Новости
хирургии

 Журнал включен
в систему цитирования Scopus
journal cover
android icon Приложение Android
Этот сайт использует основные файлы cookie для обеспечения его нормальной работы и файлы cookie для отслеживания, чтобы понять, как вы с ним взаимодействуете. Последние будут установлены только после одобрения.
Согласиться

2022 г. №1 Том 30

НАУЧHЫЕ ПУБЛИКАЦИИ
ЭКСПЕРИМЕHТАЛЬHАЯ ХИРУРГИЯ

Р.Н. ЧЕРHОПИЩУК

ИСПОЛЬЗОВАHИЕ ПЛАЗМЫ, ОБОГАЩЕHHОЙ ТРОМБОЦИТАМИ, ПРИ ЛЕЧЕHИИ ОЖОГОВ В ЭКСПЕРИМЕHТЕ

Винницкий национальный медицинский университет им. Н.И. Пирогова, г. Винница,
Украина

Цель. Оценить эффективность инъекционного использования плазмы, обогащенной тромбоцитами, при лечении ран у экспериментальных животных с ожогами.
Материал и методы. Эксперимент проведен на 30 половозрелых крысах-самцах породы Wistar, которые, после моделирования инфицированного ожога кипятком и иссечения на 2-е сутки некротических тканей до «кровяной росы», гемостаза, были разделены на основную и контрольную группы в зависимости от выбранной стратегии дальнейшего лечения. Животным контрольной группы (15 крыс) раневой дефект обрабатывали и накладывали повязки, пропитанные 0,02% раствором декаметоксина. Животным основной группы (15 крыс) дополнительно проводили инъекции в область раны инъекций плазмы, обогащенной тромбоцитами, на 1, 3, 5 сутки после некрэктомии. Остаток этой плазмы путем аппликации наносили на раневую поверхность с последующим закрытием поливинилхлоридной пленкой и марлевой повязкой. Перевязки проводились ежедневно. Изучение предусматривало гистологическое исследование участка раны и окружающих тканей, забор которых осуществлялся на 1, 3, 7, 14-е сутки после удаления некротизированных тканей.
Результаты. У животных основной группы, лечение которых предусматривало использование плазмы, обогащенной тромбоцитами, уже на 3 сутки после некрэктомии в области раны определяли уменьшение глубины повреждений, которые распространялись только до подкожной клетчатки, снижение активности воспалительной реакции в тканях с последующей пролиферацией молодого эпидермиса и почти полным заживлением раневого дефекта до 14-х суток. Патологические изменения в тканях участка повреждения животных контрольной группы были более выраженными, с признаками повреждения до мышц. Кроме того, в течение всего периода наблюдения в этой группе животных сохранялась интенсивная воспалительная реакция с низкой пролиферативной активностью.
Заключение. Экспериментально подтверждена эффективность инъекционного использования плазмы, обогащенной тромбоцитами, как элемента комплексного местного лечения ожоговых ран у крыс.

Ключевые слова: ожоги, модель, животные, воспаление, заживление ран, реэпителизация, обогащенная тромбоцитами плазма
с. 5-11 оригинального издания
Список литературы
  1. Tiwari VK. Burn wound: How it differs from other wounds? Indian J Plast Surg. 2012 May;45(2):364-73. doi: 10.4103/0970-0358.101319
  2. Dhaliwal K, Lopez N. Hydrogel dressings and their application in burn wound care. Br J Community Nurs. 2018 Sep 1;23(Sup9):S24-S27. doi: 10.12968/bjcn.2018.23.Sup9.S24
  3. Fernandez-Moure JS, Van Eps JL, Cabrera FJ, Barbosa Z, Medrano Del Rosal G, Weiner BK, Ellsworth WA 4th, Tasciotti E. Platelet-rich plasma: a biomimetic approach to enhancement of surgical wound healing. J Surg Res. 2017 Jan;207:33-44. doi: 10.1016/j.jss.2016.08.063
  4. Unal M. Platelet-rich plasma in burn treatment. Hot topics in burn injuries [Internet]. Intech Open. 2017 Dec 20. Available from: http://dx.doi.org/10.5772/intechopen.70835
  5. Picard F, Hersant B, Bosc R, Meningaud JP. Should we use platelet-rich plasma as an adjunct therapy to treat “acute wounds,” “burns,” and “laser therapies”: A review and a proposal of a quality criteria checklist for further studies. Wound Repair Regen. 2015 Mar-Apr;23(2):163-70. doi: 10.1111/wrr.12266
  6. Chen W, Zheng JS. Advance in the research of platelet-rich plasma in burn treatment. Zhonghua Shao Shang Za Zhi. 2012 Aug;28(4):288-90. Chinese.
  7. Xu P, Wu Y, Zhou L, Yang Z, Zhang X, Hu X, Yang J, Wang M, Wang B, Luo G, He W, Cheng B. Platelet-rich plasma accelerates skin wound healing by promoting re-epithelialization. Burns Trauma. 2020 Aug 14;8:tkaa028. doi: 10.1093/burnst/tkaa028. eCollection 2020.
  8. Ferrari M, Zia S, Valbonesi M, Henriquet F, Venere G, Spagnolo S, Grasso MA, Panzani I. A new technique for hemodilution, preparation of autologous platelet-rich plasma and intraoperative blood salvage in cardiac surgery. Int J Artif Organs. 1987 Jan;10(1):47-50. doi: 10.1177/039139888701000111
  9. Malanga GA, Goldin M. PRP: review of the current evidence for musculoskeletal conditions. Curr Phys Med Rehabil Rep. 2014;2;1-15. doi: 10.1007/s40141-013-0039-5
  10. Marck RE, Gardien KL, Stekelenburg CM, Vehmeijer M, Baas D, Tuinebreijer WE, Breederveld RS, Middelkoop E. The application of platelet-rich plasma in the treatment of deep dermal burns: A randomized, double-blind, intra-patient controlled study. Wound Repair Regen. 2016 Jul;24(4):712-20. doi: 10.1111/wrr.12443
  11. Singer AJ, Toussaint J, Choi WT, McClain SA, Raut V. The effects of Platelet-rich Plasma on healing of partial thickness burns in a porcine model. Ann Burns Fire Disasters. 2018 Dec 31;31(4):298-305. https://www.ncbi.nlm.nih.gov/pmc/articles/PMC6441582/
  12. Sun Y, Cao Y, Zhao R, Xu F, Wu D, Wang Y. The Role of Autologous PRP on Deep Partial-Thickness Burn Wound Healing in Bama Pigs. J Burn Care Res. 2020 May 2;41(3):657-62. doi: 10.1093/jbcr/iraa012
  13. Gupta S, Goil P, Thakurani S. Autologous platelet rich plasma as a preparative for resurfacing burn wounds with split thickness skin grafts. World J Plast Surg. 2020 Jan;9(1):29-32. doi: 10.29252/wjps.9.1.29
  14. Huang SH, Wu SH, Lee SS, Lin YN, Chai CY, Lai CS, Wang HD. Platelet-rich plasma injection in burn scar areas alleviates neuropathic scar pain. Int J Med Sci. 2018 Jan 8;15(3):238-47. doi: 10.7150/ijms.22563. eCollection 2018.
  15. Uraloğlu M, Ural A, Efe G, Yuluğ E, Livaoğlu M, Karaçal N. The effect of platelet-rich plasma on the zone of stasis and apoptosis in an experimental burn model. Plast Surg (Oakv). 2019 May;27(2):173-81. doi: 10.1177/2292550318800498
Адрес для корреспонденции:
21028, Украина,
г. Винница, ул. Пирогова, д. 56,
Винницкий национальный медицинский
университет им. Н.И. Пирогова,
кафедра общей хирургии,
тел.: +380 972 12 89 63,
e-mail: r.chornopyshchuk@gmail.com,
Чернопищук Роман Николаевич
Cведения об авторах:
Чернопищук Роман Николаевич, к.м.н., ассистент кафедры общей хирургии Винницкого национального медицинского университета им. Н.И. Пирогова, г. Винница, Украина.
https://orcid.org/0000-0001-5422-7495

ОБЩАЯ И ЧАСТHАЯ ХИРУРГИЯ

Р.Е. КАЛИHИH 1, И.А. СУЧКОВ 1, Н.Д. МЖАВАHАДЗЕ 1, В.О. ПОВАРОВ 1, Э.А. КЛИМЕHТОВА 1, О.Н. ЖУРИHА 1, Г.А. ПУЧКОВА 2

ПРОГHОСТИЧЕСКИЕ МАРКЕРЫ РЕСТЕHОЗА У ПАЦИЕHТОВ С ПЕРИФЕРИЧЕСКИМ АТЕРОСКЛЕРОЗОМ ПРИ ЭHДОВАСКУЛЯРHЫХ ВМЕШАТЕЛЬСТВАХ

Рязанский государственный медицинский университет им. акад. И.П. Павлова 1,
Областной клинический кардиологический диспансер 2, г. Рязань,
Российская Федерация

Цель. Изучить роль параметров гемостаза как потенциальных маркеров развития рестеноза у пациентов с периферическим атеросклерозом при выполнении эндоваскулярных вмешательств.
Материал и методы. В открытое проспективное исследование вошли 55 пациентов с периферическим атеросклерозом с хронической ишемией нижних конечностей IIБ-IV стадии по классификации А.В. Покровского-Фонтейна в возрасте 63 (57; 69) лет; 48 (87,3%) пациентов мужского пола; 18 (32,7%) пациентов страдали сахарным диабетом 2 типа (СД). Перед ангиопластикой или стентированием артерий нижних конечностей в периферической крови определяли активность протеина С (PrC), уровни растворимых эндотелиальных рецепторов к протеину С (sEPCR), активность факторов свертывания FVIII, FIX, FXI. В течение года после вмешательств при помощи ультразвуковых и ангиографических исследований оценивалось развитие рестеноза зоны реконструкции.
Результаты. В течение 1 года рестеноз развился у 13 (23,6%) пациентов. Уровень sEPCR ниже 46,8 нг/мл соответствовал повышению риска развития рестеноза в 4,263 раза (отношение рисков 4,263, ДИ 95% 1,509-12,042); абсолютный риск – 47±11% (ДИ 95% 25-69 %). У пациентов с СД риск развития рестеноза был в 2,6 раза выше, чем у пациентов без диабета (отношение рисков 2,6, ДИ 95% 1,031-6,599); абсолютный риск – 41,18±12% (ДИ 95% 17,78-64,58%). Вероятность развития рестеноза находилась в обратной зависимости от исходных показателей активности FVIII и уровня sEPCR: чем ниже абсолютные значения FVIII и sEPCR, тем выше вероятность развития рестеноза в послеоперационном периоде.
Заключение. Наличие сахарного диабета 2 типа, изменение активности фактора свертывания FVIII и уровня растворимых рецепторов к протеину С (sEPCR) ассоциированы с развитием рестеноза у пациентов с периферическим атеросклерозом при выполнении эндоваскулярных вмешательств на артериях нижних конечностей.

