Lee KT, Lee WJ, Lim JH. Role of endoscopic ultrasonography in patients with intermediate probability of choledocholithiasis but a negative CT scan. J Clin Gastroenterol. 2013 May-Jun;47(5):449-56. doi: 10.1097/MCG.0b013e31827130a7
  13. Rubin MI, Thosani NC, Tanikella R, Wolf DS, Fallon MB, Lukens FJ. Endoscopic retrograde cholangiopancreatography for suspected choledocholithiasis: testing the current guidelines. Dig Liver Dis. 2013 Sep;45(9):744-49. doi: 10.1016/j.dld.2013.02.005
Адрес для корреспонденции:
79010, Украина,
г. Львов, ул. Пекарская, д. 69,
Львовский национальный медицинский
университет имени Данила Галицкого,
кафедра хирургии № 1,
тел. моб.: + 380974655895,
e-mail: olegterletskiy@ukr.net,
Терлецкий Олег Миронович
Cведения об авторах:
Коломийцев Василий Иванович, д.м.н., профессор кафедры хирургии № 1 Львовского национального медицинского университета имени Данила Галицкого, г. Львов, Украина.
https://orcid.org/0000-0003-0646-6306
Терлецкий Олег Миронович, аспирант кафедры хирургии № 1 Львовского национального медицинского университета имени Данила Галицкого, г. Львов, Украина.
https://orcid.org/0000-0001-6675-6159
Буфан Мария Мироновна, к.м.н., доцент кафедры пропедевтики внутренней медицины № 1 Львовского национального медицинского университета имени Данила Галицкого, г. Львов, Украина.
https://orcid.org/0000-0002-4814-0964

С.А. ПЛАКСИH

ПОЗДHИЕ СЕРОМЫ ПОСЛЕ ПРОТЕЗИРОВАHИЯ МОЛОЧHЫХ ЖЕЛЕЗ

Пермский государственный медицинский университет им. акад. Е.А. Вагнера, г. Пермь,
Российская Федерация

Цель. Оценить риски развития, клинические варианты и хирургическую тактику при поздних серомах после эндопротезирования молочных желез.
Материал и методы. Поздние серомы диагностированы у 19 женщин (1,4%) после 1387 операций протезирования молочных желез в сроки от 6 мес. до 16 лет после первой операции. 6 из них оперированы исходно в других больницах, истинная частота сером составила 0,9%. Для диагностики использовали ультразвуковое исследование, компьютерную томографию.
Результаты. Причиной служили капсулярная контрактура (6), разрыв импланта (3), мастит (4), общая инфекция (1), лактация (1); 3 были обнаружены на операции, одна возникла без видимой причины. В раннем послеродовом периоде скопление молока около протеза назвали «милкома». Поздние серомы разделили на малые – объемом до 50 мл (29,3±7,5 мл) (у 8 пациенток (42,1%)), средние – объемом от 50 до 150 мл (97,7±37,8 мл) (у 4 пациенток (21,1%)) и большие – более 150 мл (271,4±111,3 мл) (7 пациенток (36,8%)). Консервативно излечены антибактериальной, противовоспалительной, физиотерапией 3 пациентки с малыми серомами, повторными пункциями и подавлением лактации одна (милкома), дренированием серомы – одна пациентка. Прооперированы 14 человек (73,7%): капсулэктомия с репротезированием и дренированием при малых серомах выполнена у 6 пациенток, при всех больших серомах, признаках мастита и/или инфицирования жидкости при средних серомах проведена капсулэктомия с удалением протезов и дренированием – у 5; удаление имплантов и дренирование серомы выполнено у 3 пациенток. Повторное репротезирование выполняли не ранее, чем через 6 месяцев.
Заключение. Факторами риска развития поздних сером являются капсулярная контрактура, разрывы имплантов. При малых серомах возможна консервативная терапия или капсулэктомия с репротезированием молочных желез. При больших серомах или признаках мастита и/или инфицирования жидкости необходимы удаление импланта и дренирование.

Ключевые слова: протезы молочных желез, поздние серомы, лечение, факторы риска, аугментационная маммопластика, капсулярная контрактура
с. 402-408 оригинального издания
Список литературы
  1. Botti J. Aesthetic Mammaplasties. Practical Atlas of Plastic Surgery. SEE-FIRENZE; 2008. 628 p.
  2. Mazzocchi M, Dessy LA, Corrias F, Scuderi N. A clinical study of late seroma in breast implantation surgery. Aesthetic Plast Surg. 2012 Feb;36(1):97-104. doi: 10.1007/s00266-011-9755-3
  3. Loch-Wilkinson A, Beath KJ, Knight RJW, Wessels WLF, Magnusson M, Papadopoulos T, Connell T, Lofts J, Locke M, Hopper I, Cooter R, Vickery K, Joshi PA, Prince HM, Deva AK. Breast implant-associated anaplastic large cell lymphoma in Australia and New Zealand: high-surface-area textured implants are associated with increased risk. Plast Reconstr Surg. 2017 Oct;140(4):645-54. doi: 10.1097/PRS.0000000000003654
  4. Meggiorini ML, Maruccia M, Carella S, Sanese G, De Felice C, Onesti MG. Late massive breast implant seroma in postpartum. Aesthet Plast Surg. 2013 Oct;37(5):931-35. doi: 10.1007/s00266-013-0164-7
  5. Di Napoli A, Pepe G, Giarnieri E, Cippitelli C, Bonifacino A, Mattei M, Martelli M, Falasca C, Cox MC, Santino I, Giovagnoli MR. Cytological diagnostic features of late breast implant seromas: From reactive to anaplastic large cell lymphoma. PLoS One. 2017 Jul 17;12(7):e0181097. doi: 10.1371/journal.pone.0181097. eCollection 2017.
  6. Sforza M, Husein R, Atkinson C, Zaccheddu R. Unraveling factors influencing early seroma formation in breast augmentation surgery. Aesthet Surg J. 2017 Mar 1;37(3):301-307. doi: 10.1093/asj/sjw196
  7. McGuire P, Reisman NR, Murphy DK. Risk factor analysis for capsular contracture, malposition, and late seroma in subjects receiving natrelle 410 form-stable silicone breast implants. Plast Reconstr Surg. 2017 Jan;139(1):1-9. doi: 10.1097/PRS.0000000000002837
  8. Zelken J, Huang JJ, Wu CW, Lin YL, Cheng MH. The Transareolar-Periareolar Approach. Plast Reconstr Surg Glob Open. 2016 Sep 7;4(9):e1020. eCollection 2016 Sep. doi: 10.1097/GOX.0000000000001020
  9. Hall-Findlay EJ. Breast implant complication review: double capsules and late seromas. Plast Reconstr Surg. 2011 Jan;127(1):56-66. doi: 10.1097/PRS.0b013e3181fad34d
  10. Efanov JI, Giot JP, Fernandez J, Danino MA. Breast-implant texturing associated with delamination of capsular layers: A histological analysis of the double capsule phenomenon. Ann Chir Plast Esthet. 2017 Jun;62(3):196-201. doi: 10.1016/j.anplas.2017.02.001
  11. Pinchuk V, Tymofii O. Seroma as a late complication after breast augmentation. Aesthetic Plast Surg. 2011 Jun;35(3):303-14. doi: 10.1007/s00266-010-9607-6
  12. Cheng NX, Zhang YL, Luo SK, Zhang XM, Hui L, Chen YL, Sheng SY, Wu DH, Wang HB, Li P. Late hematoma, seroma, and galactocele in breasts injected with polyacrylamide gel. Aesthetic Plast Surg. 2011 Jun;35(3):365-72. doi: 10.1007/s00266-010-9617-4
  13. Spear SL, Rottman SJ, Glicksman C, Brown M, Al-Attar A. Late seromas after breast implants: theory and practice. Plast Reconstr Surg. 2012 Aug;130(2):423-35. doi: 10.1097/PRS.0b013e3182589ea9
  14. Becker H, Klimczak J. Aspiration of periprosthetic seromas using the blunt seroma cath. Plast Reconstr Surg. 2016 Feb;137(2):473-75. doi: 10.1097/01.prs.0000475795.84725.c4
Адрес для корреспонденции:
614990, Российская Федерация,
г. Пермь, ул. Петропавловская, д. 26,
Пермский государственный медицинский университет им. акад. Е.А. Вагнера,
кафедра хирургии ФДПО,
тел.: +7 342 239-29-72,
e-mail: splaksin@mail.ru,
Плаксин Сергей Александрович
Cведения об авторах:
Плаксин Сергей Александрович, д.м.н., профессор кафедры хирургии факультета дополнительного профессионального образования, Пермский государственный медицинский университет им. акад. Е.А. Вагнера, г. Пермь, Российская Федерация.
http://orcid.org/0000-0001-8108-1655

ТРАHСПЛАHТОЛОГИЯ

А.В. НОСИК 1, С.В. КОРОТКОВ 1, 2, В.В. СМОЛЬHИКОВА 2, В.Ю. ГРИHЕВИЧ 2, М.В. ДМИТРИЕВА 3, А.А. ДОЛГОЛИКОВА 2, И.И. ПИКИРЕHЯ 1, 2, С.И. КРИВЕHКО 2, О.В. КАЛАЧИК 1, 2, А.Е. ЩЕРБА 1, 2, О.О. РУММО 1, 2

ЗHАЧЕHИЕ ОЦЕHКИ ЧИСЛЕHHОСТИ СУБПОПУЛЯЦИЙ ЛИМФОЦИТОВ ПЕРИФЕРИЧЕСКОЙ КРОВИ В ДИАГHОСТИКЕ КЛЕТОЧHОГО ОТТОРЖЕHИЯ ПОСЛЕ ТРАHСПЛАHТАЦИИ ПОЧКИ

Белорусская медицинская академия последипломного образования 1,
Минский научно-практический центр хирургии, трансплантологии и гематологии 2,
Городское клиническое патологоанатомическое бюро 3, г. Минск,
Республика Беларусь

Цель. Изучить возможность оценки численности субпопуляций лимфоцитов периферической крови в качестве биомаркеров позднего отторжения трансплантата почки.
Материал и методы. Проведено обсервационное, ретроспективное, аналитическое, сравнительное в 2 группах исследование по типу «случай-контроль» (44 пациента). В первую группу (AR) вошли участники с гистологически-подтвержденным поздним клеточным отторжением трансплантата (22 пациента). Вторую группу (STA) составили реципиенты со стабильной функцией трансплантата (22 пациента). В качестве метода оценки иммунного статуса реципиентов использована проточная цитофлюориметрия.
Результаты. В результате работы в группах исследования выявлены достоверные отличия в абсолютной численности субпопуляций эффекторных CD4+ Т-клеток памяти, что составило в группе REJ 0,147 (0,115-0,260)×109 кл/л, а в группе STA – 0,106 (0,067-0,136)×109 кл/л (р=0,0167), в относительной и абсолютной численности миелоидных дендритных клеток, что составило 0,65 (0,36-0,73) vs 1,05 (0,67-1,4)% и 0,039 (0,028-0,056) vs 0,063 (0,049-0,076)×109 кл/л (р=0,0009, р=0,003), а также в относительной и абсолютной численности плазмацитоидных дендритных клеток – 0,055 (0,04-0,085) vs 0,09 (0,05-0,12)% и 0,0038 (0,0021-0,0054) vs 0,005 (0,0035-0,007)×109 кл/л (р=0,0197, р=0,0414).
Оценка диагностических характеристик биомаркеров проводилась с помощью ROC-анализа. Так, площадь под ROC-кривой (AUC) для абсолютной численности эффекторных CD4+ Т клеток памяти составила 0,711 (95%ДИ: 0,55-0,84), р=0,007. AUC для относительной и абсолютной численности миелоидных дендритных клеток составила соответственно 0,784 (95%ДИ: 0,63-0,89) и 0,758 (95%ДИ: 0,6-0,87), р=0,0001 и р=0,0004. Для относительной и абсолютной численности плазмацитоидных дендритных клеток AUC составила соответственно 0,7 (95%ДИ: 0,55-0,83) и 0,68 (0,51-0,8), р=0,01 и р=0,0357.
Заключение. Полученные данные показали, что уровень в крови дендритных клеток и уровень хелперных эффекторных Т-клеток памяти могут обоснованно считаться диагностическими маркерами позднего отторжения трансплантата почки.