Ключевые слова: маркеры гемостаза, рестеноз, периферический атеросклероз, эндоваскулярные вмешательства, сахарный диабет
с. 12-19 оригинального издания
Список литературы
  1. Кательницкий ИИ, Кательницкий ИгИ, Ливадняя ЕС. Преимущества современных методов профилактики тромботических осложнений у больных с критической ишемией нижних конечностей после выполнения реконструктивных операций. Рос Мед-Биол Вестн им Акад ИП Павлова. 2019;27(4):487-94. doi: 10.23888/PAVLOVJ2019274487-494
  2. Калинин РЕ, Сучков ИА, Мжаванадзе НД, Климентова ЭА, Журина ОН. Показатели гемостаза у пациентов с атеросклерозом периферических артерий при реконструктивно-восстановительных операциях. Хирургия. Журн им НИ Пирогова. 2018;(8):46-49. doi: 10.17116/hirurgia2018846
  3. Стрельникова ЕА, Трушкина ПЮ, Суров ИЮ, Короткова НВ, Мжаванадзе НД, Деев РВ. Эндотелий in vivo и in vitro. Часть 1: гистогенез, структура, цитофизиология и ключевые маркеры. Наука молодых (Eruditio Juvenium). 2019;7(3):450-65. doi: 10.23888/HMJ201973450-465
  4. Godo S, Shimokawa H. Endothelial Functions. Arterioscler Thromb Vasc Biol. 2017 Sep;37(9):e108-e14. doi: 10.1161/ATVBAHA.117.309813
  5. Fukudome K, Esmon CT. Molecular cloning and expression of murine and bovine endothelial cell protein C/activated protein C receptor (EPCR). The structural and functional conservation in human, bovine, and murine EPCR. J Biol Chem. 1995 Mar 10;270(10):5571-77. doi: 10.1074/jbc.270.10.5571
  6. Lattenist L, Ochodnický P, Ahdi M, Claessen N, Leemans JC, Satchell SC, Florquin S, Gerdes VE, Roelofs JJ. Renal endothelial protein C receptor expression and shedding during diabetic nephropathy. J Thromb Haemost. 2016 Jun;14(6):1171-82. doi: 10.1111/jth.13315
  7. Barmore W, Bajma T, Burns B. Biochemistry, Clotting Factors. [Last Update: May 23, 2020.]. In: StatPearls [Electronic resource]. Treasure Island (FL): StatPearls Publishing; 2019 Jan [дата обращения: 2021 Янв 06]. Available from: https://www.ncbi.nlm.nih.gov/books/NBK507850/
  8. Gailani D, Gruber A. Factor XI as a Therapeutic Target. Arterioscler Thromb Vasc Biol. 2016 Jul;36(7):1316-22. doi: 10.1161/ATVBAHA.116.306925
  9. Everett LA, Cleuren AC, Khoriaty RN, Ginsburg D. Murine coagulation factor VIII is synthesized in endothelial cells. Blood. 2014 Jun 12;123(24):3697-705. doi: 10.1182/blood-2014-02-554501
  10. Kamikubo Y, Mendolicchio GL, Zampolli A, Marchese P, Rothmeier AS, Orje JN, Gale AJ, Krishnaswamy S, Gruber A, Østergaard H, Petersen LC, Ruf W, Ruggeri ZM. Selective factor VIII activation by the tissue factor-factor VIIa-factor Xa complex. Blood. 2017 Oct 5;130(14):1661-70. doi: 10.1182/blood-2017-02-767079
  11. Yazdani-Biuki B, Krippl P, Brickmann K, Fuerst F, Langsenlehner U, Paulweber B, Pilger E, Wascher TC, Brezinschek HP, Renner W. The functional promoter polymorphism of the coagulation factor XII gene is not associated with peripheral arterial disease. Angiology. 2010 Feb;61(2):211-15. doi: 10.1177/0003319709337305
  12. Vértes M, Juhász IZ, Nguyen DT, Nemes B, Hüttl K, Dósa E. Long aortic part of the stents as a new predictor for in-stent restenosis after kissing stenting of the aortoiliac arteries. EJVES. Book of Abstracts – The European Society for Vascular Surgery 32nd Annual Meeting 2018. 2019;58(Is 6 Suppl 2):e323-e324. doi: 10.1016/j.ejvs.2019.06.938
  13. Chen N, Chen L, Jiang S, Wang Z, Liu T. Predictive value of P-selectin and endothelin-1 for vascular restenosis after interventional procedures for peripheral artery disease. Exp Ther Med. 2019 May;17(5):3907-12. doi: 10.3892/etm.2019.7407
  14. Lee S, Hoberstorfer T, Wadowski PP, Kopp CW, Panzer S, Gremmel T. Platelet-to-lymphocyte and neutrophil-to-lymphocyte ratios predict target vessel restenosis after infrainguinal angioplasty with stent implantation. J Clin Med. 2020 Jun 3;9(6):1729. doi: 10.3390/jcm9061729
  15. Armstrong EJ, Waltenberger J, Rogers JH. Percutaneous coronary intervention in patients with diabetes: current concepts and future directions. J Diabetes Sci Technol. 2014 May;8(3):581-89. doi: 10.1177/1932296813517058
  16. Bilgic MA, Yilmaz H, Bozkurt A, Celik HT, Bilgic IC, Gurel OM, Kirbas I, Bavbek N, Akcay A. Relationship of late arteriovenous fistula stenosis with soluble E-selectin and soluble EPCR in chronic hemodialysis patients with arteriovenous fistula. Clin Exp Nephrol. 2015 Feb;19(1):133-39. doi: 10.1007/s10157-014-0955-4
  17. Meijers JC, Tekelenburg WL, Bouma BN, Bertina RM, Rosendaal FR. High levels of coagulation factor XI as a risk factor for venous thrombosis. N Engl J Med. 2000 Mar 9;342(10):696-701. doi: 10.1056/NEJM200003093421004
  18. Zamzam A, Syed MH, Rand ML, Singh K, Hussain MA, Jain S, Khan H, Verma S, Al-Omran M, Abdin R, Qadura M. Altered coagulation profile in peripheral artery disease patients. Vascular. 2020 Aug;28(4):368-77. doi: 10.1177/1708538120915997
Адрес для корреспонденции:
390026, Российская Федерация,
г. Рязань, ул. Высоковольтная, д. 9,
Рязанский государственный медицинский
университет им. акад. И.П. Павлова,
кафедра сердечно-сосудистой, рентгенэндоваскулярной, оперативной
хирургии и топографической анатомии,
тел.: +7 903 836 24 17,
e-mail: suchkov_med@mail.ru,
Сучков Игорь Александрович
Cведения об авторах:
Калинин Роман Евгеньевич, д.м.н., профессор, заведующий кафедрой сердечно-сосудистой, рентген-эндоваскулярной хирургии и лучевой диагностики, Рязанский государственный медицинский университет им. акад. И.П. Павлова, г. Рязань, Российская Федерация. http://orcid.org/0000-0002-0817-9573
Сучков Игорь Александрович, д.м.н., профессор, профессор кафедры сердечно-сосудистой, рентгенэндоваскулярной хирургии и лучевой диагностики, Рязанский государственный медицинский университет им. акад. И.П. Павлова, г. Рязань, Российская Федерация врач.
http://orcid.org/0000-0002-1292-5452
Мжаванадзе Нина Джансуговна, к.м.н., доцент, доцент кафедры сердечно-сосудистой, рентгенэндоваскулярнойхирургии и лучевой диагностики, Рязанский государственный медицинский университет им. акад. И.П. Павлова, г. Рязань, Российская Федерация.
http://orcid.org/0000-0001-5437-1112
Поваров Владислав Олегович, к.м.н., соискатель кафедры сердечно-сосудистой, рентгенэндоваскулярной хирургии и лучевой диагностики, Рязанский государственный медицинский университет им. акад. И.П. Павлова, г. Рязань, Российская Федерация.
https://orcid.org/0000-0001-8810-9518
Климентова Эмма Анатольевна, к.м.н., соискатель кафедры сердечно-сосудистой, рентгенэндоваскулярной хирургии и лучевой диагностики, Рязанский государственный медицинский университет им. акад. И.П. Павлова, г. Рязань, Российская Федерация.
https://orcid.org/0000-0003-4855-9068
Журина Ольга Николаевна, к.м.н., научный сотрудник, научно-клинический центр гематологии, онкологии и иммунологии, Рязанский государственный медицинский университет им. акад. И.П. Павлова, г. Рязань, Российская Федерация.
https://orcid.org/0000-0002-2159-582X
Пучкова Галина Анатольевна, врач ультразвуковой диагностики, областной клинический кардиологический диспансер, г. Рязань, Российская Федерация.
https://orcid.org/0000-0002-6346-2064

А.Г. СКУРАТОВ, А.Н. ЛЫЗИКОВ, В.М. МИЦУРА

ОЦЕHКА ТЯЖЕСТИ ПОРТАЛЬHОЙ ГИПЕРТЕHЗИИ ПРИ ЦИРРОЗЕ ПЕЧЕHИ

Гомельский государственный медицинский университет, г. Гомель,
Республика Беларусь

Цель. Разработка метода неинвазивной диагностики для оценки тяжести портальной гипертензии при циррозе печени.
Материал и методы. Для выявления диагностически значимых показателей проведен статистический анализ данных лабораторных и инструментальных методов исследования 60 пациентов с циррозом печени. Были оценены показатели общего и биохимического анализов крови, коагулограммы, общего анализа мочи, концентрации интерлейкина-6 (ИЛ-6), матриксных металлопротеиназ 1 и 9 (ММП-1, ММП-9), тканевого ингибитора матриксной металлопротеиназы 1 (ТИМП-1), фактора роста гепатоцитов (HGF).Проведено ультразвуковое исследование органов брюшной полости, фиброэзофагогастродуоденоскопия (ФЭГДС). Рассчитан индекс отношения количества тромбоцитов крови (N×109/л) к поперечному размеру (Д) селезенки в миллиметрах (PSR – Plateletcount to Spleendiameter Ratio): PSR=NТр/Д селезенки.
Результаты. Диагностически значимыми оказались следующие показатели (представлены прогностические значения на основе ROC-анализа): концентрации в крови интерлейкина-6 (>19,9 пг/мл), матриксной металлопротеиназы-1 (>8,06 нг/мл), холестерина (≤4,5 ммоль/л), диаметра воротной вены
(>13 мм), PSR (≤1,89). Разработан метод диагностики портальной гипертензии при циррозе печени, основанный на балльной оценке комплекса лабораторных и инструментальных критериев (AUC=0,931; p<0,001). Метод может быть использован в комплексе медицинских услуг, направленных на диагностику тяжести портальной гипертензии на фоне цирроза печени, а также на медицинскую профилактику жизнеугрожающих осложнений заболевания.
Заключение. Разработанный метод позволяет выявлять пациентов с «тяжелой» формой портальной гипертензии, рекомендовать проведение им внеплановой ФЭГДС с эндоскопической оценкой риска кровотечения и проведения профилактических и лечебных процедур. При выявлении низкой вероятности «тяжелой» формы ПГ следует воздержаться от ФЭГДС при наличии у пациента абсолютных или относительных противопоказаний к использованию данного диагностического метода.
Метод может быть использован в комплексе медицинских услуг, направленных на диагностику тяжести портальной гипертензии на фоне цирроза печени.

Ключевые слова: цирроз печени, портальная гипертензия, варикозное расширение вен пищевода, диагностика, оценка тяжести заболевания
с. 20-27 оригинального издания
Список литературы
  1. Ивашкин ВТ. Осложнения портальной гипертензии при циррозе печени. Рос Физиол Журн. 2009;95(10):1074-92. https://www.elibrary.ru/item.asp?id=17044721
  2. Tsochatzis EA, Bosch J, Burroughs AK. Liver cirrhosis. Lancet. 2014 May 17;383(9930):1749-61. doi: 10.1016/S0140-6736(14)60121-5
  3. Кадиров РН, Хаджибаев ФА. Эндоскопические методы гемостаза при кровотечениях портального генеза. The Scientific Heritage. 2020;(48-2):10-13. https://www.elibrary.ru/item.asp?id=43107132
  4. Garcia-Tsao G, Abraldes JG, Berzigotti A, Bosch J. Portal hypertensive bleeding in cirrhosis: Risk stratification, diagnosis, and management: 2016 practice guidance by the American Association for the study of liver diseases. Hepatology. 2017 Jan;65(1):310-35. doi: 10.1002/hep.28906
  5. De Franchis R, Baveno VI Faculty. Expanding consensus in portal hypertension: Report of the Baveno VI Consensus Workshop: Stratifying risk and individualizing care for portal hypertension. J Hepatol. 2015 Sep;63(3):743-52. doi: 10.1016/j.jhep.2015.05.022
  6. Гарбузенко ДВ. Неинвазивные методы оценки портальной гипертензии у больных циррозом печени. Поликлиника. 2015;(2):33-39. http://www.poliklin.ru/article2015_1(1)_33.php
  7. Deng H, Qi X, Guo X. Diagnostic Accuracy of APRI, AAR, FIB-4, FI, King, Lok, Forns, and FibroIndex Scores in Predicting the Presence of Esophageal Varices in Liver Cirrhosis: A Systematic Review and Meta-Analysis. Medicine (Baltimore). 2015 Oct;94(42):e1795. doi: 10.1097/MD.0000000000001795
  8. Тухбатуллин МГ, Ахунова ГР, Галеева ЗМ. Возможности эхографии в диагностике цирроза печени и портальной гипертензии. Практ Медицина. 2014;(3)):54-61. https://cyberleninka.ru/article/n/vozmozhnosti-ehografii-v-diagnostike-tsirroza-pecheni-i-portalnoy-gipertenzii/viewer
  9. Лызиков АН, Скуратов АГ, Шпаковский ЮП. Значение методов визуализационной диагностики цирроза печени и портальной гипертензии. Проблемы Здоровья и Экологии. 2016;(2):21-25. https://journal.gsmu.by/jour/article/view/1684
  10. Shiina T, Nightingale KR, Palmeri ML, Hall TJ, Bamber JC, Barr RG, Castera L, Choi BI, Chou YH, Cosgrove D, Dietrich CF, Ding H, Amy D, Farrokh A, Ferraioli G, Filice C, Friedrich-Rust M, Nakashima K, Schafer F, Sporea I, Suzuki S, Wilson S, Kudo M. WFUMB guidelines and recommendations for clinical use of ultrasound elastography: Part 1: basic principles and terminology. Ultrasound Med Biol. 2015 May;41(5):1126-47. doi: 10.1016/j.ultrasmedbio.2015.03.009
  11. Yada N, Kudo M, Morikawa H, Fujimoto K, Kato M, Kawada N. Assessment of liver fibrosis with real-time tissue elastography in chronic viral hepatitis. Oncology. 2013;84(Suppl 1):13-20. doi: 10.1159/000345884
  12. Castera L, Pinzani M, Bosch J. Non invasive evaluation of portal hypertension using transient elastography. J Hepatol. 2012 Mar;56(3):696-703. doi: 10.1016/j.jhep.2011.07.005
  13. Chen R, Deng H, Ding X, Xie C, Wang W, Shen Q. Platelet count to spleen diameter ratio for the diagnosis of gastroesophageal varices in liver cirrhosis: a systematic review and meta-analysis. Gastroenterol Res Pract. 2017;2017:7407506. doi: 10.1155/2017/7407506
  14. Chawla S, Katz A, Attar BM, Gupta A, Sandhu DS, Agarwal R. Platelet count/spleen diameter ratio to predict the presence of esophageal varices in patients with cirrhosis: a systematic review. Eur J Gastroenterol Hepatol. 2012 Apr;24(4):431-36. doi: 10.1097/MEG.0b013e3283505015
  15. Park SH, Park TE, Kim YM, Kim SJ, Baik GH, Kim JB, Kim DJ. Non-invasive model predicting clinically-significant portal hypertension in patients with advanced fibrosis. J Gastroenterol Hepatol. 2009 Jul;24(7):1289-93. doi: 10.1111/j.1440-1746.2009.05904.x
  16. Mormone E, George J, Nieto N. Molecular pathogenesis of hepatic fibrosis and current therapeutic approaches. Chem Biol Interact. 2011 Sep 30;193(3):225-31. doi: 10.1016/j.cbi.2011.07.001
  17. Клинический протокол «Диагностика и лечение пациентов с заболеваниями органов пищеварения»: Постановление Министерства здравоохранения Республики Беларусь № 54; 2017 Июнь 1 [Электронный ресурс]. Режим доступа: http://minzdrav.gov.by/upload/dadvfiles/001077_838640_54gastro.pdf
Адрес для корреспонденции:
246050, Беларусь, г. Гомель,
ул. Ланге, 5,
Гомельский государственный медицинский университет, кафедра хирургических
болезней №1 с курсом сердечно-сосудистой хирургии,
тел.: +375447957922,
e-mail: alexskuratov@mail.ru,
Скуратов Александр Геннадьевич
Cведения об авторах:
Скуратов Александр Геннадьевич, к.м.н., доцент, доцент кафедры хирургических болезней № 1 с курсом сердечно-сосудистой хирургии, Гомельский государственный медицинский университет, г. Гомель, Республика Беларусь.
https://orcid.org/0000-0002-1994-1156
Лызиков Анатолий Николаевич, д.м.н., профессор, профессор кафедры хирургических болезней № 1 с курсом сердечно-сосудистой хирургии, Гомельский государственный медицинский университет, г.Гомель, Республика Беларусь.
https://orcid.org/0000-0002-4668-6007
Мицура Виктор Михайлович, д.м.н., доцент, профессор кафедры инфекционных болезней, Гомельский государственный медицинский университет», г.Гомель, Республика Беларусь.
https://orcid.org/0000-0002-0449-5026

В.И. БЕЛОКОHЕВ, С.Ю. ПУШКИH, З.В. КОВАЛЕВА, Д.Б. АВЕЗОВА, Д.В. НОВИКОВ

СПОСОБЫ ЛЕЧЕHИЯ ПАЦИЕHТОВ С ПОСЛЕОПЕРАЦИОHHЫМИ ВЕHТРАЛЬHЫМИ ГРЫЖАМИ И СФОРМИРОВАHHЫМИ СВИЩАМИ КИШЕЧHИКА

Самарский государственный медицинский университет, г. Самара,
Российская Федерация

Цель. Обосновать способы хирургического лечения пациентов с послеоперационными вентральными грыжами и сформированными свищами кишечника на основании сравнения результатов операций в один и два этапа.
Материал и методы. Проведен анализ 40 пациентов с послеоперационными вентральными грыжами и сформированными кишечными свищами, наложенными с лечебной целью или образовавшимися в результате исхода лечения несформированных свищей. Патология тощей кишки была у 7 (17,5%), подвздошной – у 18 (45%), ободочной – у 15 (37,5%) пациентов. У 15 (37,5%) пациентов 1 группы операции выполнены в два этапа. Вначале закрывали свищ доступом в области его расположения, а затем через 3-6 месяцев проводили грыжесечение. У 25 (62,5%) пациентов 2 группы одномоментно устраняли свищ и выполняли грыжесечение. Пластику грыжевых ворот в группах проводили ненатяжными передними протезирующими способами. Результаты оценивали по числу местных и общих осложнений в сроки от 10 суток до 6 месяцев.
Результаты. У пациентов 1 группы после первой операции раневые осложнения развились у 2 (13,3%). После герниопластики вторым этапом осложнений не было. Во 2 группе раневые осложнения развились у 3 (12%) пациентов. Несостоятельности анастомозов в группах не было. В отдаленные сроки хорошие результаты в 1 группе получены у 15 , во 2 группе – у 25 пациентов. Использование при лечении грыж передних протезирующих ненатяжных способов пластики комбинированными способами в один этап позволяет получить результаты, сопоставимые с двухэтапными операциями.
Заключение. У пациентов с грыжами и кишечными свищами способ лечения в два или один этап зависит от возможности восстановления непрерывности желудочно-кишечного тракта из малоинвазивного доступа в зоне расположения свища.

Ключевые слова: вентральные грыжи, лечение грыж, послеоперационная грыжа, лечение вентрал
с. 28-37 оригинального издания
Список литературы
  1. Кригер АГ, Кубышкин ВА, Берелавичус СВ, Горин ДС, Калдаров АР, Гогия БШ, Ахтанин ЕА, Матушевская ВН, Соколова ЕА. Хирургическое лечение больных с тонкокишечными свищами. Хирургия. Журн им НИ Пирогова. 2015;(12):86-95. doi: 10.17116/hirurgia20151286-95
  2. Куликов ЛК, Буслаев ОА, Шалашов СВ, Смирнов АА, Михайлов АЛ, Егоров ИА, Шадаров ЛП, Соболев СТ, Соботович ВФ, Привалов ЮА. Хирургическое лечение обширных и гигантских послеоперационных вентральных грыж. Новости Хирургии, 2013;21(2):37-44. doi: 10.18484/2305-0047.2013.2.37
  3. Beffa LR, Warren JA, Cobb WS, Knoedler B, Ewing JA, Carbonell AM. Open retromuscular repair of parastomal hernias with synthetic mesh. Am Surg. 2017 Aug 1;83(8):906-910. doi: 10.1177/000313481708300845
  4. Демко АЕ, Батыршин ИМ, Шляпников СА, Остроумова ЮС, Склизков ДС, Фомин ДВ, Пичугина ГА. Этапный подход в лечении больных с несформированными кишечными свищами. Хирургия. Журн им НИ Пирогова. 2020;(11):66–73. doi: 10.17116/hirurgia202011166
  5. Ross H. Operative surgery for enterocutaneous fistula. Clin Colon Rectal Surg. 2010 Sep;23(3):190-94. doi: 10.1055/s-0030-1262987
  6. Arnold MR, Kao AM, Otero J, Marx JE, Augenstein VA, Sing RF, Colavita PD, Kercher K, Heniford BT. Mesh fistula after ventral hernia repair: What is the optimal management? Surgery. 2020 Mar;167(3):590-97. doi: 10.1016/j.surg.2019.09.020
  7. Тимербулатов МВ, Ибатуллин АА, Гайнутдинов ФМ, Куляпин АВ, Аитова ЛР, Кызылбаева АИ, Абдеев АА, Фатхуллин АС. Поздние осложнения кишечных стом и их хирургическая коррекция. Казан Мед Журн. 2012;93(4):602-605.doi: 10.17816/KMJ1552
  8. Slater NJ, Knaapen L, Bökkerink WJV, Biemans MJA, Buyne OR, Ulrich DJO, Bleichrodt RP, van Goor H. Large contaminated ventral hernia repair using component separation technique with synthetic mesh. Plast Reconstr Surg. 2015 Dec;136(6):796e-805e. doi: 10.1097/PRS.0000000000001793
  9. Latifi R. Practical approaches to definitive reconstruction of complex abdominal wall defects. World J Surg. 2016 Apr;40(4):836-48. doi: 10.1007/s00268-015-3294-z
Адрес для корреспонденции:
443099, Российская Федерация,
г. Самара, ул. Чапаевская, д. 89;
Самарский государственный
медицинский университет,
кафедра хирургических болезней № 2,
тел. моб.: +7 927 606 19 83;
e-mail: belokonev63@yandex.ru,
Белоконев Владимир Иванович
Cведения об авторах:
Белоконев Владимир Иванович, д.м.н., профессор, заведующий кафедрой хирургических болезней № 2, Самарский государственный медицинский университет, г. Самара, Российская Федерация.
https://orcid.org/0000-0002-4625-6664
Пушкин Сергей Юрьевич, д.м.н., доцент, профессор кафедры хирургических болезней № 2, Самарский государственный медицинский университет, г. Самара, Российская Федерация.
https://orcid.org/0000-0003-2206-6679
Ковалева Зинаида Викторовна, к.м.н., доцент кафедры хирургических болезней № 2, Самарский государственный медицинский университет, г. Самара, Российская Федерация.
https://orcid.org/0000-0002-1810-7696
Авезова Диана Борисовна, соискатель кафедры хирургических болезней № 2, Самарский государственный медицинский университет, г. Самара, Российская Федерация.
http://orcid.org/0000-0002-0813-8392
Новиков Денис Владимирович, соискатель кафедры хирургических болезней № 2, Самарский государственный медицинский университет, г. Самара, Российская Федерация.
http://orcid.org/0000-0002-8194-4622

Р.И. ДОВHАР 1, А.Ю. ВАСИЛЬКОВ 2, Т.Н. СОКОЛОВА 1, И.Е. БУТЕHКО 2, С.М. СМОТРИH 1, Н.Н. ИОСКЕВИЧ 1

АHТИБАКТЕРИАЛЬHОЕ ДЕЙСТВИЕ HАHОЧАСТИЦ СЕРЕБРА

Гродненский государственный медицинский университет 1, г. Гродно,
Республика Беларусь,
Институт элементоорганических соединений имени А.Н. Несмеянова Российской академии наук 2, г. Москва,
Российская Федерация

Цель. Определить минимальную ингибирующую концентрацию наночастиц Ag по отношению к клиническим патогенным штаммам микроорганизмов.
Материал и методы. Изучена минимальная ингибирующая концентрация наночастиц Ag, полученных методом металлопарового синтеза, на шести штаммах патогенных бактерий, включающих представителей грамположительной и грамоотрицательной групп. На микробиологическом анализаторе Vitek 2 Compact производилась идентификация каждого штамма и определение антибиотикограммы. Используемые в исследовании металлические наночастицы были получены методом металлопарового синтеза. Наночастицы Ag были изучены методами ПЭМ и РФЭС. Определение минимальной ингибирующей концентрации производилось методом серийных разведений с использованием стерильных 96-луночных планшетов и применением методики положительного и отрицательного контроля. Концентрация микроорганизмов контролировалась по стандарту мутности.
Результаты. Все используемые в исследовании патогенные штаммы бактерий характеризовались выраженной полиантибиотикорезистентностью, причём процент антибиотиков, по отношению к которым штамм был резистентен, колебался от 12,5 до 93,3%. Минимальная ингибирующая концентрация наночастиц серебра составила от 7,81 до 31,25 мкг/мл в зависимости от вида микроорганизма. Грамположительные микроорганизмы, в отличие от грамотрицательных, характеризовались меньшими значениями минимальной ингибирующей концентрации. Данные просвечивающей электронной и рентгеновской фотоэлектронной спектроскопии показали, что размер изученных наночастиц находится в пределах 2-15 нм.
Заключение. Наночастицы серебра с размерами 2-15 нм обладают противомикробным действием по отношению к клинически значимым, полиантибиотикорезистентным штаммам микроорганизмов. Минимальная ингибирующая концентрация наночастиц серебра в зависимости от штамма микроорганизма изменяется в пределах от 7,81 до 31,25 мкг/мл. Наночастицы серебра оказывают ингибирующее действие на микроорганизмы и в большей степени подавляют рост грамположительных по сравнению с грамотрицательными. Полученные материалы на основе наночастиц серебра представляют собой эффективную альтернативу применяемым в настоящее время антибактериальным препаратам.