Ключевые слова: трансплантация почки, почечный аллографт, иммуномониторинг, биомаркеры, отторжение
с. 409-420 оригинального издания
Список литературы
  1. Tonelli M, Wiebe N, Knoll G, Bello A, Browne S, Jadhav D, Klarenbach S, Gill J. Systematic review: kidney transplantation compared with dialysis in clinically relevant outcomes. Am J Transplant. 2011 Oct;11(10):2093-109. doi: 10.1111/j.1600-6143.2011.03686.x
  2. Koo EH, Jang HR, Lee JE, Park JB, Kim SJ, Kim DJ, Kim YG, Oh HY, Huh W. The impact of early and late acute rejection on graft survival in renal transplantation. Kidney Res Clin Pract. 2015 Sep;34(3):160-64. Published online 2015 Jul 26. doi: 10.1016/j.krcp.2015.06.003
  3. Hanssen O, Erpicum P, Lovinfosse P, Meunier P, Weekers L, Tshibanda L, Krzesinski JM, Hustinx R, Jouret F. Non-invasive approaches in the diagnosis of acute rejection in kidney transplant recipients. Part I. In vivo imaging methods. Clin Kidney J. 2017 Feb;10(1):97-105. Published online 2016 Jul 28. doi: 10.1093/ckj/sfw062
  4. Reschen ME, Mazzella A, Sharples E. A retrospective analysis of the utility and safety of kidney transplant biopsies by nephrology trainees and consultants. Ann Med Surg (Lond). 2018 Feb 9;28:6-10. doi: 10.1016/j.amsu.2018.02.001
  5. Salvadori M, Tsalouchos A. Biomarkers in renal transplantation: an updated review. World J Transplant. 2017 Jun 24;7(3):161-78. doi: 10.5500/wjt.v7.i3.161
  6. Woo J, Baumann A, Arguello V. Recent advancements of flow cytometry: new applications in hematology and oncology. Expert Rev Mol Diagn. 2014 Jan;14(1):67-81. doi: 10.1586/14737159.2014.862153
  7. Maguire O, Tario JD Jr, Shanahan TC, Wallace PK, Minderman H. Flow cytometry and solid organ transplantation: a perfect match. Immunol Invest. 2014;43(8):756-74. doi: 10.3109/08820139.2014.910022
  8. Borghans J, Ribeiro RM. The maths of memory. eLife. 2017;6:e26754. Published online 2017 Apr 28. doi: 10.7554/eLife.26754
  9. Benichou G, Gonzalez B, Marino J, Ayasoufi K, Valujskikh A. Role of memory t cells in allograft rejection and tolerance. Front Immunol. 2017;8:170. Published online 2017 Feb 28. doi: 10.3389/fimmu.2017.00170
  10. Zhou H, Wu L. The development and function of dendritic cell populations and their regulation by miRNAs. Protein Cell. 2017 Jul;8(7):501-13. doi: 10.1007/s13238-017-0398-2
  11. Zhuang Q, Lakkis FG. Dendritic cells and innate immunity in kidney transplantation. Kidney Int. 2015 Apr;87(4):712-18. doi: 10.1038/ki.2014.430
Адрес для корреспонденции:
220013, Республика Беларусь,
г. Минск, ул. П. Бровки, 3, корпус 3,
Белорусская медицинская академия
последипломного образования,
кафедра трансплантологии,
тел.: +375 (33) 312-86-24,
e-mail: doctornosik@gmail.com,
Носик Александр Викторович
Cведения об авторах:
Носик Александр Викторович, ассистент кафедры трансплантологии, Белорусская медицинская академия последипломного образования, врач-хирург отделения трансплантации, Минский научно-практический центр хирургии, трансплантологии и гематологии, г. Минск, Республика Беларусь.
https://orcid.org/0000-0002-3500-0866
Коротков Сергей Владимирович, к.м.н., доцент, доцент кафедры трансплантологии, Белорусская медицинская академия последипломного образования, заведующий отделом трансплантологии (трансплантации печени и гепатобилиарной хирургии), Минский научно-практический центр хирургии, трансплантологии и гематологии, г. Минск, Республика Беларусь.
https://orcid.org/0000-0002-8536-6911
Смольникова Виктория Владимировна, старший научный сотрудник, научный отдел, Минский научно-практический центр хирургии, трансплантологии и гематологии, г. Минск, Республика Беларусь.
https://orcid.org/0000-0001-5947-8285
Гриневич Виктория Юрьевна, врач лабораторной диагностики, клинико-диагностическая лаборатория СТКМ, Минский научно-практический центр хирургии, трансплантологии и гематологии, г. Минск, Республика Беларусь.
https://orcid.org/0000-0002-4505-4884
Кривенко Светлана Ивановна, д.м.н., доцент, заместитель директора по науке, Минский научно-практический центр хирургии, трансплантологии и гематологии, г. Минск, Республика Беларусь.
https://orcid.org/0000-0002-6813-4465
Дмитриева Маргарита Владимировна, врач-патологоанатом, Городское клиническое патологоанатомическое бюро, г. Минск. Республика Беларусь.
https://orcid.org/0000-0002-2958-9424
Пикиреня Иван Иванович, к.м.н., доцент, заведующий кафедрой трансплантологии, Белорусская медицинская академия последипломного образования, врач-хирург хирургического отделения, Минский научно-практический центр хирургии, трансплантологии и гематологии, г. Минск, Республика Беларусь.
https://orcid.org/0000-0001-8907-4601
Долголикова Анна Александровна, к.м.н., врач-нефролог нефрологического отделения, Минский научно-практический центр хирургии, трансплантологии и гематологии, г. Минск, Республика Беларусь.
https://orcid.org/0000-0003-3576-2235
Калачик Олег Валентинович, д.м.н., доцент, доцент кафедры трансплантологии, Белорусская медицинская академия последипломного образования, заместитель директора по медицинской части, Минский научно-практический центр хирургии, трансплантологии и гематологии, руководитель республиканского центра нефрологии, почечно-заместительной терапии и трансплантации почки, г. Минск, Республика Беларусь.
https://orcid.org/0000-0002-8993-0292
Щерба Алексей Евгеньевич, д.м.н., доцент, доцент кафедры трансплантологии, Белорусская медицинская академия последипломного образования, заместитель директора по хирургии, Минский научно-практический центр хирургии, трансплантологии и гематологии, г. Минск, Республика Беларусь.
https://orcid.org/0000-0003-0569-6150
Руммо Олег Олегович, д.м.н., профессор, член-корреспондент НАН Беларуси, профессор кафедры трансплантологии, Белорусская медицинская академия последипломного образования, директор, Минский научно-практический центр хирургии, трансплантологии и гематологии, г. Минск, Республика Беларусь.
https://orcid.org/0000-0001-7023-4767

ДЕТСКАЯ ХИРУРГИЯ

О.А. ГОВОРУХИHА

ПРИЧИHЫ РАЗВИТИЯ ПОСЛЕОПЕРАЦИОHHОГО ЭHТЕРОКОЛИТА ПРИ БОЛЕЗHИ ГИРШПРУHГА У ПАЦИЕHТОВ ДЕТСКОГО ВОЗРАСТА

Республиканский научно-практический центр детской хирургии, г. Минск,
Республика Беларусь

Цель. Провести анализ причин развития энтероколита в группе пациентов с болезнью Гиршпрунга после радикального хирургического лечения с целью предупреждения его возникновения и улучшения результатов лечения.
Материал и методы. За период c 2010 по 2018 год в РНПЦ детской хирургии прооперировано 92 пациента с болезнью Гиршпрунга методом трансанального эндоректального низведения кишки (Transanal Endorectal Pull-Through – ТЕРТ) (в различных вариантах) в возрасте от 1 месяца до 16 лет. В настоящее исследование были включены все пациенты с признаками послеоперационного энтероколита. Оценивали клинические проявления заболевания, возраст пациентов на момент радикального оперативного лечения, форму болезни Гиршпрунга, изменения в морфологической картине биопсийного материала кишки.
Результаты. За период с 2010 по 2018 год в исследуемой группе (19 пациентов с послеоперационным энтероколитом – 27,2% от общего количества пациентов) преобладали случаи энтероколита легкой и средней степени тяжести. В 8 случаях послеоперационных энтероколитов тяжелой степени потребовалось хирургическое лечение. Выявлено, что возникновение послеоперационного энтероколита не зависело от возраста пациента на момент радикальной операции. Основными причинами возникновения послеоперационного энтероколита являлись следующие: длинная зона резекции кишки при протяженном аганглиозе и наличие предшествовавших энтероколитов в анамнезе до радикальной операции. При морфологическом исследовании операционного материала с электронно-микроскопическим контролем выявлено, что в случаях энтероколита при болезни Гиршпрунга деструктивным процессам подвергались клетки иммунной системы (эозинофилы, тучные клетки) и эндокриноциты стенки кишки, что способствовало возникновению рецидивирующих энтероколитов после радикального хирургического лечения.
Заключение. Выявление основных причин возникновения послеоперационного энтероколита позволило выделить группу пациентов, угрожаемых по развитию этого тяжелого осложнения болезни Гиршпрунга. Своевременные и адекватные профилактика и лечение послеоперационного энтероколита улучшили результаты лечения пациентов.

Ключевые слова: болезнь Гиршпрунга, аганглиоз, толстая кишка, энтероколит, трансанальное эндоректальное низведение, послеоперационные осложнения
с. 421-427 оригинального издания
Список литературы
  1. Swenson O. Hirschsprung’s disease: a review. Pediatrics. 2002 May;109(5):914-18.
  2. Holschneider AM, Puri P, eds. Hirschsprung’s disease and allied disorders. 3rd ed. New York, NY: Springer; 2008. 414 p.
  3. Dasgupta R, Langer JC. Hirschsprung disease. Curr Probl Surg. 2004 Dec;41(12):942-88. doi: 10.1067/j.cpsurg.2004.09.004
  4. Langer JC, Rollins MD, Levitt M, Gosain A, Torre L, Kapur RP, Cowles RA, Horton J, Rothstein DH, Goldstein AM. Guidelines for the management of postoperative obstructive symptoms in children with Hirschsprung disease. Pediatr Surg Int. 2017 May;33(5):523-26. doi: 10.1007/s00383-017-4066-7
  5. Thakkar HS, Bassett C, Hsu A, Manuele R, Kufeji D, Richards CA, Agrawal M, Keshtgar AS. Functional outcomes in Hirschsprung disease: A single institution’s 12-year experience. J Pediatr Surg. 2017 Feb;52(2):277-80. doi: 10.1016/j.jpedsurg.2016.11.023
  6. Adıgüzel Ü, Ağengin K, Kırıtıoğlu I, Doğruyol H. Transanal endorectal pull-through for Hirschsprung’s disease: experience with 50 patients. Ir J Med Sci. 2017 May;186(2):433-37. doi: 10.1007/s11845-016-1446-2
  7. Khazdouz M, Sezavar M, Imani B, Akhavan H, Babapour A, Khademi G. Clinical outcome and bowel function after surgical treatment in Hirschsprung’s disease. Afr J Paediatr Surg. 2015 Apr-Jun;12(2):143-47. doi: 10.4103/0189-6725.160403
  8. Yan Z, Poroyko V, Gu S, Zhang Z, Pan L, Wang J, Bao N, Hong L. Characterization of the intestinal microbiome of Hirschsprung’s disease with and without enterocolitis. Biochem Biophys Res Commun. 2014 Mar 7;445(2):269-74. doi: 10.1016/j.bbrc.2014.01.104
  9. Gosain A, Brinkman AS. Hirschsprung’s associated enterocolitis. Curr Opin Pediatr. 2015 Jun;27(3):364-69. doi: 10.1097/MOP.0000000000000210
  10. Kwendakwema N, Al-Dulaimi R, Presson AP, Zobell S, Stevens AM, Bucher BT, Barnhart DC, Rollins MD. Enterocolitis and bowel function in children with Hirschsprung disease and trisomy 21. J Pediatr Surg. 2016 Dec;51(12):2001-2004. doi: 10.1016/j.jpedsurg.2016.09.026
  11. Lu C, Hou G, Liu C, Geng Q, Xu X, Zhang J, Chen H, Tang W. Single-stage transanal endorectal pull-through procedure for correction of Hirschsprung disease in neonates and nonneonates: A multicenter study. J Pediatr Surg. 2017 Jul;52(7):1102-1107. doi: 10.1016/j.jpedsurg.2017.01.061
  12. Wang X, Li Z, Xu Z, Wang Z, Feng J. Probiotics prevent Hirschsprung’s disease-associated enterocolitis: a prospective multicenter randomized controlled trial. Int J Colorectal Dis. 2015 Jan;30(1):105-10. doi: 10.1007/s00384-014-2054-0
  13. Боголепов НН. Методы электронно-микроскопического исследования мозга [Электронный ресурс]. Москва: Изд ин-та мозга АМН СССР; 1976. 72 с. http://freakbooks.ru/item/7419401-metody-elektronno-mikroskopicheskogo-issledovaniya-mozga
Адрес для корреспонденции:
220013, Республика Беларусь,
г. Минск, пр. Независимости, д. 64,
ГУ «Республиканский научно-практический
центр детской хирургии»,
гнойное отделение № 2 (хирургическое),
тел. +375 29 772-31-34,
e-mail: govorukhina@mail.ru,
Говорухина Ольга Алексеевна
Cведения об авторах:
Говорухина Ольга Алексеевна, к.м.н., доцент, заведующая гнойным отделением № 2 (хирургическим), Республиканский научно-практический центр детской хирургии, г. Минск, Республика Беларусь.
https://orcid.org/0000-0002-1605-7031

ИHФОРМАЦИОHHЫЕ ТЕХHОЛОГИИ В ХИРУРГИИ

В.И. ГУЦУЛЯК 1, Р.Д. БОРОДАЙКЕВИЧ 2, А.И. ГУЦУЛЯК 1, Т.М. КОВАЛИШИH 1

ОСОБЕHHОСТИ РАЗРАБОТКИ И ПРИМЕHЕHИЯ 3-D АТЛАСА ПОЗИЦИЙ ЧРЕСКОСТHЫХ ЭЛЕМЕHТОВ ДЛЯ ПРЕДОПЕРАЦИОHHОГО ПЛАHИРОВАHИЯ ОСТЕОСИHТЕЗА КОСТЕЙ ГОЛЕHИ

Ивано-Франковский национальный медицинский университет 1, г. Ивано-Франковск,
Специализированный (специальный) санаторий «Горный воздух» МЗ Украины 2, г. Яремче,
Украина

Цель. Оптимизировать процесс предоперационного планирования чрескостного остеосинтеза при переломах костей голени путем разработки и применения 3-D атласа позиций чрескостных элементов.
Материал и методы. На основе поперечных компьютерных томографических сканов интактной нижней конечности взрослого человека, с помощью программного пакета 3-D Doctor в автоматическом режиме, созданы трехмерные имитационные модели костей голени и окружающих их мягкотканных структур. Данные модели экспортированы в программный комплекс Autodesk Inventor 11. В режиме Part Modeling проведено разделение модели мягкотканных структур голени на 96 частей – сегментов, соответствующих позициям для проведения чрескостных элементов согласно методу унифицированного обозначения чрескостного остеосинтеза, и их сохранение в отдельных файлах. В режиме «Assembly» программы проведена сборка сегментов голени.
Результаты. Предложен алгоритм действий для создания 3-D атласа позиций для проведения чрескостных элементов, согласно которому в программе Autodesk Inventor 11 созданы трехмерные имитационные модели систем «голень – аппарат внешней фиксации» и проведен анализ их возможностей по предоперационному планированию чрескостного остеосинтеза.
В результате проведенного исследования установлено, что использование 3-D атласа позиций обеспечивает возможность выбора оптимальной конструкции и наиболее рациональной, в каждой конкретной клинической ситуации, компоновки аппарата внешней фиксации; определения количества и оптимальных уровней расположения опор; выбора типа и наиболее целесообразных мест проведения чрескостных элементов.
Заключение. Применение 3-D атласа позиций чрескостных элементов позволяет вплотную приблизиться к решению вопроса предоперационного планирования с позиций комплексного подхода: адекватного существующей клинической ситуации выбора типа аппарата внешней фиксации, его компоновки, определения количества чрескостных элементов, направлений и плоскостей их проведения, что позволит значительно уменьшить количество технических ошибок, обеспечит снижение рисков возникновения осложнений и будет способствовать достижению положительных анатомо-функциональных результатов в подавляющем большинстве клинических случаев.