Ключевые слова: серебро, металлические наночастицы, антибактериальные агенты, лекарственная устойчивость, тесты на чувствительность микробов, нанотехно
с. 38-45 оригинального издания
Список литературы
  1. Bennett JW, Chung KT. Alexander Fleming and the discovery of penicillin. Adv Appl Microbiol. 2001;49:163-84. doi: 10.1016/s0065-2164(01)49013-7
  2. Lobanovska M, Pilla G. Penicillin’s discovery and antibiotic resistance: lessons for the future? Yale J Biol Med. 2017 Mar 29;90(1):135-45. eCollection 2017 Mar. https://www.ncbi.nlm.nih.gov/pmc/articles/PMC5369031/
  3. Ahmad M, Khan AU. Global economic impact of antibiotic resistance: a review. J Glob Antimicrob Resist. 2019 Dec;19:313-16. doi: 10.1016/j.jgar.2019.05.024
  4. Федотчева ТА, Оленин АЮ, Старостин КМ, Лисичкин ГВ, Банин ВВ, Шимановский НЛ. Перспективы применения наночастиц золота, серебра и оксида железа для повышения эффективности химиотерапии опухолевых новообразований. Хим-Фарм Журн. 2015;49(4):11-22. doi: 10.1007/s11094-015-1260-6
  5. Gherasim O, Puiu RA, Bircă AC, Burdu?el AC, Grumezescu AM. An Updated Review on Silver Nanoparticles in Biomedicine. Nanomaterials (Basel). 2020 Nov 23;10(11):2318. doi: 10.3390/nano10112318
  6. Благитко ЕМ, Бурмистров ВА, Колесников АП, Михайлов ЮИ, Родионов ПП. Серебро в медицине. Новосибирск, РФ: Наука-Центр; 2004. 254 с.
  7. Abd-Elsalam KA, Alghuthaymi MA, Shami A, Rubina MS, Abramchuk SS, Shtykova EV, Vasil’kov AYu. Copper-chitosan nanocomposite hydrogels against aflatoxigenic Aspergillus flavus from dairy cattle feed. J Fungi (Basel). 2020 Jul 21;6(3):112. doi: 10.3390/jof6030112
  8. Vasil’kov AY, Dovnar RI, Smotryn SM, Iaskevich NN, Naumkin AV. Plasmon resonance of silver nanoparticles as a method of increasing their antibacterial action. Antibiotics (Basel). 2018 Aug 22;7(3):80. doi: 10.3390/antibiotics7030080
  9. Beamson G, Briggs D. High resolution XPS of organic polymers: The scienta ESCA300 database. Chichester, GB: Wiley; 1992. 306 p.
  10. Naumkin AV, Kraut-Vass A, Gaarenstroom SW, Powell CJ. NIST X-ray photoelectron spectroscopy database, NIST standard reference database number 20. Gaithersburg, USA: National Institute of Standards and Technology; 2000. doi: 10.18434/T4T88K
Адрес для корреспонденции:
230009, Республика Беларусь,
г. Гродно, ул. Горького, д. 80,
Гродненский государственный
медицинский университет,
2-я кафедра хирургических болезней,
тел.: +375 29 786-86-43,
e-mail: dr_ruslan@mail.ru,
Довнар Руслан Игоревич
Cведения об авторах:
Довнар Руслан Игоревич, к.м.н., доцент, доцент 2-й кафедры хирургических болезней, Гродненский государственный медицинский университет, г. Гродно, Республика Беларусь
https://orcid.org/0000-0003-3462-1465
Васильков Александр Юрьевич, к.х.н., доцент, ведущий научный сотрудник группы металлсодержащих гибридных материалов, Институт элементоорганических соединений им. А.Н. Несмеянова Российской академии наук, г. Mocква, Российская Федерация.
https://orcid.org/0000-0001-8225-647X
Соколова Татьяна Николаевна, к.м.н., доцент, доцент кафедры микробиологии, вирусологии и иммунологии, Гродненский государственный медицинский университет, г. Гродно, Республика Беларусь
https://orcid.org/0000-0002-4075-4515
Бутенко Иван Евгеньевич, старший инженер группы металлсодержащих гибридных материалов, Институт элементоорганических соединений им. А.Н. Несмеянова Российской академии наук, г. Mocква, Российская Федерация.
https://orcid.org/0000-0002-1741-6155
Смотрин Сергей Михайлович, д.м.н., профессор, профессор 2-й кафедры хирургических болезней, Гродненский государственный медицинский университет, г. Гродно, Республика Беларусь.
https://orcid.org/0000-0002-3944-1124
Иоскевич Николай Николаевич, д.м.н., профессор, профессор 1-й кафедры хирургических болезней, Гродненский государственный медицинский университет, г. Гродно, Республика Беларусь.
https://orcid.org/0000-0002-2954-0452

ДЕТСКАЯ ХИРУРГИЯ

Р.А. НАКОHЕЧHЫЙ, А.И. НАКОHЕЧHЫЙ

ОПТИМИЗАЦИЯ УХОДА ЗА ХИРУРГИЧЕСКОЙ РАHОЙ ПОСЛЕ УРЕТРОПЛАСТИКИ У ДЕТЕЙ С ГИПОСПАДИЕЙ

Львовский национальный медицинский университет имени Данила Галицкого, г. Львов,
Украина

Цель. Разработать оптимальную тактику ухода за послеоперационной раной у мальчиков с гипоспадией.
Материал и методы. Обследовано 128 пациентов с гипоспадией в возрасте от 11 месяцев до 7 лет. Основную группу А составили 83 (64,8%) пациента, у которых использовали специальную повязку. Она послойно включала мягкую полиамидную сетчатую двухстороннюю накладку с контактным силиконовым слоем с адгезивными свойствами, обильно обработанную антимикробной мазью с осмотическим эффектом, стерильные абсорбирующие салфетки из нетканого материала, циркулярно наложенный эластичный бинт и лейкопластырь из пористого нетканого материала. Повязку обычно удерживали до 5 дней. В группу В вошли 45 (35,2%) больных гипоспадией, которым накладывали обычную стерильную марлевую циркулярную повязку с антимикробной мазью. Смену марлевой повязки проводили ежедневно. По всем клиническим симптомам группы были сопоставимы по возрасту.
Заживление послеоперационной раны мониторили на протяжении 10 дней после уретропластики. Акцент делали на такие критерии: кровотечение с образованием гематомы, обильное выделение экссудата, гиперемия кожи полового члена, «мягкий» и «плотный» отек, подсыхающая корочка (струп), расхождение кожных швов, гипергрануляция и некроз.
Результаты. В группе А проблемы со стороны кожного лоскута и послеоперационной раны выявлены только у 17 (20,5%) мальчиков и то на второй-третий день после снятия специальной повязки. В послеоперационном периоде у 41 (91,1%) пациента группы В наблюдали «болезненные» изменения кожи в области послеоперационной раны, которые появлялись практически на следующий день после хирургического вмешательства.
Заключение. Использование специальной повязки отодвигает во времени контакт микробиот скомпрометированных хирургическим вмешательством тканей полового члена и внешней среды, что, вне всякого сомнения, улучшает заживление кожных лоскутов в раннем послеоперационном периоде, а соответственно снижает количество осложнений уретропластики.

Ключевые слова: гипоспадия, уретропластика, послеоперационная рана, заживление раны, повязка
с. 46-53 оригинального издания
Список литературы
  1. Leung AK, Robson WL. Hypospadias: an update. Asian J Androl. 2007 Jan;9(1):16-22. doi: 10.1111/j.1745-7262.2007.00243.x
  2. Kalfa N, Gaspari L, Ollivier M, Philibert P, Bergougnoux A, Paris F, Sultan C. Molecular genetics of hypospadias and cryptorchidism recent developments. Clin Genet. 2019 Jan;95(1):122-31. doi: 10.1111/cge.13432
  3. Friedman T, Shalom A, Hoshen G, Brodovsky S, Tieder M, Westreich M. Detection and incidence of anomalies associated with hypospadias. Pediatr Nephrol. 2008 Oct;23(10):1809-16. doi: 10.1007/s00467-008-0882-2
  4. Wu WH, Chuang JH, Ting YC, Lee SY, Hsieh CS. Developmental Anomalies and Disabilities Associated With Hypospadias. J Urol. 2002 Jul;168(Is 1):229-32. doi: 10.1016/S0022-5347(05)64898-7
  5. Bouty A, Ayers KL, Pask A, Heloury Y, Sinclair AH. The genetic and environmental factors underlying hypospadias. Sex Dev. 2015;9(5):239-59. doi: 10.1159/000441988
  6. van der Horst HJ, de Wall LL. Hypospadias, all there is to know. Eur J Pediatr. 2017 Apr;176(4):435-41. doi: 10.1007/s00431-017-2864-5
  7. Govers LC, Phillips TR, Mattiske DM, Rashoo N, Black JR, Sinclair A, Baskin LS, Risbridger GP, Pask AJ. A critical role for estrogen signaling in penis development. FASEB J. 2019 Sep;33(9):10383-10392. doi: 10.1096/fj.201802586RR
  8. Winship BB, Rushton HG, Pohl HG. In pursuit of the perfect penis: Hypospadias repair outcomes. J Pediatr Urol. 2017 Jun;13(3):285-288. doi: 10.1016/j.jpurol.2017.01.023
  9. Mureau MA, Slijper FM, Slob AK, Verhulst FC. Psychosocial functioning of children, adolescents, and adults following hypospadias surgery: a comparative study. J Pediatr Psychol. 1997 Jun;22(3):371-87. doi: 10.1093/jpepsy/22.3.371
  10. Duarsa GWK, Pratiwi DA, Tirtayasa PW, Yudiana W, Santosa KB, Oka AAG, Wahyuni S, Mahadewa TGB. Functional and cosmetic urethroplasty outcome, emotional stress after genital examination, post traumatic stress disorder, and ages at the time of urethroplasty as potential risk factor causing psychosocial disorder of hypospadia children. Open Access Maced J Med Sci. 2019 May 13;7(9):1452-55. doi: 10.3889/oamjms.2019.227. eCollection 2019 May 15.
  11. Andrich DE, Mundy AR. What is the best technique for urethroplasty? Eur Urol. 2008 Nov;54(5):1031-41. doi: 10.1016/j.eururo.2008.07.052
  12. Bhat A, Mandal AK. Acute postoperative complications of hypospadias repair. Indian J Urol. 2008 Apr;24(2):241-48. doi: 10.4103/0970-1591.40622
  13. Van Savage JG, Palanca LG, Slaughenhoupt BL. A prospective randomized trial of dressings versus no dressings for hypospadias repair. J Urol. 2000 Sep;164(3 Pt 2):981-83. doi: 10.1097/00005392-200009020-00015
  14. Narci A, Embleton DB, Boyaci EO, Mingir S, Cetinkurşun S. A practical offer for hypospadias dressing: Allevyn®. Afr J Paediatr Surg. 2011 Sep-Dec;8(3):272-74. doi: 10.4103/0189-6725.91658
  15. Méndez-Gallart R, García-Palacios M, Rodríguez-Barca P, Estévez-Martínez E, Carril AL, Bautista-Casasnovas A. A simple dressing for hypospadias surgery in children. Can Urol Assoc J. 2017 Jan-Feb;11(1-2):E58-E59. doi: 10.5489/cuaj.3930
  16. Esposito C, Del Conte F, Cerulo M, Coppola V, Esposito G, Ricciardi E, Crocetto F, Castagnetti M, Calignano A, Escolino M. Evaluation of efficacy of oxygen-enriched oil-based gel dressing in patients who underwent surgical repair of distal hypospadias: a prospective randomised clinical trial. World J Urol. 2021 Jun;39(6):2205-2215. doi: 10.1007/s00345-020-03419-1
  17. Tan KK, Reid CD. A simple penile dressing following hypospadias surgery. Br J Plast Surg. 1990 Sep;43(5):628-29. doi: 10.1016/0007-1226(90)90134-l
Адрес для корреспонденции:
79059, Украина,
г. Львов, ул. Пылыпа Орлыка, 4,
Львовский национальный медицинский университет имени Данила Галицкого,
кафедра детской хирургии,
тел. моб.: +38-067-254-33-71,
e-mail: nrostyslav@gmail.com,
Наконечный Ростислав Андреевич
Cведения об авторах:
Наконечный Ростислав Андреевич, к.м.н., ассистент кафедры детской хирургии, Львовский национальный медицинский университет имени Данила Галицкого, г. Львов, Украина.
https://orcid.org/0000-0003-0645-3361
Наконечный Андрей Иосифович, д.м.н., профессор кафедры детской хирургии, проректор по научной работе, Львовский национальный медицинский университет имени Данила Галицкого, г. Львов, Украина.
https://orcid.org/0000-0003-1402-6642

ТРАВМАТОЛОГИЯ И ОРТОПЕДИЯ

А.Э. МУРЗИЧ 1, О.А. СОКОЛОВСКИЙ 1, О.Л. ЭЙСМОHТ 1, Я.И. ИСАЙКИHА 2

ХИРУРГИЧЕСКОЕ ЛЕЧЕHИЕ HЕКРОЗА ГОЛОВКИ БЕДРЕHHОЙ КОСТИ С ПРИМЕHЕHИЕМ ПРЕДДИФФЕРЕHЦИРОВАHHЫХ МЕЗЕHХИМАЛЬHЫХ СТВОЛОВЫХ КЛЕТОК

Республиканский научно-практический центр травматологии и ортопедии 1, г. Минск,
Республиканский научно-практический центр детской онкологии, гематологии и иммунологии 2,
д. Боровляны, Минский район,
Республика Беларусь

Цель. Изучить результаты применения преддифференцированных мезенхимальных стволовых клеток (МСК) в лечении некроза головки бедренной кости (НГБК) у пациентов молодого возраста.
Материал и методы. Разработанный высокотехнологичный подход включал: эксфузию 50-70 мл костного мозга пациентов за 4 недели до имплантации; остеогенную дифференцировку и получение биомедицинского клеточного продукта; хирургическую декомпрессию и введение МСК в составе фибринового геля; реабилитацию. Операции выполнены 25 пациентам при I и II стадиях некроза по классификации ARCO. Средний возраст пациентов 34 [29; 45] года, мужчин – 20 (80%), женщин – 5 (20%). Результат оценивался по визуальной аналоговой шкале, шкале Harris, рентгенографии, МРТ.
Результаты. Срок наблюдения 41 [19; 59] месяц. Средний HHS до операции – 76 [68,8; 79] баллов, после лечения – 90 [78,9; 92] баллов. В 15 (60%) случаях получены отличные результаты, в 5 (20%) – хорошие, в 3 (12%) – удовлетворительные, в 2 (8%) – неудовлетворительные (прогрессирование коллапса). Уровень болевого синдрома был снижен с 40 [30; 50] до 10 [5; 25] баллов. Осложнений не было. В 92% случаев установлено сохранение сферичности головки бедренной кости и ширины суставной щели, купирование отека костного мозга, уменьшение размеров очага некроза, синовита по данным МРТ.
Заключение. Разработанный метод лечения НГБК с применением преддифференцированных МСК при отсутствии инфекционных триггеров в очаге поражения позволил сохранить 95% культивированных клеток в составе клеточного продукта, ввести его малоинвазивно, избегая необходимости забора костного трансплантата. Внедрение в практику клеточных технологий позволило получить положительные результаты лечения в 92 % случаев за счет улучшения клинического состояния пациентов по шкале Harris, уменьшения болевого синдрома по сравнению с исходным состоянием, не вызвало инфекционных, аллергических или иных осложнений в срок до 41[19; 59] месяца.