Ключевые слова: трехмерная модель, аппарат внешней фиксации, чрескостный остеосинтез, чрескостные элементы, предоперационное планирование
с. 428-434 оригинального издания
Список литературы
  1. Hughes A, Parry M, Heidari N, Jackson M, Atkins R, Monsell F. Computer Hexapod-Assisted Orthopaedic Surgery for the Correction of Tibial Deformities. J Orthop Trauma. 2016 Jul;30(7):e256-61. doi: 10.1097/BOT.0000000000000544
  2. Murase T, Oka K, Moritomo H, Goto A, Sugamoto K, Yoshikawa H. Correction of severe wrist deformity following physeal arrest of the distal radius with the aid of a three-dimensional computer simulation. Arch Orthop Trauma Surg. 2009;129:1465-71. doi: 10.1007/s00402-008-0800-x
  3. Rozbruch SR, Fragomen AT, Ilizarov S. Correction of tibial deformity with use of the Ilizarov-Taylor spatial frame. J Bone Joint Surg Am. 2006 Dec;88(Suppl 4):156-74. doi: 10.2106/JBJS.F.00745
  4. Соломин ЛН. Основы чрескостного остеосинтеза аппаратом Г.А. Илизарова. С-Петербург, РФ; 2005. 544 с. http://www.medliter.ru/?page=get&id=015127
  5. Catagni MA. Atlas for the insertion of transosseous wires and half-pins. Ilizarov method. 2nd ed. Milan: Medicalplastic; 2003. 51 p. Available from: http://osteosyntese.dk/3033/Smith-Nephew-Pin-atlas.pdf
  6. Solomin L. The basic principles of external skeletal fixation using the Ilizarov and other devices. 2nd ed. Milan: Springer-Verlag; 2012. 1593 p. https://www.springer.com/us/book/9788847026186
  7. Okada T, Iwasaki Y, Koyama T, Sugano N, Chen YW, Yonenobu K, Sato Y. Computer-assisted preoperative planning for reduction of proximal femoral fracture using 3-D-CT data. IEEE Trans Biomed Eng. 2009 Mar;56(3):749-59. doi: 10.1109/TBME.2008.2005970
  8. Fürnstahl P, Székely G, Gerber C, Hodler J, Snedeker JG, Harders M. Computer assisted reconstruction of complex proximal humerus fractures for preoperative planning. Med Image Anal. 2012 Apr;16(3):704-20. doi: 10.1016/j.media.2010.07.012
  9. Buschbaum J, Fremd R, Pohlemann T, Kristen A. Computer-assisted fracture reduction: a new approach for repositioning femoral fractures and planning reduction paths. Int J Comput Assist Radiol Surg. 2015 Feb;10(2):149-59. doi: 10.1007/s11548-014-1011-2
  10. Qiao F, Li D, Jin Z, Hao D, Liao Y, Gong S. A novel combination of computer-assisted reduction technique and three dimensional printed patient-specific external fixator for treatment of tibial fractures. Int Orthop. 2016 Apr;40(4):835-41. doi: 10.1007/s00264-015-2943-z
  11. Wei M, Chen J, Guo Y, Sun H. The computer-aided parallel external fixator for complex lower limb deformity correction. Int J Comput Assist Radiol Surg. 2017 Dec;12(12):2107-17. doi: 10.1007/s11548-017-1654-x
  12. Концевич ВГ. Твердотельное моделирование в Autodesk Inventor. Киев, Москва: Диа-СофтЮП: ДМК Пресс; 2008. 672 с. http://www.okindiansbc.org/articles/60337-koncevich-v.-tverdotelnoe-modelirovanie.html
  13. Jiménez-Delgado JJ, Paulano-Godino F, PulidoRam-Ramírez R, Jiménez-Pérez JR. Computer assisted preoperative planning of bone fracture reduction: Simulation techniques and new trends. Med Image Anal. 2016 May;30:30-45. doi: 10.1016/j.media.2015.12.005
  14. Willis A, Anderson DD, Thomas T, Brown T, Marsh JL. 3D reconstruction of highly fragmented bone fractures. Medical Imaging. 2007: Image Processing: art. 65121P. doi: 10.1117/12.708683
Адрес для корреспонденции:
76000, Украина,
Ивано-Франковская обл.,
г. Ивано-Франковск, ул. Галицкая, 2,
Ивано-Франковский национальный медицинский университет,
кафедра травматологии и ортопедии,
тел. моб.: +38050-960-59-23,
e-mail: vitaliy.ivf@ukr.net,
Гуцуляк Виталий Иванович
Cведения об авторах:
Гуцуляк Виталий Иванович, к.м.н., доцент, кафедра травматологии и ортопедии, Ивано-Франковский национальный медицинский университет, г. Ивано-Франковск, Украина.
https://orcid.org/0000-0003-1041-6424
Бородайкевич Роман Дмитриевич, к.м.н., главный врач, специализированный (специальный) санаторий «Горный воздух» МЗ Украины, г. Яремче, Украина.
https://orcid.org/0000-0003-2841-7572
Гуцуляк Андрей Иванович, д.м.н., доцент, кафедра хирургии № 1, Ивано-Франковский национальный медицинский университет, г. Ивано-Франковск, Украина.
https://orcid.org/0000-0002-3665-7798
Ковалишин Тарас Михайлович, к.м.н., доцент кафедры травматологии и ортопедии, Ивано-Франковский национальный медицинский университет, г. Ивано-Франковск, Украина.
https://orcid.org/0000-0003-2388-1149

ОБЗОРЫ

Ф.Ш. АХМЕТЗЯHОВ 1, 2, В.И. ЕГОРОВ 1, 2

ХРОHИЧЕСКИЙ ПРЕСАКРАЛЬHЫЙ СИHУС КАК ОСЛОЖHЕHИЕ ТОТАЛЬHОЙ МЕЗОРЕКТУМЭКТОМИИ ПРИ РАКЕ ПРЯМОЙ КИШКИ

Казанский государственный медицинский университет 1,
Республиканский онкологический диспансер 2, г. Казань,
Российская Федерация

Тотальная мезоректумэктомия является фактором риска развития и формирования патологических пресакральных синусов. В результате резекции прямой кишки с тотальной мезоректумэктомией в тазу образуется объемная полость, ограниченная костными структурами. При накоплении в ней жидкости, крови увеличивается риск инфицирования и образования пресакральных абсцессов. Если патологическая полость не заживает на протяжении 12 месяцев, такой синус считают хроническим. Хронический пресакральный синус образуется у 5-9,5% пациентов, которым проводилась тотальная мезоректумэктомия. Основными факторами развития являются неоадъювантная химиолучевая терапия, высокая интраоперационная кровопотеря, опухоли больших размеров. Диагностика заключается в проведении следующих инструментальных методов: ректоскопия, проктография, магнитно-резонансная томография органов малого таза. Основным методом лечения при небольших синусах является использование фибринового клея и системы EndoVac. Фибриновый клей механически закрывает дефект, стимулирует пролиферацию фибробластов и служит матриксом для синтеза коллагена, процессов заживления раны. Чаще всего фибриновый клей применяется как завершающий этап терапии системой EndoVac, при котором губка, соответствующая размерам дефекта, устанавливается в полость абсцесса и меняется через каждые 48-72 часа. Степень эффективности 66-100%. В случаях больших размеров синусов, дренирующихся через небольшой дефект в анастомозе, или неэффективности системы EndoVac, для создания адекватного дренирования целесообразно применение методики эндоскопической марсупиализации. Данная методика позволяет сохранить колоректальный анастомоз. Пациентам с симптоматическим пресакральным синусом, у которых реверсия стомы невозможна, рекомендуется выполнять чрессфинктерную проктэктомию с тампонадой полости большим сальником.

Ключевые слова: тотальная мезоректумэктомия, колоректальный анастомоз, несостоятельность анастомоза, передняя резекция прямой кишки, рак прямой кишки, х
с. 435-442 оригинального издания
Список литературы
  1. van Groningen JT, van Hagen P, Tollenaar RAEM, Tuynman JB, Marang-van de Mheen PJ, Doornebosch PG, Tanis PJ, de Graaf EJR. Evaluation of a completion total mesorectal excision in patients after local excision of rectal cancer: a word of caution. J Natl Compr Canc Netw. 2018 Jul;16(7):822-28. doi: 10.6004/jnccn.2018.7026
  2. Baik SH, Kim NK, Lim DR, Hur H, Min BS, Lee KY. Oncologic outcomes and perioperative clinicopathologic results after robot-assisted tumor-specific mesorectal excision for rectal cancer. Ann Surg Oncol. 2013 Aug;20(8):2625-32. doi: 10.1245/s10434-013-2895-8
  3. Lee L, de Lacy B, Gomez Ruiz M, Liberman AS, Albert MR, Monson JRT, Lacy A, Kim SH, Atallah SB. A multicenter matched comparison of transanal and robotic total mesorectal excision for mid and low-rectal adenocarcinoma. Ann Surg. 2018 Jun 18. doi: 10.1097/SLA.0000000000002862 [Epub ahead of print]
  4. Heald RJ, Husband EM, Ryall RD. The mesorectum in rectal cancer surgery–the clue to pelvic recurrence? Br J Surg. 1982 Oct;69(10):613-16. doi: 10.1002/bjs.1800691019
  5. Muratore A, Mellano A, Marsanic P, De Simone M. Transanal total mesorectal excision (taTME) for cancer located in the lower rectum: short- and mid-term results. Eur J Surg Oncol. 2015 Apr;41(4):478-83. doi: 10.1016/j.ejso.2015.01.009
  6. Zarnescu EC, (Vasiliu), Zarnescu NO, Costea R, Neagu S. Review of risk factors for anastomotic leakage in colorectal surgery. Chirurgia (Bucur). 2015 Jul-Aug;110(4):319-26. http://www.revistachirurgia.ro/pdfs/2015-4-319.pdf
  7. Liu L, Wang T, Zhang G, Dai R, Liang H, Tang L. Risk factors for early complications after laparoscopic total mesorectal excision for locally advanced rectal cancer: A single center experience. J Cancer Res Ther. 2016 Jan-Mar;12(1):350-54. doi: 10.4103/0973-1482.139273
  8. Tortorelli AP, Alfieri S, Sanchez AM, Rosa F, Papa V, Di Miceli D, Bellantone C, Doglietto GB. Anastomotic leakage after anterior resection for rectal cancer with mesorectal excision: incidence, risk factors, and management. Am Surg. 2015 Jan;81(1):41-47. http://www.ingentaconnect.com/contentone/sesc/tas/2015/00000081/00000001/art00028
  9. Whitlow CB, Opelka FG, Gathright JB Jr, Beck DE. Treatment of colorectal and ileoanal anastomotic sinuses. Dis Colon Rectum. 1997 Jul;40(7):760-63. https://link.springer.com/article/10.1007%2FBF02055427
  10. Enker WE, Merchant N, Cohen AM, Lanouette NM, Swallow C, Guillem J, Paty P, Minsky B, Weyrauch K, Quan SH. Safety and efficacy of low anterior resection for rectal cancer: 681 consecutive cases from a specialty service. Ann Surg. 1999 Oct;230(4):544-52; discussion 552-54. https://www.ncbi.nlm.nih.gov/pmc/articles/PMC1420903/
  11. McDermott FD, Heeney A, Kelly ME, Steele RJ, Carlson GL, Winter DC. Systematic review of preoperative, intraoperative and postoperative risk factors for colorectal anastomotic leaks. Br J Surg. 2015 Apr;102(5):462-79. doi: 10.1002/bjs.9697
  12. Kawada K, Takahashi R, Hida K, Sakai Y. Impact of transanal drainage tube on anastomotic leakage after laparoscopic low anterior resection. Int J Colorectal Dis. 2018 Mar;33(3):337-40. doi: 10.1007/s00384-017-2952-z
  13. Law WL, Chu KW. Anterior resection for rectal cancer with mesorectal excision: a prospective evaluation of 622 patients. Ann Surg. 2004 Aug;240(2):260-68. doi: 10.1097/01.sla.0000133185.23514.32
  14. Hoshino N, Hida K, Sakai Y, Osada S, Idani H, Sato T, Takii Y, Bando H, Shiomi A, Saito N. Nomogram for predicting anastomotic leakage after low anterior resection for rectal cancer. Int J Colorectal Dis. 2018 Apr;33(4):411-18. doi: 10.1007/s00384-018-2970-5
  15. Matsuda K, Yokoyama S, Hotta T, Watanabe T, Tamura K, Iwamoto H, Mizumoto Y, Yamaue H. Pelvic drain after laparoscopic low anterior resection for rectal cancer in patients with diverting stoma. Surg Laparosc Endosc Percutan Tech. 2018 Apr;28(2):82-85. doi: 10.1097/SLE.0000000000000517
  16. Brehant O, Hanes A, Fuks D, Sabbagh C, Blanpain S, Brazier F, Regimbeau JM. Stapled marsupialisation of chronic low rectal anastomotic sinuses. Int J Colorectal Dis. 2009 Oct;24(10):1233-37. doi: 10.1007/s00384-009-0780-5
  17. van Koperen PJ, van der Zaag ES, Omloo JM, Slors JF, Bemelman WA. The persisting presacral sinus after anastomotic leakage following anterior resection or restorative proctocolectomy. Colorectal Dis. 2011 Jan;13(1):26-29. doi: 10.1111/j.1463-1318.2010.02377.x
  18. Arumainayagam N, Chadwick M, Roe A. The fate of anastomotic sinuses after total mesorectal excision for rectal cancer. Colorectal Dis. 2009 Mar;11(3):288-90. doi: 10.1111/j.1463-1318.2008.01585.x
  19. Borstlap WAA, Westerduin E, Aukema TS, Bemelman WA, Tanis PJ. Anastomotic leakage and chronic presacral sinus formation after low anterior resection: results from a large cross-sectional study. Ann Surg. 2017 Nov;266(5):870-77. doi: 10.1097/SLA.0000000000002429
  20. Patsouras D, Schizas A, George ML. Novel application of anal fistula plug for the treatment of chronic anastomotic sinus. Int J Colorectal Dis. 2015 Dec;30(12):1735-36. doi: 10.1007/s00384-015-2142-9
  21. Sloothaak DA, Buskens CJ, Bemelman WA, Tanis PJ. Treatment of chronic presacral sinus after low anterior resection. Colorectal Dis. 2013 Jun;15(6):727-32. doi: 10.1111/codi.12094
  22. Musters GD, Borstlap WA, Bemelman WA, Buskens CJ, Tanis PJ. Intersphincteric completion proctectomy with omentoplasty for chronic presacral sinus after low anterior resection for rectal cancer. Colorectal Dis. 2016 Feb;18(2):147-54. doi: 10.1111/codi.13086
  23. Ming LI, Wei CUI, Teng MA, Weijun KOU, Liang ZHOU, Mingwen KOU, Wenbo ZHANG. Value of CRP and MMP-9 detection for diagnosis of anastomotic leakage after rectal cancer anterior resection. Chongqing Medicine. 2017;46(25):3506-8,3511.
  24. Daams F, Wu Z, Lahaye MJ, Jeekel J, Lange JF. Prediction and diagnosis of colorectal anastomotic leakage: a systematic review of literature. World J Gastrointest Surg. 2014 Feb 27;6(2):14-26. doi: 10.4240/wjgs.v6.i2.14
  25. Gessler B, Eriksson O. Angenete E. Diagnosis, treatment, and consequences of anastomotic leakage in colorectal surgery. Int J Colorectal Dis. 2017; 32(4):549-56. doi: 10.1007/s00384-016-2744-x
  26. Vermeer TA, Orsini RG, Daams F, Nieuwenhuijzen GA, Rutten HJ. Anastomotic leakage and presacral abscess formation after locally advanced rectal cancer surgery: Incidence, risk factors and treatment. Eur J Surg Oncol. 2014 Nov;40(11):1502-9. doi: 10.1016/j.ejso.2014.03.019
  27. Veenhof AA, Brosens R, Engel AF, van der Peet DL, Cuesta MA. Risk factors and management of presacral abscess following total mesorectal excision for rectal cancer. Dig Surg. 2009;26(4):317-21. doi: 10.1159/000231882
  28. Weidenhagen R, Gruetzner KU, Wiecken T, Spelsberg F, Jauch KW. Endoscopic vacuum-assisted closure of anastomotic leakage following anterior resection of the rectum: a new method. Surg Endosc. 2008 Aug;22(8):1818-25. doi: 10.1007/s00464-007-9706-x
  29. D’Hondt M, De Hondt G, Malisse P, Vanden Boer J, Knol J. Chronic pelvic abscedation after completion proctectomy in an irradiated pelvis: another indication for ENDO-sponge treatment? Tech Coloproctol. 2009 Dec;13(4):311-14. doi: 10.1007/s10151-009-0505-3
  30. Prasad LM, deSouza AL, Blumetti J, Marecik SJ, Park JJ. Endoscopic-assisted closure of a chronic colocutaneous fistula. Gastrointest Endosc. 2010 Sep;72(3):662-64. doi: 10.1016/j.gie.2009.12.028
  31. Nagell CF, Holte K. Treatment of anastomotic leakage after rectal resection with transrectal vacuum-assisted drainage (VAC). A method for rapid control of pelvic sepsis and healing. Int J Colorectal Dis. 2006 Oct;21(7):657-60. doi: 10.1007/s00384-005-0083-4
  32. Riss S, Stift A, Meier M, Haiden E, Grünberger T, Bergmann M. Endo-sponge assisted treatment of anastomotic leakage following colorectal surgery. Colorectal Dis. 2010 Jul;12(7 Online):e104-8. doi: 10.1111/j.1463-1318.2009.01885.x
  33. Swain BT, Ellis CN. Fibrin glue treatment of low rectal and pouch-anal anastomotic sinuses. Dis Colon Rectum. 2004 Feb;47(2):253-55. doi: 10.1007/s10350-003-0040-7
  34. Abild N, Bulut O, Nielsen CB. Endoscopic stapled marsupialisation of chronic presacral sinus following low anterior resection: a simple option in selected cases. Scand J Surg. 2012;101(4):307-10. doi: 10.1177/145749691210100416
  35. Hammond TM, Grahn MF, Lunniss PJ. Fibrin glue in the management of anal fistulae. Colorectal Dis. 2004 Sep;6(5):308-19. doi: 10.1111/j.1463-1318.2004.00676.x
  36. López V, Abrisqueta J, LujÁn J, Serrano A, Parrilla P. Endoscopic treatment with biologic glue of chronic presacral sinus after low anterior resection. Cirugía Española. 2015 Mar;93(3):133-10. doi: 10.1016/j.cireng.2014.09.004
  37. Lippert E, Klebl FH, Schweller F, Ott C, Gelbmann CM, Schölmerich J, Endlicher E, Kullmann F. Fibrin glue in the endoscopic treatment of fistulae and anastomotic leakages of the gastrointestinal tract. Int J Colorectal Dis. 2011 Mar;26(3):303-11. doi: 10.1007/s00384-010-1104-5
  38. Mees ST, Palmes D, Mennigen R, Senninger N, Haier J, Bruewer M. Endo-vacuum assisted closure treatment for rectal anastomotic insufficiency. Dis Colon Rectum. 2008 Apr;51(4):404-10. doi: 10.1007/s10350-007-9141-z
  39. Verlaan T, Bartels SA, van Berge Henegouwen MI, Tanis PJ, Fockens P, Bemelman WA. Early, minimally invasive closure of anastomotic leaks: a new concept. Colorectal Dis. 2011 Nov;13 Suppl 7:18-22. doi: 10.1111/j.1463-1318.2011.02775.x
  40. Arezzo A, Verra M, Passera R, Bullano A, Rapetti L, Morino M. Long-term efficacy of endoscopic vacuum therapy for the treatment of colorectal anastomotic leaks. Dig Liver Dis. 2015 Apr;47(4):342-45. doi: 10.1016/j.dld.2014.12.003
  41. Strangio G, Zullo A, Ferrara EC, Anderloni A, Carlino A, Jovani M, Ciscato C, Hassan C, Repici A. Endo-sponge therapy for management of anastomotic leakages after colorectal surgery: a case series and review of literature. Dig Liver Dis. 2015 Jun;47(6):465-69. doi: 10.1016/j.dld.2015.02.007
  42. Goldsmith HS, Griffith AL, Kupferman A, Catsimpoolas N. Lipid angiogenic factor from omentum. JAMA. 1984 Oct 19;252(15):2034-36. doi: 10.1001/jama.1984.03350150034017
  43. Konturek SJ, Brzozowski T, Majka I, Pawlik W, Stachura J. Omentum and basic fibroblast growth factor in healing of chronic gastric ulcerations in rats. Dig Dis Sci. 1994 May;39(5):1064-71. doi: 10.1007/BF02087559
  44. Walker FC, Rogers AW. The greater omentum as a site of antibody synthesis. Br J Exp Pathol. 1961 Jun; 42(3):222-31. https://www.ncbi.nlm.nih.gov/pmc/articles/PMC2082470/
  45. Gultekin FA, Bakkal BH, Tayfun S, Babuccu O, Comertet M. Chronic pelvic abscedation after completion proctectomy in a rectal stump insufficiency; treatment with gracilis muscle flap following vacuum assisted closure therapy. Ann Coloproctol. 2013 Aug;29(4):172-76. doi: 10.3393/ac.2013.29.4.172
Адрес для корреспонденции:
420000, Российская Федерация,
г. Казань, ул. Батурина, д. 49,
Казанский государственный
медицинский университет,
кафедра онкологии, лучевой диагностики
и лучевой терапии,
тел.: +7 9274299671,
e-mail: drvasiliy21@gmail.com,
Егоров Василий Иванович
Cведения об авторах:
Ахметзянов Фоат Шайхутдинович, д.м.н., профессор, заведующий кафедрой онкологии, лучевой диагностики и лучевой терапии, Казанский государственный медицинский университет, руководитель клиники хирургии, Республиканский клинический онкологический диспансер, г. Казань, Российская Федерация.
https://orcid.org/0000-0002-4516-1997
Егоров Василий Иванович, к.м.н., ассистент кафедры онкологии, лучевой диагностики и лучевой терапии, Казанский государственный медицинский университет, врач-онколог, Республиканский клинический онкологический диспансер, г. Казань, Российская Федерация.
https://orcid.org/0000-0002-6603-1390

М.В. ЯКИМОВА, Е.Н. ЖИЛЯЕВА, А.В. МЕДВЕДЬ, Л.В. НАУМЕHКО, Е.И. СУБОЧ

МОЛЕКУЛЯРHЫЕ МАРКЕРЫ УВЕАЛЬHОЙ МЕЛАHОМЫ

Республиканский научно-практический центр онкологии и медицинской радиологии
им. Н.Н. Александрова, г. Минск,
Республика Беларусь

Приведенный обзор литературы посвящен молекулярным аспектам увеальной меланомы.
Несмотря на относительную редкость патологии, увеальная меланома характеризуется неблагоприятным прогнозом, связанным с высокой вероятностью прогрессирования опухолевого процесса. Согласно современным представлениям, наличия клинических и патоморфологических критериев недостаточно для проведения эффективной дифференциальной диагностики заболевания, стратификации риска метастазирования, оценки прогноза течения заболевания и ответа опухоли на терапию. Молекулярно-генетическое исследование является важным дополнением к используемым в настоящее время методам.
Для увеальной меланомы характерен ряд молекулярно-биологических особенностей, которые могут быть использованы в качестве диагностических критериев для выявления данной опухоли, а также для оценки ее метастатического потенциала. В статье отражено современное представление о преимуществах и ограничениях применения цитогенетических маркеров, экспрессионного профилирования генов и драйверных мутаций в качестве прогностических факторов при увеальной меланоме. При этом, несмотря на значительное количество работ, отсутствует однозначность в понимании молекулярных механизмов канцерогенеза при увеальной меланоме и особенно при прогрессировании заболевания. На сегодняшний день не выработаны четкие критерии прогнозирования течения неопластического процесса, а также не разработан алгоритм раннего выявления метастатической болезни, что обуславливает актуальность дальнейших исследований.