Ключевые слова: головка бедренной кости, некроз, мезенхимальные стволовые клетки, хирургическая декомпрессия, фибриновый гель
с. 54-60 оригинального издания
Список литературы
  1. Hernigou P, Trousselier M, Roubineau F, Bouthors C, Chevallier N, Rouard H, Flouzat-Lachaniette CH. Stem cell therapy for the treatment of hip osteonecrosis: a 30-year review of progress. Clin Orthop Surg. 2016 Mar;8(1):1-8. doi: 10.4055/cios.2016.8.1.1
  2. Ниязов РР, Драницына МА, Ясный ИЕ, Гавришина ЕВ, Васильев АН. Регулирование разработки и внедрения клеточных препаратов за рубежом: опыт Евросоюза и США. Гены и Клетки. 2020; XIV(1):78-87.doi: 10.23868/202003011
  3. Потапнев МП, Кравчук ЗИ, Филонюк ВА. Клеточные технологии лечения в медицинской практике организаций здравоохранения Республики Беларусь. Здравоохранение. 2020;(11):50-60. https://www.zdrav.by/pdf/2020/Zdrav11_20.pdf
  4. Hernigou P, Manicom O, Poignard A, Nogier A, Filippini P, De Abreu L. Core decompression with marrow stem cells. Oper Tech Orthop. 2004 Apr;14(2):68-74. doi: 10.1053/j.oto.2004.03.001
  5. Yan Z, Hang D, Guo C, Chen Z. Fate of mesenchymal stem cells transplanted to osteonecrosis of femoral head. J Orthop Res. 2009 Apr;27(4):442-46. doi: 10.1002/jor.20759
  6. Жерносеченко А, Исайкина Я, Михалевская Т. Выбор носителя и условий дифференцировки мезенхимальных стволовых клеток для восстановления костной ткани. Наука и Инновации. 2019;(5):58-61. doi: 10.29235/1818-9857-2019-5-58-61
  7. Gardeniers JWM. ARCO Committee on terminology and staging. Report on the committee meeting at Santiago de Compostella. ARCO News Lett. 1993;5:79-82.
  8. McCormack HM, Horne DJ, Sheather S. Clinical applications of visual analogue scales: a critical review. Psychol Med. 1988 Nov;18(4):1007-19. doi: 10.1017/s0033291700009934
  9. Harris WH. Traumatic arthritis of the hip after dislocation and acetabular fractures: treatment by mold arthroplasty. An end-result study using a new method of result evaluation. J Bone Joint Surg Am. 1969 Jun;51(4):737-55.
  10. Hernigou P, Beaujean F, Lambotte JC. Decrease in the mesenchymal stem-cell pool in the proximal femur in corticosteroid-induced osteonecrosis. J Bone Joint Surg Br. 1999 Mar;81(2):349-55. doi: 10.1302/0301-620x.81b2.8818
  11. Klingemann H, Matzilevich D, Marchand J. Mesenchymal Stem Cells - Sources and Clinical Applications. Transfus Med Hemother. 2008;35(4):272-277. doi: 10.1159/000142333
  12. Мурзич АЭ, Пашкевич ЛА, Жерносеченко АА. Экспериментальное обоснование способа аутотрансплантации мезенхимальных стволовых клеток для регенерации костной ткани головки бедра. Весцi Нац Акад Навук Беларусi. Сер. Мед Навук. 2020;17(1):7-19. doi: 10.29235/1814-6023-2020-17-1
  13. Mao Q, Jin H, Liao F, Xiao L, Chen D, Tong P. The efficacy of targeted intraarterial delivery of concentrated autologous bone marrow containing mononuclear cells in the treatment of osteonecrosis of the femoral head: a five year follow-up study. Bone. 2013 Dec;57(2):509-16. doi: 10.1016/j.bone.2013.08.022
  14. Homma Y, Kaneko K, Hernigou P. Supercharging allografts with mesenchymal stem cells in the operating room during hip revision. Int Orthop. 2014 Oct;38(10):2033-44. doi: 10.1007/s00264-013-2221-x
  15. Tabatabaee RM, Saberi S, Parvizi J, Mortazavi SM, Farzan M. Combining concentrated autologous bone marrow stem cells injection with core decompression improves outcome for patients with early-stage osteonecrosis of the femoral head: a comparative study. J Arthroplasty. 2015 Sep;30(9 Suppl):11-15. doi: 10.1016/j.arth.2015.06.022
Адрес для корреспонденции:
220024, Республика Беларусь,
г. Минск, ул. Кижеватова, д. 60/4,
Республиканский научно-практический
центр травматологии и ортопедии,
тел.: +375 17 212 32 88,
e-mail: mae77@list.ru,
Мурзич Александр Эдуардович
Cведения об авторах:
Мурзич Александр Эдуардович, к.м.н., заместитель директора по науке, Республиканский научно-практический центр травматологии и ортопедии, г. Минск, Республика Беларусь.
https://orcid.org/0000-0003-1625-7321
Соколовский Олег Анатольевич, д.м.н., профессор, заведующий лабораторией ортопедии и травматологии детского и подросткового возраста, Республиканский научно-практический центр травматологии и ортопедии, г. Минск,Республика Беларусь.
https://orcid.org/0000-0001-8749-3802
Эйсмонт Олег Леонидович, д.м.н., доцент, заведующий лабораторией патологии суставов и спортивной травмы, Республиканский научно-практический центр травматологии и ортопедии, г. Минск,
Республика Беларусь.
https://orcid.org/0000-0002-1002-4132
Исайкина Янина Ивановна, к.б.н., заведующая лабораторией клеточной биотехнологии и цитотерапии, Республиканский научно-практический центр детской онкологии, гематологии и иммунологии, Минский р-н, д. Боровляны, Республика Беларусь.
https://orcid.org/0000-0001-5196-8554

АHЕСТЕЗИОЛОГИЯ-РЕАHИМАТОЛОГИЯ

В.Ю. ЗЕМКО 1, В.К. ОКУЛИЧ 1, А.М. ДЗЯДЗЬКО 2

СТРУКТУРА МИКРОФЛОРЫ И ТРЕHДЫ АHТИБИОТИКОРЕЗИСТЕHТHОСТИ В РЕАHИМАЦИОHHО-АHЕСТЕЗИОЛОГИЧЕСКОМ ОТДЕЛЕHИИ МHОГОПРОФИЛЬHОГО УЧРЕЖДЕHИЯ

Витебский государственный медицинский университет 1, г. Витебск,
Минский научно-практический центр хирургии, трансплантологии и гематологии 2, г. Минск,
Республика Беларусь

Цель. Изучить структуру и антибиотикорезистентность микрофлоры в реанимационно-анестезиологическом отделении с учетом потребления антибактериальных лекарственных средств и схем антибактериальной терапии.
Материал и методы. Исследовано 41375 изолятов из различных локусов в реанимационно-анестезиологическом отделении многопрофильного учреждения здравоохранения с 2015 по начало 2021 г. Бактериологическое исследование клинических образцов проводилось на базе Республиканского научно-практического центра «Инфекция в хирургии». Первичная обработка результатов микробиологической лаборатории с анализом чувствительности микроорганизмов к антибиотикам проводилась с использованием международной компьютерной программы WHONET. Чувствительность к антибиотикам определяли диско-диффузионным методом на среде Мюллера-Хинтона и полуавтоматическим анализатором ATB Expression (BioMerieux, Франция). Анализ объема потребления антибактериальных лекарственных средств в реанимационно-анестезиологическом отделении проводился по отчетным данным аптеки, обслуживающей лечебное учреждение, в котором проводилось данное исследование.
Результаты. С 2015 по 2017 г. анализ состава микрофлоры позволил установить преобладание в реанимационно-анестезиологическом отделении P. aeruginosa (22,74%), Acinetobacter spp. (22,25 %) и K. pneumoniaе (16,11%), которые встречались в 1,6 раза чаще других микроорганизмов, в то время как в общей структуре многопрофильного стационара наиболее часто встречался S. aureus (20,96% и 20,05%, соответственно). С 2018 года стала доминировать карбапенем-резистентная K. pneumoniaе (23,01%). Тигециклин и колистат, отличавшиеся высокой эффективностью, были неэффективны в отношении 4,3% и 5,7% изолятов K. pneumoniaе в 2019 г., 10,2% и 13,7% изолятов в 2020 г., а также 37,3% и 39,6% изолятов – с января по май 2021 г., что связано с ростом потребления как тигециклина, так и колистата.
Заключение. С 2018 года наблюдается преобладание карбапенем-резистентных изолятов K. pneumoniaе в составе микрофлоры реанимационно-анестезиологического отделения, что связано с увеличением потребления антибактериальных лекарственных средств в данном отделении, ставшего причиной появления резистентных к колистату и тигециклину изолятов K. pneumoniaе.