Ключевые слова: увеальная меланома, прогностические маркеры, цитогенетические аберрации, профилирование экспрессии генов, мутации
с. 443-452 оригинального издания
Список литературы
  1. Damato B. Progress in the management of patients with uveal melanoma. The 2012 Ashton Lecture. Eye (Lond). 2012 Sep;26(9):1157-72. doi: 10.1038/eye.2012.126
  2. Kowal J, Strzałka A, Markiewicz A, Romanowska-Dixon B, Bogdali A. Bilateral choroidal melanoma - case analysis and literature review. Klin Oczna. 2015;117(2):92-95. https://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed/26638545
  3. Shields CL, Kaliki S, Arepalli S, Atalay HT, Manjandavida FP, Pieretti G, Shields JA. Uveal melanoma in children and teenagers. Saudi J Ophthalmol. 2013 Jul;27(3):197-201. doi: 10.1016/j.sjopt.2013.06.013
  4. Andreoli MT, Mieler WF, Leiderman YI. Epidemiological trends in uveal melanoma. Br J Ophthalmol. 2015 Nov;99(11):1550-53. doi: 10.1136/bjophthalmol-2015-306810
  5. Virgili G, Gatta G, Ciccolallo L, Capocaccia R, Biggeri A, Crocetti E, Lutz JM, Paci E. Incidence of uveal melanoma in Europe. Ophthalmology. 2007 Dec;114(12):2309-15. doi: 10.1016/j.ophtha.2007.01.032
  6. Buzzacco DM, Abdel-Rahman MH, Park S, Davidorf F, Olencki T, Cebulla CM. Long-term survivors with metastatic uveal melanoma. Open Ophthalmol J. 2012 Jun;6:49-53. doi: 10.2174/1874364101206010049
  7. Brovkina AF, Stoyukhina AS, Chesalin IP. Size-based classification of choroidal melanoma and its role in treatment decision-making. Vestn Oftalmol. 2016 Mar-Apr;132(2):4-7. doi: 10.17116/oftalma201613224-7. [Article in Russian; Abstract available in Russian from the publisher]
  8. Shields CL, Kaliki S, Furuta M, Fulco E, Alarcon C, Shields JA. American Joint Committee on Cancer classification of posterior uveal melanoma (tumor size category) predicts prognosis in 7,731 patients. Ophthalmology. 2013 Oct; 120(10):2066-71. doi: 10.1016/j.ophtha.2013.03.012
  9. Shields CL, Kaliki S, Furuta M, Fulco E, Alarcon C, Shields JA. American Joint Committee on Cancer classification of uveal melanoma (anatomic stage) predicts prognosis in 7,731 patients: the 2013 Zimmerman Lecture. Ophthalmology. 2015 Jun;122(6):1180-86. doi: 10.1016/j.ophtha.2015.01.026
  10. Damato B, Eleuteri A, Taktak AF, Coupland SE. Estimating prognosis for survival after treatment of choroidal melanoma. Prog Retin Eye Res. 2011 Sep;30(5):285-95. doi: 10.1016/j.preteyeres.2011.05.003
  11. Hsueh EC, Essner R, Foshag LJ, Ye X, Wang HJ, Morton DL. Prolonged survival after complete resection of metastases from intraocular melanoma. Cancer. 2004 Jan 1;100(1):122-29. doi: 10.1002/cncr.11872
  12. Rietschel P, Panageas KS, Hanlon C, Patel A, Abramson DH, Chapman PB. Variates of survival in metastatic uveal melanoma. J Clin Oncol. 2005 Nov 1;23(31):8076-80. doi: 10.1200/JCO.2005.02.6534
  13. Mallikarjuna K, Pushparaj V, Biswas J, Krishnakumar S. Expression of epidermal growth factor receptor, ezrin, hepatocyte growth factor, and c-Met in uveal melanoma: an immunohistochemical study. Curr Eye Res. 2007 Mar;32(3):281-90. doi: 10.1080/02713680601161220
  14. Carvajal RD, Schwartz GK, Tezel T, Marr B, Francis JH, Nathan PD. Metastatic disease from uveal melanoma: treatment options and future prospects. Br J Ophthalmol. 2017 Jan;101(1):38-44. doi: 10.1136/bjophthalmol-2016-309034
  15. Coupland SE, Lake SL, Zeschnigk M, Damato BE. Molecular pathology of uveal melanoma. Eye (Lond). 2013 Feb;27(2):230-42. doi: 10.1038/eye.2012.255
  16. van Engen-van Grunsven AC, Baar MP, Pfundt R, Rijntjes J, Küsters-Vandevelde HV, Delbecq AL, Keunen JE, Klevering JB, Wesseling P, Blokx WA, Groenen PJ. Whole-genome copy-number analysis identifies new leads for chromosomal aberrations involved in the oncogenesis and metastastic behavior of uveal melanomas. Melanoma Res. 2015 Jun;25(3):200-9. doi: 10.1097/CMR.0000000000000152
  17. Metz CH, Lohmann D, Zeschnigk M, Bornfeld N. Uveal melanoma: current insights into clinical relevance of genetic testing. Klin Monbl Augenheilkd. 2013 Jul;230(7):686-91. doi: 10.1055/s-0033-1350628. [Article in German]
  18. Ewens KG, Kanetsky PA, Richards-Yutz J, Al-Dahmash S, De Luca MC, Bianciotto CG, Shields CL, Ganguly A. Genomic profile of 320 uveal melanoma cases: chromosome 8p-loss and metastatic outcome. Invest Ophthalmol Vis Sci. 2013 Aug;54(8):5721-29. doi: 10.1167/iovs.13-12195
  19. Harbour JW, Chen R. The decisiondx-UM gene expression profile test provides risk stratification and individualized patient care in uveal melanoma. PLoS Curr. 2013 Apr 9;5. pii: ecurrents.eogt.af8ba80fc776c8f1ce8f5dc485d4a618. doi: 10.1371/currents.eogt.af8ba80fc776c8f1ce8f5dc485d4a618
  20. Plasseraud KM, Wilkinson JK, Oelschlager KM, Poteet TM, Cook RW, Stone JF, Monzon FA. Gene expression profiling in uveal melanoma: technical reliability and correlation of molecular class with pathologic characteristics. Diagn Pathol. 2017 Aug;12(1):59. doi: 10.1186/s13000-017-0650-3
  21. Aberg TM Jr, Cook RW, Oelschlager K, Maetzold D, Rao PK, Mason JO 3rd. Current clinical practice: differential management of uveal melanoma in the era of molecular tumor analyses. Clin Ophthalmol. 2014 Dec 3;8:2449-60. doi: 10.2147/OPTH.S70839. eCollection 2014.
  22. Walter SD, Chao DL, Feuer W, Schiffman J, Char DH, Harbour JW. Prognostic implications of tumor diameter in association with gene expression profile for uveal melanoma. JAMA Ophthalmol. 2016 Jul;134(7):734-40. doi: 10.1001/jamaophthalmol.2016.0913
  23. Onken MD, Worley LA, Char DH, Augsburger JJ, Correa ZM, Nudleman E, Aaberg TM Jr, Altaweel MM, Bardenstein DS, Finger PT, Gallie BL, Harocopos GJ, Hovland PG, McGowan HD, Milman T, Mruthyunjaya P, Simpson ER, Smith ME, Wilson DJ, Wirostko WJ, Harbour JW. Collaborative ocular oncology group report number 1: prospective validation of a multi-gene prognostic assay in uveal melanoma. Ophthalmology. 2012 Aug;119(8):1596-603. doi: 10.1016/j.ophtha. 2012.02.017
  24. Harbour JW. A prognostic test to predict the risk of metastasis in uveal melanoma based on a 15-gene expression profile. Methods Mol Biol. 2014;1102:427-40. doi: 10.1007/978-1-62703-727-3_22
  25. Onken MD, Worley LA, Ehlers JP, Harbour JW. Gene expression profiling in uveal melanoma reveals two molecular classes and predicts metastatic death. Cancer Res. 2004 Oct;64(20):7205-9. doi: 10.1158/0008-5472.CAN-04-1750
  26. Onken MD, Worley LA, Tuscan MD, Harbour JW. An accurate, clinically feasible multi-gene expression assay for predicting metastasis in uveal melanoma. J Mol Diagn. 2010 Jul;12(4):461-68. doi: 10.2353/jmoldx.2010.090220
  27. Gill HS, Char DH. Uveal melanoma prognostication: from lesion size and cell type to molecular class. Can J Ophthalmol. 2012 Jun;47(3):246-53. doi: 10.1016/j.jcjo.2012.03.038
  28. Field MG, Harbour JW. Recent developments in prognostic and predictive testing in uveal melanoma. Curr Opin Ophthalmol. 2014 May;25(3):234-39. doi: 10.1097/ICU.0000000000000051
  29. Amaro A, Gangemi R, Piaggio F, Angelini G, Barisione G, Ferrini S, Pfeffer U. The biology of uveal melanoma. Cancer Metastasis Rev. 2017 Mar;36(1):109-40. doi: 10.1007/s10555-017-9663-3
  30. Van Raamsdonk CD, Griewank KG, Crosby MB, Garrido MC, Vemula S, Wiesner T, Obenauf AC, Wackernagel W, Green G, Bouvier N, Sozen MM, Baimukanova G, Roy R, Heguy A, Dolgalev I, Khanin R, Busam K, Speicher MR, O’Brien J, Bastian BC. Mutations in GNA11 in uveal melanoma. N Engl J Med. 2010 Dec;363(23):2191-99. doi: 10.1056/NEJMoa1000584
  31. Van Raamsdonk CD, Bezrookove V, Green G, Bauer J, Gaugler L, O’Brien JM, Simpson EM, Barsh GS, Bastian BC. Frequent somatic mutations of GNAQ in uveal melanoma and blue naevi. Nature. 2009 Jan;457(7229):599-602. doi: 10.1038/nature07586
  32. Decatur CL, Ong E, Garg N, Anbunathan H, Bowcock AM, Field MG, Harbour JW. Driver mutations in uveal melanoma: associations with gene expression profile and patient outcomes. JAMA Ophthalmol. 2016 Jul;134(7):728-33. doi: 10.1001/jamaophthalmol.2016.0903
  33. Koopmans AE, Vaarwater J, Paridaens D, Naus NC, Kilic E, de Klein A. Rotterdam ocular melanoma study group. Patient survival in uveal melanoma is not affected by oncogenic mutations in GNAQ and GNA11. Br J Cancer. 2013 Jul; 109(2):493-96. doi: 10.1038/bjc.2013.299
  34. Yu FX, Luo J, Mo JS, Liu G, Kim YC, Meng Z, Zhao L, Peyman G, Ouyang H, Jiang W, Zhao J, Chen X, Zhang L, Wang CY, Bastian BC, Zhang K, Guan KL. Mutant Gq/11 promote uveal melanoma tumorigenesis by activating YAP. Cancer Cell. 2014 Jun;25(6):822-30. doi: 10.1016/j.ccr.2014.04.017
  35. Moroishi T, Hansen CG, Guan KL. The emerging roles of YAP and TAZ in cancer. Nat Rev Cancer. 2015 Feb;15(2):73-79. doi: 10.1038/nrc3876
  36. Sorrentino G, Ruggeri N, Specchia V, Cordenonsi M, Mano M, Dupont S, Manfrin A, Ingallina E, Sommaggio R, Piazza S, Rosato A, Piccolo S, Del Sal G. Metabolic control of YAP and TAZ by the mevalonate pathway. Nature Cell Biology. 2014 Apr;16(4):357-66. doi: 10.1038/ncb2936
  37. Johansson P, Aoude LG, Wadt K, Glasson WJ, Warrier SK, Hewitt AW, Kiilgaard JF, Heegaard S, Isaacs T, Franchina M, Ingvar C, Vermeulen T, Whitehead KJ, Schmidt CW, Palmer JM, Symmons J, Gerdes AM, Jönsson G, Hayward NK. Deep sequencing of uveal melanoma identifies a recurrent mutation in PLCB4. Oncotarget. 2016 Jan;7(4):4624-31. doi: 10.18632/oncotarget.6614
  38. Moore AR, Ceraudo E, Sher JJ, Guan Y, Shoushtari AN, Chang MT, Zhang JQ, Walczak EG, Kazmi MA, Taylor BS, Huber T, Chi P, Sakmar TP, Chen Y. Recurrent activating mutations of G-protein-coupled receptor CYSLTR2 in uveal melanoma. Nat Genet. 2016 Jun;48(6):675-80. doi: 10.1038/ng.3549
  39. Harbour JW, Onken MD, Roberson ED, Duan S, Cao L, Worley LA, Council ML, Matatall KA, Helms C, Bowcock AM. Frequent mutation of BAP1 in metastasizing uveal melanomas. Science. 2010 Dec;330(6009):1410-13. doi: 10.1126/science.1194472
  40. Helgadottir H, Höiom V. The genetics of uveal melanoma: current insights. Appl Clin Genet. 2016 Sep;9:147-55. doi: 10.2147/TACG.S69210
  41. Koopmans AE, Verdijk RM, Brouwer RW, van den Bosch TP, van den Berg MM, Vaarwater J, Kockx CE, Paridaens D, Naus NC, Nellist M, van IJcken WF, KiliÇ E, de Klein A. Clinical significance of immunohistochemistry for detection of BAP1 mutations in uveal melanoma. Mod Pathol. 2014 Oct;27(10):1321-30. doi: 10.1038/modpathol.2014.43
  42. van de Nes JA, Nelles J, Kreis S, Metz CH, Hager T, Lohmann DR, Zeschnigk M. Comparing the prognostic value of BAP1 mutation pattern, chromosome 3 status, and BAP1 immunohistochemistry in uveal melanoma. Am J Surg Pathol. 2016 Jun;40(6):796-805. doi: 10.1097/PAS.0000000000000645
  43. Staby KM, Gravdal K, Mørk SJ, Heegaard S, Vintermyr OK, Krohn J. Prognostic impact of chromosomal aberrations and GNAQ, GNA11 and BAP1 mutations in uveal melanoma. Acta Ophthalmol. 2018 Feb;96(1):31-38. doi: 10.1111/aos.13452
  44. Masoomian B, Shields JA, Shields CL. Overview of BAP1 cancer predisposition syndrome and the relationship to uveal melanoma. J Curr Ophthalmol. 2018 Jun;30(2):102-109. doi: 10.1016/j.joco.2018.02.005
  45. Field MG, Decatur CL, Kurtenbach S, Gezgin G, van der Velden PA, Jager MJ, Kozak KN, Harbour JW. PRAME as an independent biomarker for metastasis in uveal melanoma. Clin Cancer Res. 2016 Mar;22(5):1234-42. doi: 10.1158/1078-0432.CCR-15-2071
  46. Harbour JW, Roberson ED, Anbunathan H, Onken MD, Worley LA, Bowcock AM. Recurrent mutations at codon 625 of the splicing factor SF3B1 in uveal melanoma. Nat Genet. 2013 Feb;45(2):133-35. doi: 10.1038/ng.2523
  47. Yavuzyigitoglu S, Koopmans AE, Verdijk RM, Vaarwater J, Eussen B, van Bodegom A, Paridaens D, KiliÇ E, de Klein A. Uveal melanomas with SF3B1 mutations: a distinct subclass associated with late-onset metastases. Ophthalmology. 2016 May;123(5):1118-28. doi: 10.1016/j.ophtha.2016.01.023
  48. Ewens KG, Kanetsky PA, Richards-Yutz J, Purrazzella J, Shields CL, Ganguly T, Ganguly A. Chromosome 3 status combined with BAP1 and EIF1AX mutation profiles are associated with metastasis in uveal melanoma. Invest Ophthalmol Vis Sci. 2014 Jun 26;55(8):5160-67. doi: 10.1167/iovs.14-14550
  49. Martin M, Maßhöfer L, Temming P, Rahmann S, Metz C, Bornfeld N, van de Nes J, Klein-Hitpass L, Hinnebusch AG, Horsthemke B, Lohmann DR, Zeschnigk M. Exome sequencing identifies recurrent somatic mutations in EIF1AX and SF3B1 in uveal melanoma with disomy 3. Nat Genet. 2013 Aug;45(8):933-36. doi: 10.1038/ng.2674
Адрес для корреспонденции:
223040, Республика Беларусь,
агр. Лесной,
ГУ «Республиканский научно-практический
центр онкологии и медицинской радиологии
им. Н.Н. Александрова»,
Республиканская молекулярно-генетическая
лаборатория канцерогенеза,
онкологическое отделение (генетики),
тел.: +375 (29) 667 93 34,
e-mail: helen_suboch@mail.ru,
Субоч Елена Ивановна
Cведения об авторах:
Якимова Мария Вячеславовна, врач лабораторной диагностики онкологического отделения (генетики) Республиканской молекулярно-генетической лаборатории канцерогенеза Государственного учреждения «Республиканский научно-практический центр онкологии и медицинской радиологии им. Н.Н. Александрова», г. Минск, Республика Беларусь.
http://orcid.org/0000-0002-5522-3223
Жиляева Екатерина Павловна, врач-офтальмолог консультативно-поликлинического отделения Государственного учреждения «Республиканский научно-практический центр онкологии и медицинской радиологии им. Н.Н. Александрова», г. Минск, Республика Беларусь.
https://orcid.org/0000-0003-2964-6895
Медведь Антонина Викторовна, врач лабораторной диагностики онкологического отделения (клеточных технологий) Республиканской молекулярно-генетической лаборатории канцерогенеза Государственного учреждения «Республиканский научно-практический центр онкологии и медицинской радиологии им. Н.Н. Александрова», г. Минск, Республика Беларусь.
http://orcid.org/0000-0002-5687-1775
Науменко Лариса Владимировна, к.м.н., врач-офтальмолог отделения опухолей головы и шеи Государственного учреждения «Республиканский научно-практический центр онкологии и медицинской радиологии им. Н.Н. Александрова», г. Минск, Республика Беларусь.
http://orcid.org/0000-0002-1875-9176
Субоч Елена Ивановна, к.м.н., врач лабораторной диагностики (заведующий) онкологического отделения (генетики) Республиканской молекулярно-генетической лаборатории канцерогенеза Государственного учреждения «Республиканский научно-практический центр онкологии и медицинской радиологии им. Н.Н. Александрова», г. Минск, Республика Беларусь.
http://orcid.org/0000-0002-3939-6597