Ключевые слова: микробиота; микробиом легких; инфекции; антибиотики; отделение интенсивной терапии; устойчивость к антибиотикам
с. 61-73 оригинального издания
Список литературы
  1. Walsh F. The multiple roles of antibiotics and antibiotic resistance in nature. Front Microbiol. 2013 Aug 27;4:255. doi: 10.3389/fmicb.2013.00255. eCollection 2013.
  2. Zou Y, Lian J, Di Y, You H, Yao H, Liu J, Dong Y. The quick loss of carbapenem susceptibility in Pseudomonas aeruginosa at intensive care units. Int J Clin Pharm. 2018 Feb;40(1):175-82. doi: 10.1007/s11096-017-0524-5
  3. Walkty A, Lagace-Wiens P, Adam H, Baxter M, Karlowsky J, Mulvey MR, McCracken M, Zhanel GG. Antimicrobial susceptibility of 2906 Pseudomonasaeruginosa clinical isolates obtained from patients in Canadian hospitals over a period of 8 years: results of the Canadian Ward surveillance study (CANWARD), 2008-2015. Diagn Microbiol Infect Dis. 2017 Jan;87(1):60-63. doi: 10.1016/j.diagmicrobio.2016.10.003
  4. Kidd TJ, Mills G, Sá-Pessoa J, Dumigan A, Frank CG, Insua JL, Ingram R, Hobley L, Bengoechea JA. A Klebsiella pneumoniae antibiotic resistance mechanism that subdues host defences and promotes virulence. EMBO Mol Med. 2017 Apr;9(4):430-47. doi: 10.15252/emmm.201607336
  5. Raith EP, Udy AA, Bailey M, McGloughlin S, MacIsaac C, Bellomo R, Pilcher DV; Australian and New Zealand Intensive Care Society (ANZICS) Centre for Outcomes and Resource Evaluation (CORE). Prognostic Accuracy of the SOFA Score, SIRS Criteria, and qSOFA Score for In-Hospital Mortality Among Adults With Suspected Infection Admitted to the Intensive Care Unit. JAMA. 2017 Jan 17;317(3):290-300. doi: 10.1001/jama.2016.20328
  6. ВОЗ публикует список бактерий, для борьбы с которыми срочно требуется создание новых антибиотиков [Электронный ресурс]. Женева: ВОЗ [дата обращения: 2021 Апр 10]. Available from: https://www.who.int/ru/news-room/detail/27-02-2017-who-publishes-list-of-bacteria-for-which-new-antibiotics-are-urgently-needed
  7. Pentima MC, Chan S, Briody C, Power M, Hossain J. Driving forces of vancomycin-resistant E. faecium and E. faecalis blood-stream infections in children. Antimicrob Resist Infect Control. 2014;3:29. doi: 10.1186/2047-2994-3-29
  8. Карпов ИА, Бердыклычев БА, Зарецкий СВ, Сивец НФ, Дзядзько АМ, Гавриленко ЛН, Давидовская ЛИ, Рожко ЮВ, Тонко ОВ, Варивода ЕБ, Захаренко, АГ, Дашкевич АМ, Титов ЛП. Стратегия борьбы с антибиотикорезистентностью микроорганизмов. Здравоохранение [Интернет]. 2017 Окт;(10). http://www.zdrav.by/kruglyj-stol/strategiya-borby-s-antibiotikorezistentnostyu-mikroorganizmov
  9. Титов ЛП, Горбунов ВА, Хархаль АН, Давыдов АВ, Левшина НН. Тренды резистентности к антибиотикам возбудителей инвазивных бактериальных заболеваний: микробиологический мониторинг 2012–2017 гг. Здравоохранение. 2019;(7):5-16. https://www.zdrav.by/pdf/2019/Zdrav7_19.pdf
  10. Лагун ЛВ, Жаворонок СВ. Молекулярно-генетическая технология выявления резистентности энтеробактерий к бета-лактамным антибиотикам на основе геноиндикации бета-лактамаз расширенного спектра. Лаб Диагностика. 2012;(2):74-85.
  11. Ugrakli S, Okumuş EÜ, Doğan MJ. Identification of bacterial pathogens in blood specimens andantibiotic resistance profiles of Acinetobacter species in a University hospital. J Clinical Microbiol Biochem Technol. 2017;2(1):4-8. doi: 10.17352/jcmbt.000017
  12. Горбич ЮЛ, Карпов ИА, Кречикова ОИ. Инфекции, вызванные Acinetobacter baumannii: факторыриска, диагностика, лечение, подходы к профилактике. Мед Новости. 2011;(5):31-39. http://www.mednovosti.by/journal.aspx?article=4987
  13. Peterson LR. Bad bugs, no drugs: no ESCAPE revisited. Clin Infect Dis. 2009 Sep 15;49(6):992-93. doi: 10.1086/605539
  14. Meletis G, Oustas E, Botziori C, Kakasi E, Koteli A. Containment of carbapenem resistance rates of Klebsiella pneumoniae and Acinetobacter baumannii in a Greek hospital with a concomitant increase in colistin, gentamicin and tigecycline resistance. New Microbiol. 2015 Jul;38(3):417-21.
  15. van Duin D, Cober E, Richter SS, Perez F, Kalayjian RC, Salata RA, Evans S, Fowler VG, Bonomo RA, Kaye KS. Residence in Skilled Nursing Facilities Is Associated with Tigecycline Nonsusceptibility in Carbapenem-Resistant Klebsiella pneumoniae. Infect Control Hosp Epidemiol. 2015 Aug;36(8):942-8. doi: 10.1017/ice.2015.118
  16. Sharma SK, Hadda V, Mathur P, Gulati V, Sahney C. Profile of micro-organisms in intensive care unit of a level-1 trauma centre: a retrospective study. Indian J Crit Care Med. 2013 Mar;17(2):87-91. doi: 10.4103/0972-5229.114827
Адрес для корреспонденции:
210009, Республика Беларусь,
г. Витебск, пр-т Фрунзе, д. 27 а,
Витебский государственный
медицинский университет,
тел. моб.: +375291460799,
e-mail: viktoryiazia@gmail.com,
Земко Виктория Юрьевна
Cведения об авторах:
Земко Виктория Юрьевна, к.м.н., доцент кафедры анестезиологии и реаниматологии с курсом ФПК и ПК Витебского государственного медицинского университета, г. Витебск, Республика Беларусь.
https://orcid.org/0000-0002-6753-2074
Окулич Виталий Константинович, к.м.н., доцент, доцент кафедры клинической микробиологии Витебского государственного медицинского университета, г. Витебск, Республика Беларусь.
https://orcid.org/0000-0002-8226-6405
Дзядзько Александр Михайлович, д.м.н., доцент, заведующий отделом анестезиологии и реанимации Минского научно-практического центра хирургии, трансплантологии и гематологии, г. Минск, Республика Беларусь.
https://orcid.org/0000-0003-1965-1850

ОБЗОРЫ

С.С. МАСКИH, В.В. АЛЕКСАHДРОВ, В.В. МАТЮХИH, Л.А. ИГОЛКИHА

ЗАКРЫТАЯ ТРАВМА ПОДЖЕЛУДОЧHОЙ ЖЕЛЕЗЫ, ЖЕЛЧHОГО ПУЗЫРЯ И ВHЕПЕЧЁHОЧHЫХ ЖЕЛЧHЫХ ПРОТОКОВ: ТАКТИКА, ОСHОВАHHАЯ HА ПРИHЦИПАХ ДОКАЗАТЕЛЬHОЙ МЕДИЦИHЫ

Волгоградский государственный медицинский университет
Министерства здравоохранения Российской Федерации, г. Волгоград,
Российская Федерация

Цель. Оптимизация лечебно-диагностической тактики при закрытой травме поджелудочной железы, желчного пузыря и внепеченочных желчных протоков.
Материал и методы. В статье изложены сведения, полученные в результате изучения отечественной и зарубежной литературы 2015-2020 гг. из электронных баз медицинской литературы PubMed, Cochrane Library, Scopus, Embase, Science Direct, Google Scholar Search, eLibrary с использованием первичной стратегии поиска: повреждение поджелудочной железы, травматический панкреатит, повреждение желчного пузыря, повреждение внепеченочных желчных протоков, тактика многоэтапного хирургического лечения, закрытая травма живота, лечебно-диагностический алгоритм, консервативное (неоперативное) ведение, с последующим исключением из запроса экспериментальных исследований и случаев открытой травмы. Произведен анализ многоцентровых исследований, систематических обзоров, метаанализов, больших серий случаев, оригинальных статей и рандомизированных контролируемых исследований с указанием уровней доказательств и силы рекомендаций. Предложен оригинальный алгоритм диагностики и лечебной тактики, описана концепция damage control, уточнены показания к методам диагностики, консервативному лечению, видам оперативных, эндоваскулярных и малоинвазивных вмешательств в зависимости от степени тяжести травмы органов по классификации Американской Ассоциации Хирургии травмы (AAST – The American Associationfor the Surgery of Trauma) (табл.).
Результаты. Стандартизирован лечебно-диагностический алгоритм при сочетанной закрытой травме поджелудочной железы, желчного пузыря и внепеченочных желчных протоков, уточнены показания для малоинвазивных и открытых вмешательств у данной категории пациентов.
Заключение. Четкое знание лечебно-диагностического алгоритма, показаний к эндоваскулярным, малоинвазивным методикам и открытым вмешательствам, выбор тактики исходя из состояния пострадавшего, давности травмы, возможных осложнений способны улучшить результаты лечения.