В.П. ЗЕМЛЯHОЙ 1, Б.В. СИГУА 1, С.В. ПЕТРОВ 2, В.А. ИГHАТЕHКО 2, П.А. КОТКОВ 2

ХИРУРГИЧЕСКИЕ ПОДХОДЫ К ЛЕЧЕHИЮ ПАЦИЕHТОВ С ТРЕТИЧHЫМ ПЕРИТОHИТОМ

Северо-западный государственный медицинский университет им. И.И. Мечникова 1,
Городская больница Святой преподобномученицы Елизаветы 2, г. Санкт-Петербург,
Российская Федерация

Проблемам лечения третичного перитонита посвящено большое количество научных работ, затрагивающих самые разные аспекты этого заболевания. Анализ литературы демонстрирует тенденцию к росту частоты персистирующих перитонитов среди пациентов хирургических стационаров и отсутствие единых подходов к его лечению. Диагностические критерии третичного перитонита крайне неспецифичны, что затрудняет построение эффективной лечебной программы. В данной статье основное внимание уделено вопросам адекватной санации брюшной полости как одному из основных лечебных компонентов. Применение плановых и релапаротомий «по требованию» внедрено в клиническую практику давно, однако четких показаний к применению конкретной оперативной тактики в доступной литературе обнаружено не было. Дана сравнительная оценка различным способам ведения брюшной полости (открытому, закрытому, полуоткрытому, полузакрытому). Рассмотрены основные пути минимизации операционной травмы, неизбежно сопутствующей многократным хирургическим вмешательствам и приводящей к развитию осложнений со стороны органов брюшной полости и передней брюшной стенки. Проблема третичного перитонита, безусловно, далека от своего окончательного решения и дальнейший научный поиск, направленный на совершенствование хирургических подходов, должен способствовать улучшению ближайших результатов лечения.

Ключевые слова: третичный перитонит, санация, брюшная полость
с. 453-460 оригинального издания
Список литературы
  1. Sartelli M, Viale P, Koike K, Pea F, Tumietto F, van Goor H, Guercioni G, Nespoli A, Tranà C, Catena F, Ansaloni L, Leppaniemi A, Biffl W, Moore FA, Poggetti R, Pinna AD, Moore EE, WSES consensus conference: Guidelines for first-line management of intra-abdominal infections. World J Emerg Surg. 2011;6:2. Published online 2011 Jan 13. doi: 10.1186/1749-7922-6-2
  2. Budamala S, Penugonda A, Prakash G, Ramaniah NV, Muralikrishna K, Gopikrishna B. Evaluation of various prognostic factors in perforative peritonitis management. J Evid Based Healthc (JEBH). 2015 Sep;2(38):6027-35. doi: 10.18410/jebmh/2015/831
  3. Ballus J, Lopez-Delgado JC, Sabater-Riera J, Perez-Fernandez XL, Betbese AJ, Roncal JA. Factors Associated with the Development of Tertiary Peritonitis in Critically Ill Patients. Surg Infect (Larchmt). 2017 Jul;18(5):588-95. doi: 10.1089/sur.2016.018
  4. Nathens AB, Rotstein OD, Marshall JC. Tertiary peritonitis: clinical features of a complex nosocomial infection. World J Surg. 1998 Feb;22(2):158-63. doi: 10.1007/s002689900364
  5. De Waele JJ. Abdominal Sepsis. Curr Infect Dis Rep. 2016 Aug;18(8):23. doi: 10.1007/s11908-016-0531-z
  6. Tolonen M, Mentula P, Sallinen V, Rasilainen S, Bäcklund M, Leppäniemi A. Open abdomen with vacuum-assisted wound closure and mesh-mediated fascial traction in patients with complicated diffuse secondary peritonitis: A single-center 8-year experience. J Trauma Acute Care Surg. 2017 Jun;82(6):1100-05. doi: 10.1097/TA.0000000000001452
  7. Шляпников СА, Насер ИР, Батыршин ИМ. Третичный перитонит и антибактериальная терапия: пути решения (Аналитический обзор). Клин и Эксперим Хирургия. Журн им акад БВ Петровского. 2013;(1):47-53. https://cyberleninka.ru/article/v/tretichnyy-peritonit-i-antibakterialnaya-terapiya-puti-resheniya-analiticheskiy-obzor
  8. Stawicki SP, Brooks A, Bilski T, Scaff D, Gupta R, Schwab CW, Gracias VH. The concept of damage control: extending the paradigm to emergency general surgery. Injury. 2008 Jan;39(1):93-101. doi: 10.1016/j.injury.2007.06.011
  9. Жариков АН, Лубянский ВГ, Алиев АР. Хирургические технологии открытого ведения брюшной полости у больных послеоперационным перитонитом. Бюл Мед Науки. 2018;(2):76-80. https://bmn.asmu.ru/wp-content/uploads/2018/10/%E2%84%962102018.pdf
  10. Schein M. Surgical management of intra-abdominal infection: is there any evidence? Langenbecks Arch Surg. 2002 Apr;387(1):1-7. doi: 10.1007/s00423-002-0276-z
  11. Rakić M, Popović D, Rakić M, Druzijanić N, Lojpur M, Hall BA, Williams BA, Sprung J. Comparison of on-demand vs planned relaparotomy for treatment of severe intra-abdominal infections. Croat Med J. 2005 Dec;46(6):957-63. http://www.cmj.hr/2005/46/6/16342350.pdf
  12. Маскин СС, Карсанов АМ, Дербенцева ТВ, Климович ИН, Павлов АВ, Матюхин ВВ, Ерофицкая ВВ. Основы дифференцированного подхода к лечению перитонита толстокишечного генеза. Вестн Хирург Гастроэнтерологии. 2017;(1):17-23. https://elibrary.ru/item.asp?id=29842769
  13. Авакимян ВА, Карипиди ГК, Авакимян СВ, Алуханян ОА, Потягайло ЕГ, Марченко НВ, Дидигов МТ, Бабенко ЕС. Программированная лапаротомия в лечении разлитого гнойного перитонита. Кубан Науч Мед Вестн. 2017;24(6):12-16. doi: 10.25207/1608-6228-2017-24-6-12-16
  14. Суковатых БС, Блинков ЮЮ. Новые способы лечения распространенного перитонита. Вестн Эксперим и Клин Хирургии. 2014;(2):165-76. https://vestnik-surgery.com/index.php/journal/article/download/100/71
  15. Малков ИС, Филиппов ВА, Коробков ВН, Тагиров МР. Распространенный перитонит: эволюция методов хирургического лечения. Практ Медицина. 2017;(6):46-49. https://www.yumpu.com/xx/embed/view/OnuWIhG1Lt3QmKEk
  16. Цхай ВФ, Мерзликин НВ, Сорокин РВ, Барабаш ВИ, Хлебникова ЮА. Релапаротомия и лапаростомия в лечении ранних послеоперационных осложнений. Хирургия. Журн им НИ Пирогова. 2011;(6):27-31. https://www.mediasphera.ru/issues/khirurgiya-zhurnal-im-n-i-pirogova/2011/6/030023-1207201165
  17. van Ruler O, Mahler CW, Boer KR, Reuland EA, Gooszen HG, Opmeer BC, de Graaf PW, Lamme B, Gerhards MF, Steller EP, van Till JW, de Borgie CJ, Gouma DJ, Reitsma JB, Boermeester MA. Comparison of on-demand vs planned relaparotomy strategy in patients with severe peritonitis: a randomized trial. JAMA. 2007 Aug 22;298(8):865-72. doi: 10.1001/jama.298.8.865
  18. Zügel N, Siebeck M, Geissler B, Lichtwark-Aschoff M, Gippner-Steppert C, Witte J, Jochum M. Circulating mediators and organ function in patients undergoing planned relaparotomy vs conventional surgical therapy in severe secondary peritonitis. Arch Surg. 2002 May;137(5):590-99. doi: 10.1001/archsurg.137.5.590
  19. Lamme B, Boermeester MA, Belt EJ, van Till JW, Gouma DJ, Obertop H. Mortality and morbidity of planned relaparotomy versus relaparotomy on demand for secondary peritonitis. Br J Surg. 2004 Aug;91(8):1046-54. doi: 10.1002/bjs.4517
  20. Atema JJ, Ram K, Schultz MJ, Boermeester MA. External validation of a decision tool to guide post-operative management of patients with secondary peritonitis. Surg Infect (Larchmt). 2017 Feb/Mar;18(2):189-95. doi: 10.1089/sur.2016.017
  21. van Ruler O, Kiewiet JJ, Boer KR, Lamme B, Gouma DJ, Boermeester MA, Reitsma JB. Failure of available scoring systems to predict ongoing infection in patients with abdominal sepsis after their initial emergency laparotomy. BMC Surg. 2011 Dec 23;11:38. doi: 10.1186/1471-2482-11-38
  22. Novotny AR, Emmanuel K, Hueser N, Knebel C, Kriner M, Ulm K, Bartels H, Siewert JR, Holzmann B. Procalcitonin ratio indicates successful surgical treatment of abdominal sepsis. Surgery. 2009 Jan;145(1):20-26. doi: 10.1016/j.surg.2008.08.009
  23. Bader FG, Schröder M, Kujath P, Muhl E, Bruch HP, Eckmann C. Diffuse postoperative peritonitis – value of diagnostic parameters and impact of early indication for relaparotomy. Eur J Med Res. 2009 Nov 3;14(11):491-96. doi: 10.1186/2047-783x-14-11-491
  24. Здзитовецкий ДЭ, Борисов РН. Анализ частоты распространённого перитонита и результатов его лечения в многопрофильном стационаре. Соврем Проблемы Науки и Образования. 2012;(2):47-52. https://www.science-education.ru/ru/article/view?id=5771
  25. van Westreenen M, Mul FJ, Pronk A, Hoynck van Papendrecht AA, Diepersloot RJ, Roos D, Leguit P. Influence of peroperative lavage solutions on peritoneal defence mechanisms in vitro. Eur J Surg. 1999 Nov;165(11):1066-71. doi: 10.1080/110241599750007919
  26. Koç TR, Tarhan ÖR, Sarıcık B. Effects of peritoneal lavage and dry cleaning on bacterial translocation in a model of peritonitis developed using cecal ligation and puncture. Ulus Travma Acil Cerrahi Derg. 2018 Jul;24(4):281-86. doi: 10.5505/tjtes.2017.97838
  27. Савельев ВС, Гельфанд БР, Филимонов МИ. Перитонит. Москва, РФ: Литтерра; 2006. 206 с. https://studfiles.net/preview/1564175/
  28. Xian-Wen D, Shi-Liang H, Zhou-Hua J, Yu-Fei S, Xue-Song Z. Nasointestinal tubes versus nasogastric tubes in the management of small-bowel obstruction. Medicine (Baltimore). 2018;97(36):e12175. doi: 10.1097/MD.0000000000012175
  29. Fazel MZ, Jamieson RW, Watson CJE. Long-Term Follow-Up of the Use of the Jones’ Intestinal Tube in Adhesive Small Bowel Obstruction. Ann R Coll Surg. 2009;91(1):50-54. doi: 10.1308/003588409X358999
  30. Rebibo L, Ebosse I, Iederan C, Mahjoub Y, Dupont H, Cosse C, Regimbeau JM. Does drainage of the peritoneal cavity have an impact on the postoperative course of community-acquired, secondary, lower gastrointestinal tract peritonitis? Am J Surg. 2017 Jul;214(1):29-36. doi: 10.1016/j.amjsurg.2016.09.031
  31. Müller V, Koplin G, Pratschke J, Raue W. The treatment of acute secondary peritonitis: A retrospective analysis of the use of continuous negative pressure therapy. Med Klin Intensivmed Notfmed. 2018 May;113(4):299-304. doi: 10.1007/s00063-017-0309-6
  32. Hofmann AT, Gruber-Blum S, Lechner M, Petter-Puchner A, Glaser K, Fortelny R. Delayed closure of open abdomen in septic patients treated with negative pressure wound therapy and dynamic fascial suture: the long-term follow-up study. Surg Endosc. 2017 Nov;31(11):4717-24. doi: 10.1007/s00464-017-5547-4
  33. Mintziras I, Miligkos M, Bartsch DK. High risk of fistula formation in vacuum-assisted closure therapy in patients with open abdomen due to secondary peritonitis-a retrospective analysis. Langenbecks Arch Surg. 2016 Aug;401(5):619-25. doi: 10.1007/s00423-016-1443-y
  34. van Ruler O, van Boermeester MA. Surgical treatment of secondary peritonitis: a continuing problem. Chirurg. 2017 Jan;88(Suppl 1):1-6. doi: 10.1007/s00104-015-0121-x
  35. Pommerening MJ, DuBose JJ, Zielinski MD, Phelan HA, Scalea TM, Inaba K, Velmahos GC, Whelan JF, Wade CE, Holcomb JB, Cotton BA. Time to first take-back operation predicts successful primary fascial closure in patients undergoing damage control laparotomy. Surgery. 2014 Aug;156(2):431-38. doi: 10.1016/j.surg.2014.04.019
  36. Goussous N, Jenkins DH, Zielinski MD. Primary fascial closure after damage control laparotomy: sepsis vs haemorrhage. Injury. 2014 Jan;45(1):151-55. doi: 10.1016/j.injury.2013.01.039
  37. Atema JJ, Gans SL, Boermeester MA. Systematic review and meta-analysis of the open abdomen and temporary abdominal closure techniques in non-trauma patients. World J Surg. 2015 Apr;39(4):912-25. doi: 10.1007/s00268-014-2883-6
  38. Karakose O, Benzin MF, Pülat H, Sabuncuoglu MZ, Eken H, Zihni I, Barut I. Bogota bag use in planned re-laparotomies. Med Sci Monit. 2016 Aug 17;22:2900-4. doi: 10.12659/MSM.897109
  39. Regner JL, Kobayashi L, Coimbra R. Surgical strategies for management of the open abdomen. World J Surg. 2012 Mar;36(3):497-510. doi: 10.1007/s00268-011-1203-7
  40. Stevens P. Vacuum-assisted closure of laparostomy wounds: a critical review of the literature. Int Wound J. 2009 Aug;6(4):259-66. doi: 10.1111/j.1742-481X.2009.00614.x
Адрес для корреспонденции:
191015, Российская Федерация,
г. Санкт-Петербург, ул. Кирочная, д. 41,
Северо-Западный государственный медицинский университет им. И.И. Мечникова,
кафедра факультетской хирургии им. И.И. Грекова,
тел.: +790626192131,
e-mail: kotkovdr@mail.ru,
Котков Павел Александрович
Cведения об авторах:
Земляной Вячеслав Петрович, д.м.н., профессор, заведующий кафедрой факультетской хирургии им. И.И. Грекова, Северо-западный государственный медицинский университет им. И.И. Мечникова, г. Санкт-Петербург, Российская Федерация.
https://orcid.org/0000-0003-2329-0023
Сигуа Бадри Валериевич, д.м.н., профессор кафедры факультетской хирургии им. И.И. Грекова, Северо-западный государственный медицинский университет им. И.И. Мечникова, г. Санкт-Петербург, Российская Федерация.
https://orcid.org/0000-0002-4556-4913
Петров Сергей Викторович, д.м.н., профессор, главный врач, Городская больница Святой преподобномученицы Елизаветы, г. Санкт-Петербург, Российская Федерация.
https://orcid.org/0000-0003-4398-5770
Игнатенко Виктор Анатольевич, заведующий хирургическим отделением № 2, Городская больница Святой преподобномученицы Елизаветы, г. Санкт-Петербург, Российская Федерация.
https://orcid.org/0000-0002-6615-3005
Котков Павел Александрович, к.м.н., врач-хирург хирургического отделения № 2, «Городская больница Святой преподобномученицы Елизаветы», г. Санкт-Петербург, Российская Федерация.
https://orcid.org/0000-0002-9762-9854