Ключевые слова: закрытая травма живота, повреждение поджелудочной железы, повреждение желчного пузыря, повреждение внепеченочных желчных протоков, такти
с. 74-85 оригинального издания
Список литературы
  1. Морозов ДА, Пименова ЕС, Филиппов ЮВ, Городков СЮ, Николаев АВ, Масевкин ВГ, Матвеев СА. Полный травматический разрыв поджелудочной железы с циркулярным разрывом желудка. Дет Хирургия. 2015;19(1):51-53. https://www.elibrary.ru/item.asp?id=23052115
  2. Малков ИС, Игнатьева НМ. Диагностика и тактика хирургического лечения пострадавших с травмой поджелудочной железы. Практ Медицина. 2016;(5):80-82. http://pmarchive.ru/el-arxiv/arxiv-za-2016-god/prakticheskaya-medicina-5-97-2016-xirurgiya/
  3. Сингаевский АБ, Щербак СГ, Сигуа БВ, Врублевский НМ, Никифоренко АВ, Курков АА, Дюков АК. Особенности лечебно-диагностической тактики при закрытой травме живота с повреждением поджелудочной железы. Неотлож Мед Помощь. Журн им НВ Склифосовского. 2017;6(1):20-23. doi: 10.23934/2223-9022-2017-6-1-20-23
  4. Coccolini F, Kobayashi L, Kluger Y, Moore EE, Ansaloni L, Biffl W, Leppaniemi A, Augustin G, Reva V, Wani I, Kirkpatrick A, Abu-Zidan F, Cicuttin E, Fraga GP, Ordonez C, Pikoulis E, Sibilla MG, Maier R, Matsumura Y, Masiakos PT, Khokha V, Mefire AC, Ivatury R, Favi F, Manchev V, Sartelli M, Machado F, Matsumoto J, Chiarugi M, Arvieux C, Catena F, Coimbra R; WSES-AAST Expert Panel. Duodeno-pancreatic and extrahepatic biliary tree trauma: WSES-AAST guidelines. World J Emerg Surg. 2019 Dec 11;14:56. doi: 10.1186/s13017-019-0278-6. eCollection 2019.
  5. Ho VP, Patel NJ, Bokhari F, Madbak FG, Hambley JE, Yon JR, Robinson BR, Nagy K, Armen SB, Kingsley S, Gupta S, Starr FL, Moore HR 3rd, Oliphant UJ, Haut ER, Como JJ. Management of adult pancreatic injuries: A practice management guideline from the Eastern Association for the Surgery of Trauma. J Trauma Acute Care Surg. 2017 Jan;82(1):185-99. doi: 10.1097/TA.0000000000001300
  6. Shah S, Khosa F, Rai S, McLaughlin P, Louis L, Nicolaou S. Imaging blunt pancreatic and duodenal trauma [Electronic resource]. Appl Radiol. 2016;45(11):22-28. Available from: https://appliedradiology.com/articles/imaging-blunt-pancreatic-and-duodenal-trauma
  7. Смоляр АН, Агаханова КТ. Закрытая травма живота. Повреждения поджелудочной железы. Часть 4. Хирургия. Журн им НИ Пирогова. 2016;(8):4-12. doi: 10.17116/hirurgia201684-12
  8. Ермолов АС, Благовестнов ДА, Иванов ПА, Гришин АВ, Титова ГП, Агаханова КТ. Хирургия повреждений поджелудочной железы. Хирургия. Журн им НИ. Пирогова. 2015;(10):9-15. doi: 10.17116/hirurgia2015109-15
  9. Ибадильдин АС, Мухамеджанов ГК, Русланулы К, Магауина АК, Криволапова ДА, Бектемир АЕ. Клинический опыт лечения больных при повреждении поджелудочной железы. Актуал Науч Исследования в Соврем Мире. 2018;(11-6):111-13. https://www.elibrary.ru/item.asp?id=36587346
  10. Kollár D, Molnár FT, Zsoldos P, Oláh A. Diagnosis and management of blunt pancreatic trauma. Orv Hetil. 2018 Jan;159(2):43-52. doi: 10.1556/650.2018.30938
  11. Potoka DA, Gaines BA, Leppäniemi A, Peitzman AB. Management of blunt pancreatic trauma: what’s new? Eur J Trauma Emerg Surg. 2015 Jun;41(3):239-50. doi: 10.1007/s00068-015-0510-3
  12. Восканян СЭ, Найденов ЕВ, Утешев ИЮ, Артемьев АИ, Удалов ЮД, Забелин МВ. Зависимость непосредственных результатов корпорокаудальных резекций поджелудочной железы от способов формирования и обработки ее культи. Вестн Хирургии им ИИ Грекова. 2018;177(4):23-27. doi: 10.24884/0042-4625-2018-177-4-23-27
  13. Byrge N, Heilbrun M, Winkler N, Sommers D, Evans H, Cattin LM, Scalea T, Stein DM, Neideen T, Walsh P, Sims CA, Brahmbhatt TS, Galante JM, Phan HH, Malhotra A, Stovall RT, Jurkovich GJ, Coimbra R, Berndtson AE, O’Callaghan TA, Gaspard SF, Schreiber MA, Cook MR, Demetriades D, Rivera O, Velmahos GC, Zhao T, Park PK, Machado-Aranda D, Ahmad S, Lewis J, Hoff WS, Suleiman G, Sperry J, Zolin S, Carrick MM, Mallory GR, Nunez J, Colonna A, Enniss T, Nirula R. An AAST-MITC analysis of pancreatic trauma: Staple or sew? Resect or drain? J Trauma Acute Care Surg. 2018 Sep;85(3):435-43. doi: 10.1097/TA.0000000000001987
  14. Sanford Z, Abdolmaali K, Robinson D, Denning D. Blunt trauma: An uncommon cause of common bile duct injury. Trauma Case Rep. 2015 Nov 6;1(5-8):44-48. doi: 10.1016/j.tcr.2015.10.004. eCollection 2015 Oct.
  15. Adler DG, Papachristou GI, Taylor LJ, McVay T, Birch M, Francis G, Zabolotsky A, Laique SN, Hayat U, Zhan T, Das R, Slivka A, Rabinovitz M, Munigala S, Siddiqui AA. Clinical outcomes in patients with bile leaks treated via ERCP with regard to the timing of ERCP: a large multicenter study. Gastrointest Endosc. 2017 Apr;85(4):766-72. doi: 10.1016/j.gie.2016.08.018
  16. Астахов АГ, Власюк ИВ, Навальнева КВ. Изолированная травма желчного пузыря (случай из практики). Избранные Вопр Суд-Мед Экспертизы. 2018;(17):21-24. https://www.forens-med.ru/book.php?id=5580
  17. LeBedis CA, Bates DDB, Soto JA. Iatrogenic, blunt, and penetrating trauma to the biliary tract. Abdom Radiol (NY). 2017 Jan;42(1):28-45. doi: 10.1007/s00261-016-0856-y
  18. Temiz A, Ezer SS, Gedikoğlu M, Serin E, Ince E, Gezer HÖ, Canan MO, Hiçsönmez A. Management of traumatic bile duct injuries in children. Pediatr Surg Int. 2018 Aug;34(8):829-836. doi: 10.1007/s00383-018-4295-4
  19. Bouillon B, Pieper D, Flohé S, Eikermann M, Prengel P, Ruchholtz S, Stürmer KM, Waydhas C, Trentzsch H, Lendemans S, Huber-Wagner S, Rixen D, Hildebrand F, Mosch C, Nienaber U, Sauerland S, Schenkel M, Walgenbach M, Becker M, Bühn S, Heß S, Jaschinski T, Mathes T, Bernhard M, Böttiger BW, Bürger T, Fischer M, Gutwald R, Hohenfellner M, Klar E, Rickels E, Schüttler J, Seekamp A, Swoboda L, Vogl TJ, Waldfahrer F, Wüstner-Hofmann M, Bader W, Düran A, Gathof B, Geyer L, Häske D, Helm M, Hilbert-Carius P, Kanz K-G, Kneser U, Lehnhardt M, Lier H, Lott C, Ludwig C, Marzi I, Mauer UM, Schäfer J, Schwab R, Siemers F, Strasser E, Wessel L, Wirth S, Wurmb T.Level 3 guideline on the treatment of patients with severe/multiple injuries. Eur J Trauma Emerg Surg. 2018 Apr;44(Suppl 1):3-271. doi: 10.1007/s00068-018-0922-y
  20. Zieleskiewicz L, Fresco R, Duclos G, Antonini F, Mathieu C, Medam S, Vigne C, Poirier M, Roche PH, Bouzat P, Kerbaul F, Scemama U, Bège T, Thomas PA, Flecher X, Hammad E, Leone M. Integrating extended focused assessment with sonography for trauma (eFAST) in the initial assessment of severe trauma: Impact on the management of 756 patients. Injury. 2018 Oct;49(10):1774-80. doi: 10.1016/j.injury.2018.07.002
  21. Spahn DR, Bouillon B, Cerny V, Duranteau J, Filipescu D, Hunt BJ, Komadina R, Maegele M, Nardi G, Riddez L, Samama CM, Vincent JL, Rossaint R. The European guideline on management of major bleeding and coagulopathy following trauma: fifth edition. Crit Care. 2019 Mar 27;23(1):98. doi: 10.1186/s13054-019-2347-3
  22. Bouzat P, Valdenaire G, Gauss T, Charbit J, Arvieux C, Balandraud P, Bobbia X, David J-S, Frandon J, Garrigue D, Long J-A, Pottecher J, Prunet B, Simonnet B, Tazarourte K, Trésallet C, Vaux J, Viglino D, Villoing B, Zieleskiewicz L, Gil-Jardiné C, Weiss E. Early management of severe abdominal trauma. Anaesth Crit Care Pain Med. 2020;39(2):269-77. doi: 10.1016/j.accpm.2019.12.001
  23. Галимзянов ФB, Гафуров ББ, Прудков МИ. Оптимизация миниинвазивного лечения при обширном панкреатогенном некрозе. Анналы Хирург Гепатологии. 2016;21(2):73-79. doi: 10.16931/1995-5464.2016273-79
  24. Охотников ОИ, Григорьев СН, Яковлева МВ. Рентгенохирургия повреждений внепеченочных желчных протоков. Анналы Хирург Гепатологии. 2015;20(4):68-73. doi: 10.16931/1995-5464.2015468-73
  25. Bekker W, Smith M, Kong VY, Bruce JL, Laing G, Manchev V, Clarke DL. Isolated free fluid on computed tomography for blunt abdominal trauma. Ann R Coll Surg Engl. 2019 Nov;101(8):552-57. doi: 10.1308/rcsann.2019.0078
  26. Leppäniemi A. Nonoperative management of solid abdominal organ injuries: From past to present. Scand J Surg. 2019 Jun;108(2):95-100. doi: 10.1177/1457496919833220
  27. Ревишвили АШ, Кригер АГ, Горин ДС, Варава АБ, Гоев АА, Берелавичус СВ, Смирнов АВ, Ахтанин ЕА. Эндоваскулярные вмешательства в хирургии поджелудочной железы. Хирургия. Журн им НИ Пирогова. 2018;(4):4-16. doi: 10.17116/hirurgia201844-16
  28. Matsevych O, Koto M, Balabyeki M, Aldous C. Trauma laparoscopy: when to start and when to convert? Surg Endosc. 2018 Mar;32(3):1344-52. doi: 10.1007/s00464-017-5812-6
  29. Jung PY, Park EJ, Shim H, Jang JY, Bae KS, Kim S. Findings requiring immediate surgery in blunt abdominal trauma patients with isolated free fluid without solid organ injury on abdominal computed tomography: Retrospective laboratory, clinical and radiologic analysis. A case control study. Int J Surg. 2020 May;77:146-53. doi: 10.1016/j.ijsu.2020.03.022
  30. Пугаев АВ, Покровский КА, Ачкасов ЕЕ, Калачев СВ, Александров ЛВ, Посудневский ВИ, Калачев ОА, Пугаев ДМ. Влияние способа декомпрессии желчных протоков после их повреждения на результаты восстановительных операций. Хирургия. Журн им НИ Пирогова. 2018;(8):19-24. doi: 10.17116/hirurgia2018819
  31. Старков ЮГ, Выборный МИ, Джантуханова СВ, Андрейцева ОИ, Хон ЕИ. Эндоскопическое лечение хирургической травмы правого долевого желчного протока у пациентки 53 лет. Эксперим и Клин Гастроэнтерология. 2018;4(152):107-110. https://www.nogr.org/jour/article/view/601
  32. Jeroukhimov I, Zoarets I, Wiser I, Shapira Z, Abramovich D, Nesterenko V, Halevy A. Diagnostic Use of Endoscopic Retrograde Cholangiopancreatectography for Pancreatic Duct Injury in Trauma Patients. Isr Med Assoc J. 2015 Jul;17(7):401-4.
  33. Duchesne J, Inaba K, Ali Khan M, editors. Damage Control in Trauma Care. An Evolving Comprehensive Team Approach. Switzerland: Springer International Publishing; 2018. 281 p. doi: 10.1007/978-3-319-72607-6
  34. Горский ВА, Эттингер АП, Воленко АВ, Фаллер АП, Поливода МД, Армашов ВП. Применение клеевого покрытия при вмешательствах на поджелудочной железе. Анналы Хирург Гепатологии. 2017;22(4):39-45. doi: 10.16931/1995-5464.2017439-45
  35. Иголкина ЛА, Маскин СС, Александров ВВ. Применение криохирургической технологии в лечении острого панкреатита. В кн: Ревишвили АШ, Чжао АВ, Ионкин ДА, ред. Криохирургия. Москва, РФ: ГЭОТАР- Медиа; 2019. с. 284-309.
  36. Королёв МП, Аванесян РГ, Михайлова ЕА, Лепехин ГМ, Турянчик ММ. Миниинвазивное лечение панкреатогенных забрюшинных абсцессов. Вестн Хирургии им ИИ Грекова. 2016;175(1):83-87. doi: 10.24884/0042-4625-2016-175-1-83-87
  37. Соколов ЮЮ, Ефременков АМ, Шувалов МЭ, Акопян МК, Ковальков КА, Васильев АМ, Полуконова ЕВ, Шапкина АН. Отсроченная панкреатодуоденальная резекция у девочки в возрасте 4 лет с тяжёлой сочетанной травмой и отрывом двенадцатиперстной кишки. Дет Хирургия. 2019;23(1S4):58. https://elibrary.ru/item.asp?id=36897083
  38. Pereira R, Vo T, Slater K. Extrahepatic bile duct injury in blunt trauma: A systematic review. J Trauma Acute Care Surg. 2019 May;86(5):896-901. doi: 10.1097/TA.0000000000002186
  39. Ромащенко ПН, Майстренко НА, Прядко АС, Алиев АК. Травмы желчевыводящих протоков и системный подход к их устранению. Анналы Хирург Гепатологии. 2019;24(1):71-82. doi: 10.16931/1995-5464.2019171-82
  40. Шаповальянц СГ, Паньков АГ, Будзинский СА, Бахтиозина ДВ. Эндоскопическое лечение последствий высокой интраоперационной травмы протока правой доли печени. Анналы Хирург Гепатологии. 2019;24(4):139-46. doi: 10.16931/1995-5464.20194139-146
  41. Ким ИЮ, Панов ВВ, Панов АВ. Хирургическая тактика при огнестрельных и травматических повреждениях поджелудочной железы (обзор литературы). Воен-Мед Журн. 2020;341(2):31-39. https://voenmed.ric.mil.ru/upload/site229/uVb9zjXxGy.pdf
Адрес для корреспонденции:
400131, Российская Федерация,
г. Волгоград, площадь Павших Борцов, д. 1,
Волгоградский государственный медицинский университет Минздрава России,
кафедра госпитальной хирургии,
тел. 8-91-78-30-49-89,
e-mail: 79178304989@yandex.ru,
Александров Василий Владимирович
Cведения об авторах:
Маскин Сергей Сергеевич, д.м.н., профессор, заведующий кафедрой госпитальной хирургии, Волгоградский государственный медицинский университет Минздрава России, г. Волгоград, Российская Федерация.
https://orcid.org/0000-0002-5275-4213
Александров Василий Владимирович, к.м.н., доцент кафедры госпитальной хирургии, Волгоградский государственный медицинский университет Минздрава России, г. Волгоград, Российская Федерация.
https://orcid.org/0000-0001-8364-8934
Матюхин Виктор Викторович, к.м.н., доцент кафедры госпитальной хирургии, Волгоградский государственный медицинский университет Минздрава России, г. Волгоград, Российская Федерация.
https://orcid.org/0000-0002-8195-6172
Иголкина Любовь Александровна, к.м.н., ассистент кафедры госпитальной хирургии, Волгоградский государственный медицинский университет Минздрава России, г. Волгоград, Российская Федерация.
https://orcid.org/0000-0003-1409-6165

Э.К. АГАЕВ, З.Э. ИСМАЙЫЛОВА, Т.Э. МАМЕДОВ

ПРОФИЛАКТИКА HЕСОСТОЯТЕЛЬHОСТИ ШВОВ КИШЕЧHЫХ АHАСТОМОЗОВ

Азербайджанский медицинский университет, г. Баку,
Республика Азербайджан

Несостоятельность швов кишечных анастомозов является одной из актуальных и опасных проблем в абдоминальной хирургии. Эта проблема не только осложняет течение раннего послеоперационного периода и увеличивает финансовые затраты, а также является главной причиной летальных исходов, показатель которых остается довольно высоким при распространенном перитоните. Проблема негерметичности создаваемых кишечных анастомозов в послеоперационном периоде заставляет исследователей разрабатывать различные методы предоперационной подготовки больных, способы по укреплению линии сшиваемых концов кишечника, новые протоколы ведения больных в послеоперационном периоде. Несмотря на применение атравматичной и малоинвазивной техники, различных сшивающих аппаратов и биополимеров разного состава, частота данного осложнения остается довольно высокой. Анализ литературы демонстрирует тенденцию сохранения высоких показателей несостоятельности швов кишечных анастомозов. Актуальность данной проблемы особо ярко чувствуется при экстренной и неотложной резекции кишечника на фоне острой кишечной непроходимости, раковой интоксикации и распространенного перитонита. Считается что риск развития несостоятельности анастомозов обусловлен возрастом и общим состоянием пациента, характером основного заболевания, присутствием сопутствующих хронических заболеваний, видом хирургической операции, а также методом и локализацией создаваемого анастомоза. Несмотря на то что источников, посвященных анализу причин данной проблемы, очень много, единого мнения о значимости факторов риска и эффективности применяемых методов профилактики не существует. В ряде публикаций имеются противоречивые данные об эффективности некоторых методов профилактики. Из этого следует, что решение данной проблемы нуждается в проведении новых фундаментальных научно-исследовательских работ.