СЛУЧАИ ИЗ ПРАКТИКИ

Е.В. КРАСHИКОВА, Л.А. ПОПОВА, В.К. АЛИЕВ, Р.В. ТАРАСОВ, Ю.В. ТУРОВЦЕВА, А.С. ИБРИЕВ, С.С. САДОВHИКОВА, М.А. БАГИРОВ

СЛУЧАЙ ДВУСТОРОHHЕЙ ЭКСТРАПЛЕВРАЛЬHОЙ ПЛОМБИРОВКИ СИЛИКОHОВЫМ ИМПЛАHТОМ И КЛАПАHHОЙ БРОHХОБЛОКАЦИИ У ПАЦИЕHТА С РАСПРОСТРАHЕHHЫМ ЛЕКАРСТВЕHHО УСТОЙЧИВЫМ ФИБРОЗHО-КАВЕРHОЗHЫМ ТУБЕРКУЛЕЗОМ ОПЕРИРОВАHHОГО ЛЕГКОГО

Центральный научно-исследовательский институт туберкулеза, г. Москва,
Российская Федерация

В публикации описывается клиническое наблюдение пациента с прогрессирующим хроническим течением двустороннего лекарственно устойчивого туберкулеза легких после неэффективной резекции легкого. Впервые были последовательно выполнены операции экстраплеврального пневмолиза с установкой силиконовых имплантов с обеих сторон. Со стороны оперированного легкого эффект коллапсохирургии был усилен установкой эндобронхиального клапана. Описана типичная ситуация, когда из-за длительного лечения без учета данных о лекарственной чувствительности возбудителя и применения хирургических методов без сочетания с адекватной химиотерапией происходит хронизация деструктивного процесса, сопровождающегося длительным бактериовыделением, фиброзной и буллезной трансформацией легочной ткани, снижением вентиляционной и газообменной функции легких. Применение резекционных операций ограничено из-за снижения функциональных резервов пациента. Поэтому разрабатываются варианты сочетания коллапсообразующих хирургических и эндоскопических методик, направленных на создание компрессии и искусственного ателектаза, способствующих сохранению всего объема легочной ткани и заживлению каверн. Традиционная торакопластика достаточно травматична, особенно при исходном снижении дыхательных резервов, при этом наносит существенный косметический ущерб. Накоплен опыт выполнения эффективной и малотравматичной операции – экстраплевральной пломбировки силиконовым имплантом, который предназначен для пожизненного нахождения в организме человека, обеспечивает высокий компрессионный эффект, не приводя к косметическому ущербу.
Эффект сочетания коллапсообразующих методик привел к клиническому излечению, что доказывают данные обследования пациента в отдаленные сроки.

Ключевые слова: туберкулез, туберкулез с широкой лекарственной устойчивостью, коллапсохирургия, экстраплевральный пневмолиз с пломбировкой силиконовым
с. 461-468 оригинального издания
Список литературы
  1. Стерликов СА (ред), Нечаева ОБ, Сон ИМ, Попов СА, Бурыхин ВС, Пономарёв СБ, Тестов ВВ, Русакова ЛИ, Корниенко СВ, Струкова ОВ, Кучерявая ДА, Обухова ОВ, Дергачёв АВ. Отраслевые и экономические показатели противотуберкулёзной работы в 2016-2017 гг. Аналитический обзор основных показателей и статистические материалы. Москва, РФ: РИО ЦНИИОИЗ; 2018. 81 с. http://mednet.ru/images/stories/files/CMT/optb2016-2017.pdf
  2. Тестов ВВ, Стерликов СА, Васильева ИА, Ерохин ВВ, Кесаева ТЧ. Результаты химиотерапии у больных туберкулезом с множественной лекарственной устойчивостью возбудителя в регионах Российской Федерации. Туберкулез и Болезни Легких. 2014;(4):9-13. https://www.tibl-journal.com/jour/article/view/56/57
  3. Falzon D, Schünemann HJ, Harausz E, GonzÁlez-Angulo L, Lienhardt Ch, Jaramillo E, Weyer K. World Health Organization treatment guidelines for drug-resistant tuberculosis, 2016 update. Eur Respir J. 2017 Mar;49(3):1602308. Published online 2017 Mar 23. doi: 10.1183/13993003.02308-2016
  4. Kang MW, Kim HK, Choi YS, Kim K, Shim YM, Koh WJ, Kim J. Surgical treatment for multidrug-resistant and extensive drug-resistant tuberculosis. Ann Thorac Surg. 2010 May;89(5):1597-602. doi: 10.1016/j.athoracsur.2010.02.020
  5. Dara M, Sotgiu G, Zaleskis R, Migliori GB. Untreatable tuberculosis: is surgery the answer? Eur Respir J. 2015 Mar;45(3):577-82. doi: 10.1183/09031936.00229514
  6. Шаповалов АС, Полежаев АА, Белов СА Коллапсотерапия при туберкулезе лёгких: возвращение к истокам. Тихоокеан Мед Журн. 2017;(1):84-87. doi: 10.17238/PmJ1609-1175.2017.1.84–87
  7. Белов СА. Торакопластика с применением полипропиленовой сетки в лечении туберкулеза легких. Туберкулёз и Болезни Лёгких. 2017;95(12):6-9. doi: 10.21292/2075-1230-2017-95-12-6-9
  8. Синицын МВ, Агкацев ТВ, Решетников МН, Позднякова ЕИ, Ицков АВ, Газданов ТА, Плоткин ДВ. Экстраплевральный пневмолиз с пломбировкой в лечении больных туберкулезом лёгких. Хирург. 2018;(1-2):54-63. https://elibrary.ru/item.asp?id=36921348
  9. Jouveshomme S, Dautzenberg B, Bakdach H, Derenne JP. Preliminary results of collapse therapy with plombage for pulmonary disease caused by multidrug-resistant mycobacteria. Am J Respir Crit Care Med. 1998 May;157(5 Pt 1):1609-15. doi: 10.1164/ajrccm.157.5.9709047
  10. Xie D, Huang D, Jiang G, Zhou X, Zhou Y, Ding J. Thoracic wall abscess as a late complication of extrapleural plombage. Ann Thorac Surg. 2013 Oct;96(4):e107. doi: 10.1016/j.athoracsur.2013.07.032
  11. Ловачева ОВ, Багиров МА, Багдасарян ТР, Красникова ЕВ, Шергина ЕА, Грицай ИЮ. Применение эндобронхиальных клапанов и экстраплевральной пломбировки для лечения двусторонних гигантских каверн у больной туберкулезом легких с множественной лекарственной устойчивостью возбудителя. Туберкулёз и Болезни Лёгких. 2017;95(9):60-67. doi: 10.21292/2075-1230-2017-95-9-60-67
Адрес для корреспонденции:
107564, Российская Федерация,
г. Москва, ул. Яузская аллея, д. 2,
Центральный научно-исследовательский
институт туберкулеза,
отдел хирургии,
тел. моб.: +7(916) 573-29-76,
e-mail: el.krasn@gmail.com,
Красникова Елена Вадимовна
Cведения об авторах:
Красникова Елена Вадимовна, к.м.н., старший научный сотрудник хирургического отдела, заведующая операционным блоком, Центральный научно-исследовательский институт туберкулеза, г. Москва, Российская Федерация.
https://orcid.org/0000-0002-5879-7062
Попова Лидия Анатольевна, к.м.н., старший научный сотрудник отделения функциональной диагностики клинико-диагностического отдела, Центральный научно-исследовательский институт туберкулеза, г. Москва, Российская Федерация.
https://orcid.org/0000-0003-4571-8772
Алиев Вилаят Камалович, младший научный сотрудник хирургического отдела, Центральный научно-исследовательский институт туберкулеза, г. Москва, Российская Федерация.
https://orcid.org/0000-0002-0105-1980
Тарасов Руслан Вячеславович, лаборант-исследователь хирургического отдела, Центральный научно-исследовательский институт туберкулеза, г. Москва, Российская Федерация.
https://orcid.org/0000-0001-9498-1142
Туровцева Юлия Владимировна, врач отделения эндоскопии клинико-диагностического отдела, Центральный научно-исследовательский институт туберкулеза, г. Москва, Российская Федерация.
https://orcid.org/0000-0002-7943-7285
Ибриев Адам Сайпутдинович, врач первого хирургического отделения хирургического отдела, Центральный научно-исследовательский институт туберкулеза, г. Москва, Российская Федерация.
https://orcid.org/0000-0002-9712-4442
Садовникова Светлана Сергеевна, д.м.н., заведующая первым хирургическим отделением хирургического отдела, Центральный научно-исследовательский институт туберкулеза, г. Москва, Российская Федерация.
https://orcid.org/0000-0002-6589-2834
Багиров Мамед Адилович, д.м.н., профессор, руководитель хирургического отдела, Центральный научно-исследовательский институт туберкулеза, г. Москва, Российская Федерация.
https://orcid.org/0000-0001-9788-1024

А.Л. ПЕТРУШИH, А.В. ПРЯЛУХИHА, А.А. СИДОРОВ

СИHДРОМ Nicolau

Карпогорская центральная районная больница, п. Карпогоры,
Российская Федерация

Целью настоящего исследования является демонстрация клинического случая синдрома Nicolau и краткий обзор литературы по его диагностике и лечению.
Синдром Nicolau является редким постинъекционным осложнением, характеризующимся развитием ишемических некрозов кожи, подкожной клетчатки, а в ряде случаев и мышечной ткани в зоне инъекции. Представлено описание клинического случая, в котором после внутримышечной инъекции диклофенака развился некроз кожи и подкожной клетчатки ягодичной области, потребовавший проведение некрэктомии и замещения дефекта мягких тканей. Наиболее часто синдром Nicolau развивается после инъекций нестероидных противовоспалительных препаратов. Предрасполагающими факторами являются избыточный вес и случайное подкожное введение. Среди причин развития большинством авторов называются ангиоспазм, эмболия мелких и средних артерий и последующая ишемия. Диагностика основана на клинических признаках: появлении непосредственно после инъекции четко очерченного участка ишемии с последующим развитием некроза. На ранних стадиях развития возможна консервативная терапия, включающая антикоагулянты, дезаггреганты и кортикостероиды. При наличии некрозов показано их иссечение и замещение дефекта. Профилактика синдрома Nicolau направлена на предотвращение случайного подкожного и внутрисосудистого введения препаратов.
Представленный клинический случай и проведенный анализ литературы свидетельствуют о том, что синдром Nicolau является редким постинъекционным осложнением с неясной этиологией и патогенезом. Типичным проявлением данного синдрома являются некрозы мягких тканей в области инъекции. Одним из эффективных способов замещения дефектов после некрэктомии является кожная пластика перемещенными кожно-фасциальными лоскутами.

Ключевые слова: синдром Nicolau, ливедоидный дерматит, некрозы кожи, внутримышечные инъекции, постинъекционные осложнения
с. 469-474 оригинального издания
Список литературы
  1. Dadaci M, Altuntas Z, Ince B, Bilgen F, Tufekci O, Poyraz N. Nicolau syndrome after intramuscular injection of non-steroidal anti-inflammatory drugs (NSAID). Bosn J Basic Med Sci. 2015 Jan 8;15(1):57-60. doi: 10.17305/bjbms.2015.1.190
  2. Senel E. Nicolau syndrome: a review of the literature. Clin Med Insight Dermatol. 2010 Feb;3:1-4. doi: 10.4137/CMD.S363
  3. Lie C, Leung F, Chow SP. Nicolau syndrome following intramuscular diclofenac administration: a case report. J OrthopSurg (Hong Kong). 2006 Apr;14(1):104-7. doi: 10.1177/230949900601400123
  4. Madke B, Kar S, Prasad K, Yadar N, Singh N. A fatal case of Nicolau syndrome. Ind J PaediatrDermatol. 2014;15(2):92-93. doi: 10.4103/2319-7250.139510
  5. Nischal KC, Basavarai HB, Swaroop MR, Agrawal DP, Sathyanarayana BD, Umashankar NP. Nicolau syndrome: an iatrogenic cutaneous necrosis. J CutanAesthet Surg. 2009 Jul-Dec;2(2):92-95. doi: 10.4103/0974-2077.58523
  6. Rygnestad T, Kvam AM. Streptococcal myositis and tissue necrosis with intramuscular administration of diclofenac (Voltaren). Acta Anaesthesiol Scand. 1995 Nov;39(8):1128-30.doi: 10.1111/j.1399-6576.1995.tb04243.x
  7. Kim KK.,Chae DS. Nicolau syndrome: a literature review. World J Dermatol. 2015 May 2;4(2):103-107. doi: 10.5314/wjd.v4.i2.103
  8. Kilic I, Kaya F, Ozdemir AT, Demirel T, Celik I. Nicolau syndrome due to diclofenac sodium (Voltaren) injection: a case report. J Med Case Rep. 2014;8:404.doi: 10.1186/1752-1947-8-404
  9. Silva AMM, Loureiro TF, Ton A, Agrizzi BL. Late development of Nicolau syndrome – case report. An Bras Dermatol. 2011;86(1):157-59. doi: 10.1590/S0365-05962011000100026
  10. Okan G, Canter HI. Nicolau syndrome and perforator vessels: a new viewpoint for an old problem. Cutan Ocul Toxicol. 2010 Mar;29(1):70-72. doi: 10.3109/15569520903496753
  11. Nisbet AC. Intramuscular gluteal injections in the increasingly obese population: retrospective study. BMJ. 2006 Mar 18;332(7542):637-38. doi: 10.1136/bmj.38706.742731.47
  12. Park HJ, Kim MS, Park NH, Jung SW, Park SI, Park CS. Sonographic findings in Nicolau syndrome following intramuscular diclofenac injection: a case report. J Clin Ultrasound. 2011 Feb;39(2):111-13. doi: 10.1002/jcu.20743
  13. Chagas C, Leite T, Pires L. Post-injection embola cutis medicamentosa – Nicolau syndrome: case report and literature review. J Vasc Bras. 2016;15(1). doi: 10.1590/1677-5449.008315
  14. Maneshi A, Ravi S, Salehi MR, Hasannezhad M, Khalili H. Nicolau syndrome. ArchIranMed. 2017;20(1):60-64. http://ams.ac.ir/AIM/NEWPUB/17/20/1/0013.pdf
Адрес для корреспонденции:
164600, Российская Федерация,
Архангельская обл.,
п. Карпогоры, ул. Ленина, д. 47,
Карпогорская центральная районная больница,
хирургическое отделение,
тел. моб.: +7 921 076-73-29,
e-mail: petrushin.59@mail.ru,
Петрушин Александр Леонидович
Cведения об авторах:
Петрушин Александр Леонидович, к.м.н., заведующий хирургическим отделением, Карпогорская центральная районная больница, Архангельская область, поселок Карпогоры, Российская Федерация.
https://orcid.org/0000-0002-3246-7452
Прялухина Анастасия Владимировна, врач акушер-гинеколог, Карпогорская центральная районная больница, Архангельская область, поселок Карпогоры, Российская Федерация.
https://orcid.org/0000-0002-9801-5782
Сидоров Алексей Александрович, врач-хирург, Карпогорская центральная районная больница, Архангельская область, поселок Карпогоры, Российская Федерация.
https://orcid.org/0000-0002-1345-6352

С.А. МАРКОСЬЯH, Н.С. МАРКОСЬЯH

ТЕРМИHАЛЬHЫЙ ИЛЕИТ, ОСЛОЖHЕHHЫЙ АБСЦЕССОМ ДУГЛАСОВА ПРОСТРАHСТВА, У РЕБЕHКА 8 ЛЕТ

Национальный исследовательский Мордовский государственный университет им. Н.П. Огарева, Медицинский институт, г. Саранск,
Российская Федерация

В сообщении описывается клинический случай ребенка 8 лет с терминальным илеитом, осложненным абсцессом Дугласова пространства. При проведении ультразвукового исследования органов брюшной полости был заподозрен аппендикулярный инфильтрат, в связи с чем пациентка была переведена из инфекционной больницы в детский хирургический стационар. После проведения повторного ультразвукового исследования органов брюшной полости диагноз подтвердился. Ребенку проводились диагностическая лапароскопия, позволившая диагностировать терминальный илеит в стадии обострения, и лапароскопическая аппендэктомия. После операции девочка была переведена в отделение реанимации и интенсивной терапии, где получала патогенетичеcкую и симптоматическую терапии. Несмотря на проводимое лечение, в раннем послеоперационном периоде развился абсцесс Дугласова пространства, сопровождавшийся болью в животе, повышением температуры тела до фебрильных цифр, появлением рвоты с желчью. Проводилась повторная лапароскопическая операция, направленная на санацию и дренирование полости гнойника. В послеоперационном периоде дополнительно осуществлялась стимуляция перистальтики кишечника, проводилось физиотерапевтическое лечение, коррегировалась антибактериальная терапия. В результате проведенного лечения состояние девочки улучшилось. Пациентка была переведена в другое медицинское учреждение для оказания ей высокотехнологичной медицинской помощи.

Ключевые слова: терминальный илеит, тонкая кишка, абсцесс Дугласова пространства, лапароскопия, ребенок
с. 475-479 оригинального издания
Список литературы
  1. Ожегов ЕВ, Животова ЕЮ, Лебедько ОА, Флейшман МЮ, Алексеенко СА, Тимошин СС. Состояние пролиферативных процессов и выраженность оксидативного стресса в слизистой оболочке подвздошной кишки при болезни Крона. Бюл Эксперим Биологии и Медицины. 2011;152(10):400-403.
  2. Левченко СВ, Самсонова НГ, Орлова НВ, Павлов МВ, Карпеева АА, Лунин МА. Лучевая диагностика болезни Крона. Эксперим Клин Гастроэнтерология. 2014;(7):38-44. https://elibrary.ru/item.asp?id=22565513
  3. Собко ВЮ, Карпенко АК, Щукина ОБ, Дементьева ТВ, Богданова ЕО. МРТ-семиотика болезни Крона. Мед Визуализация. 2013;(4):54-60. http://vidar.ru/Article.asp?fid=MV_2013_4_54
  4. Татьянина ОФ, Потапов АС, Намазова-Баранова ЛС, Цимбалова ЕГ, Кучеренко АГ. Возможности кальпротектина в диагностике воспалительных заболеваний кишечника у детей. Вопр Диагностики в Педиатрии. 2009;1(1): 42-48. https://elibrary.ru/item.asp?id=12861661
  5. Степанов ЮМ, Псарьова ИБ. Роль бiомаркерiв у дiагностицi хронiчних запальних захворювань кишечника. Гастроентерологiя. 2017;51(1):56-63. doi: 10.22141/2308-2097.51.1.2017.97872
  6. Будзак ИЯ. К вопросу о дифференциальной диагностике воспалительных и функциональных заболеваний кишечника. Гастроентерологiя. 2013;(2):81-85. https://docplayer.ru/59957745-K-voprosu-o-differencialnoy-diagnostike-vospalitelnyh-i-funkcionalnyh-zabolevaniy-kishechnika.html
  7. Adamek HE, Schantzen W, Rinas U, Goyen M, Ajaj W, Esser C. Ultra-high-field magnetic resonance enterography in the diagnosis of ileitis (Neo-)terminalis: a prospective study. J Clin Gastroenterol. 2012 Apr;46(4):311-16. doi: 10.1097/MCG.0b013e31822fec0c
  8. Меге Д, Панис И. Лапароскопическая хирургия в лечении воспалительных заболеваний кишечника. Колопроктология. 2018;(2):14-24. https://elibrary.ru/item.asp?id=35085420
  9. Дуброва СЭ, Сташук ГА. Возможности лучевых методов в диагностике воспалительных заболеваний кишечника. Альм Клин Медицины. 2016 Авг-Сент;44(6):757-69. doi: 10.18786/2072-0505-2016-44-6-757-769
Адрес для корреспонденции:
430032, Российская Федерация,
г. Саранск, ул. Ульянова, д. 26 а,
Национальный исследовательский Мордовский государственный университет им. Н.П. Огарева, Медицинский институт,
кафедра факультетской хирургии
с курсами топографической анатомии
и оперативной хирургии,
урологии и детской хирургии,
тел. моб. +79176990604,
e-mail: markosyansa@mail.ru,
Маркосьян Сергей Анатольевич
Cведения об авторах:
Маркосьян Сергей Анатольевич, д.м.н., доцент, профессор кафедры факультетской хирургии с курсами топографической анатомии и оперативной хирургии, урологии и детской хирургии, Медицинский институт, Национальный исследовательский Мордовский государственный университет им. Н.П. Огарёва, г. Саранск, Российская Федерация.
http://orcid.org/0000-0002-9876-4433
Маркосьян Наталья Сергеевна, к.м.н., доцент кафедры инфекционных болезней с курсами эпидемиологии, фтизиатрии, кожных и венерических болезней, Медицинский институт, Национальный исследовательский Мордовский государственный университет им. Н.П. Огарёва, г. Саранск, Российская Федерация.
http://orcid.org/0000-0003-3563-1075
Контакты | ©Витебский государственный медицинский университет, 2007-2023