Ключевые слова: несостоятельность швов кишечных анастомозов, резекция кишечника, профилактика несостоятельности швов, факторы риска, укрепление зоны ана
с. 86-94 оригинального издания
Список литературы
  1. Phillips B. Reducing gastrointestinal anastomotic leak rates : review of challenges and solutions. Open Access Surg. 2016 Jan22;9:5-14. doi: 10.2147/OAS.S54936
  2. Turrentine FE, Denlinger CE, Simpson VB, Garwood RA, Guerlain S, Agrawal A, Friel CM, LaPar DJ, Stukenborg GJ, Jones RS. Morbidity, mortality, cost, and survival estimates of gastrointestinal anastomotic leaks. J Am Coll Surg. 2015 Feb;220(2):195-206. doi: 10.1016/j.jamcollsurg.2014.11.002
  3. Ataro G. Epidural block and neostigmine cause anastomosis leak. Open Acsess Surg. 2016 May 20;9:37-38. doi: 10.2147/OAS.S105594
  4. Chaouch MA, Kellil T, Jeddi C, Saidani A, Chebbi F, Zouari K. How to Prevent Anastomotic Leak in Colorectal Surgery? A Systematic Review. Ann Coloproctol. 2020 Aug;36(4):213-22. doi: 10.3393/ac.2020.05.14.2
  5. Subendran J, Siddiqui N, Victor JC, McLeod RS, Govindarajan A. NSAID use and anastomotic leaks following elective colorectal surgery: a matched case-control study. J Gastrointest Surg. 2014 Aug;18(8):1391-97. doi: 10.1007/s11605-014-2563-8
  6. Placer C, Enríquez-Navascués JM, Elorza G, Timoteo A, Mugica JA, Borda N, Saralegui Y, Elósegui JL. Preventing complications in colorectal anastomosis: results of a randomized controlled trial using bioabsorbable staple line reinforcement for circular stapler. Dis Colon Rectum. 2014 Oct;57(10):1195-201. doi: 10.1097/DCR.0000000000000207
  7. Park JS, Huh JW, Park YA, Cho YB, Yun SH, Kim HC, Lee WY. Risk factors of anastomotic leakage and long-term survival after colorectal surgery. Medicine (Baltimore). 2016 Feb;95(8):e2890. doi: 10.1097/MD.0000000000002890
  8. Bakker IS, Grossmann I, Henneman D, Havenga K, Wiggers T. Risk factors for anastomotic leakage and leak-related mortality after colonic cancer surgery in a nationwide audit. Br J Surg. 2014 Mar;101(4):424-32; discussion 432. doi: 10.1002/bjs.9395
  9. Parthasarathy M, Greensmith M, Bowers D, Groot-Wassink T. Risk factors for anastomotic leakage after colorectal resection: a retrospective analysis of 17 518 patients. Colorectal Dis. 2017 Mar;19(3):288-98. doi: 10.1111/codi.13476
  10. Lynch NP, Boyle E, Kavanagh EG. Selective vs Nonselective Nonsteroidal Anti-inflammatory Drugs and Anastomotic Leakage After Colorectal Surgery. JAMA Surg. 2015 Jul;150(7):685. doi: 10.1001/jamasurg.2015.0641
  11. Sammour T, Hill AG. Should colorectal surgeons continue to use nonsteroidal anti-inflammatory drugs? ANZ J Surg. 2017 Nov;87(11):861-62. doi: 10.1111/ans.13621
  12. Milne TGE, Jaung R, O’Grady G, Bissett IP. Nonsteroidal anti-inflammatory drugs reduce the time to recovery of gut function after elective colorectal surgery: a systematic review and meta-analysis. Colorectal Dis. 2018 Aug;20(8):O190-O198. doi: 10.1111/codi.14268
  13. Kverneng Hultberg D, Angenete E, Lydrup ML, Rutegard J, Matthiessen P, Rutegard M. Nonsteroidal anti-inflammatory drugs and the risk of anastomotic leakage after anterior resection for rectal cancer. Eur J Surg Oncol. 2017 Oct;43(10):1908-14. doi: 10.1016/j.ejso.2017.06.010
  14. Rutegard M, Westermark S, Kverneng Hultberg D, Haapamäki M, Matthiessen P, Rutegard J. Non-steroidal anti-inflammatory drug use and risk of anastomotic leakage after anterior resection: a protocol-based study. Dig Surg. 2016;33(2):129-35. doi: 10.1159/000443216
  15. Slim K, Joris J, Beloeil H. Groupe Francophone de Réhabilitation Améliorée après Chirurgie (GRACE). Colonic anastomoses and non-steroidal anti-inflammatory drugs. J Visc Surg. 2016 Aug;153(4):269-75. doi: 10.1016/j.jviscsurg.2016.06.011
  16. Shogan BD, Belogortseva N, Luong PM, Zaborin A, Lax S, Bethel C, Ward M, Muldoon JP, Singer M, An G, Umanskiy K, Konda V, Shakhsheer B, Luo J, Klabbers R, Hancock LE, Gilbert J, Zaborina O, Alverdy JC. Collagen degradation and MMP9 activation by Enterococcus faecalis contribute to intestinal anastomotic leak. Sci Transl Med. 2015 May 6;7(286):286ra68. doi: 10.1126/scitranslmed.3010658
  17. Shakhsheer BA, Versten LA, Luo JN, Defazio JR, Klabbers R, Christley S, Zaborin A, Guyton KL, Krezalek M, Smith DP, Ajami NJ, Petrosino JF, Fleming ID, Belogortseva N, Zaborina O, Alverdy JC. Morphine promotes colonization of anastomotic tissues with collagenase - producing enterococcus faecalis and causes leak. J Gastrointest Surg. 2016 Oct;20(10):1744-51. doi: 10.1007/s11605-016-3237-5
  18. Wiegerinck M, Hyoju SK, Mao J, Zaborin A, Adriaansens C, Salzman E, Hyman NH, Zaborina O, van Goor H, Alverdy JC. Novel de novo synthesized phosphate carrier compound ABA-PEG20k-Pi20 suppresses collagenase production in Enterococcus faecalis and prevents colonic anastomotic leak in an experimental model. Br J Surg. 2018 Sep;105(10):1368-76. doi: 10.1002/bjs.10859
  19. Hyoju SK, Klabbers RE, Aaron M, Krezalek MA, Zaborin A, Wiegerinck M, Hyman NH, Zaborina O, Van Goor H, Alverdy JC. Oral Polyphosphate Suppresses Bacterial Collagenase Production and Prevents Anastomotic Leak Due to Serratia marcescens and Pseudomonas aeruginosa. Ann Surg. 2018 Jun;267(6):1112-18. doi: 10.1097/SLA.0000000000002167
  20. Загиров УЗ, Далгатов ГМ, Загирова НН. Защита толстокишечных анастомозов у больных пожилого и старческого возраста внутривенными инфузиями перфторана. Вестн Новых Мед Технологий. 2008;ХV(4):95-97. http://www.medtsu.tula.ru/VNMT/Bulletin/2008/08B4.pdf
  21. Shalaby M, Thabet W, Morshed M, Farid M, Sileri P. Shalaby M, Thabet W, Morshed M, Farid M, Sileri P. Preventive strategies for anastomotic leakage after colorectal resections: A review. World J Meta-Anal. 2019 Aug 31;7(8):389-98. doi: 10.13105/wjma.v7.i8.389
  22. Салмин РМ, Прокопчик НИ, Жук ИГ, Гайдук АВ, Горецкая МВ, Павлюковец АЮ, Жмакин АИ. Оценка эффективности укрепления зоны толстокишечного анастомоза губкой “Тахокомб”. Новости Хирургии. 2012;20(3):3-8. http://www.surgery.by/pdf/full_text/2012_3_1_ft.pdf
  23. Hamabe A, Ito M, Nishigori H, Nishizawa Y, Sasaki T. Preventive effect of diverting stoma on anastomotic leakage after laparoscopic low anterior resection with double stapling technique reconstruction applied based on risk stratification. Asian J Endosc Surg. 2018 Aug;11(3):220-26. doi: 10.1111/ases.12439
  24. Cortez AR, Kassam AF, Levinsky NC, Jung AD, Daly MC, Shah SA, Rafferty JF, Paquette IM. Enhanced recovery protocol improves postoperative outcomes and minimizes narcotic use following resection for colon and rectal cancer. Surg Open Sci. 2019 Jul 2;1(2):74-79. doi: 10.1016/j.sopen.2019.05.007. eCollection 2019 Oct.
  25. Nejdet B, Ayhan C, Doğan F, Mehmet A, Hüseyin E, Gülay D, Mustafa G, Nagehan B. An alternative to conventional hand-sewing colocolic anastomosis: anastomosis with absorbable surgical barrier film without sutures. Colorectal Dis. 2010 Dec;12(12):1260-67. doi: 10.1111/j.1463-1318.2009.02004.x
  26. Choy PY, Bissett IP, Docherty JG, Parry BR, Merrie A, Fitzgerald A. Stapled versus handsewn methods for ileocolic anastomoses. Cochrane Database Syst Rev. 2011 Sep 7;(9):CD004320. doi: 10.1002/14651858.CD004320.pub3
  27. Kim IY, Kim BR, Kim YW. Applying reinforcing sutures to stapled colorectal anastomosis after low anterior resection for rectal cancer. Eur J Surg Oncol. 2015 Jun;41(6):808-9. doi: 10.1016/j.ejso.2015.03.230
  28. Senagore A, Lane FR, Lee E, Wexner S, Dujovny N, Sklow B, Rider P, Bonello J; Bioabsorbable Staple Line Reinforcement Study Group. Bioabsorbable staple line reinforcement in restorative proctectomy and anterior resection: a randomized study. Dis Colon Rectum. 2014 Mar;57(3):324-30. doi: 10.1097/DCR.0000000000000065
  29. Slieker JC, Daams F, Mulder IM, Jeekel J, Lange JF. Systematic review of the technique of colorectal anastomosis. JAMA Surg. 2013 Feb;148(2):190-201. doi: 10.1001/2013.jamasurg.33
  30. Caziuc A, Calin Dindelegan G, Pall E, Mironiuc A. Stem cells improve the quality of colonic anastomoses – A systematic review. J BUON. 2015 Nov-Dec;20(6):1624-29. https://jbuon.com/archive/20-6-1624.pdf
  31. Chereddy KK, Lopes A, Koussoroplis S, Payen V, Moia C, Zhu H, Sonveaux P, Carmeliet P, des Rieux A, Vandermeulen G, Préat V. Combined effects of PLGA and vascular endothelial growth factor promote the healing of non-diabetic and diabetic wounds. Nanomedicine. 2015 Nov;11(8):1975-84. doi: 10.1016/j.nano.2015.07.006
  32. Losi P, Briganti E, Errico C, Lisella A, Sanguinetti E, Chiellini F, Soldani G. Fibrin-based scaffold incorporating VEGF- and bFGF-loaded nanoparticles stimulates wound healing in diabetic mice. Acta Biomater. 2013 Aug;9(8):7814-21. doi: 10.1016/j.actbio.2013.04.019
  33. Li Z, Wang W, Wang X, Jiang L, Wang F, Liu Q. Sustained-released mixture of vascular endothelial growth factor 165 and fibrin glue strengthens healing of ileal anastomoses in a rabbit model with intraperitoneal infection. Ann Surg Treat Res. 2017 Sep;93(3):159-65. doi: 10.4174/astr.2017.93.3.159
  34. van’t Sant HP, Kamman A, Hop WC, van der Heijden M, Lange JF, Contant CM. The influence of mechanical bowel preparation on long-term survival in patients surgically treated for colorectal cancer. Am J Surg. 2015 Jul;210(1):106-10. doi: 10.1016/j.amjsurg.2014.10.022
  35. Wirth U, Rogers S, Haubensak K, Schopf S, von Ahnen T, Schardey HM. Local antibiotic decontamination to prevent anastomotic leakage short-term outcome in rectal cancer surgery. Int J Colorectal Dis. 2018 Jan;33(1):53-60. doi: 10.1007/s00384-017-2933-2
  36. Scarborough JE, Mantyh CR, Sun Z, Migaly J. Combined mechanical and oral antibiotic bowel preparation reduces incisional surgical site infection and anastomotic leak rates after elective colorectal resection: an analysis of colectomy-targeted ACS NSQIP. Ann Surg. 2015 Aug;262(2):331-37. doi: 10.1097/SLA.0000000000001041
  37. Ohman KA, Wan L, Guthrie T, Johnston B, Leinicke JA, Glasgow SC, Hunt SR, Mutch MG, Wise PE, Silviera ML. Combination of Oral Antibiotics and Mechanical Bowel Preparation Reduces Surgical Site Infection in Colorectal Surgery. J Am Coll Surg. 2017 Oct;225(4):465-71. doi: 10.1016/j.jamcollsurg.2017.06.011
  38. Kiran RP, Murray AC, Chiuzan C, Estrada D, Forde K. Combined preoperative mechanical bowel preparation with oral antibiotics significantly reduces surgical site infection, anastomotic leak, and ileus after colorectal surgery. Ann Surg. 2015 Sep;262(3):416-25; discussion 423-5. doi: 10.1097/SLA.0000000000001416
  39. Schardey HM, Rogers SK, Schopf SK, von Ahnen T, Wirth U. Are gut bacteria associated with the development of anastomotic leaks? Coloproctology. 2017;39(2):94-100. doi: 10.1007/s00053-016-0136-x
  40. Althumairi AA, Canner JK, Pawlik TM, Schneider E, Nagarajan N, Safar B, Efron JE. Benefits of bowel preparation beyond surgical site infection: a retrospective study. Ann Surg. 2016 Dec;264(6):1051-57. doi: 10.1097/SLA.0000000000001576
  41. Moghadamyeghaneh Z, Hanna MH, Carmichael JC, Mills SD, Pigazzi A, Nguyen NT, Stamos MJ. Nationwide analysis of outcomes of bowel preparation in colon surgery. J Am Coll Surg. 2015 May;220(5):912-20. doi: 10.1016/j.jamcollsurg.2015.02.008
  42. Koskenvuo L, Lehtonen T, Koskensalo S, Rasilainen S, Klintrup K, Ehrlich A, Pinta T, Scheinin T, Sallinen V. Mechanical and oral antibiotic bowel preparation versus no bowel preparation in right and left colectomy: subgroup analysis of MOBILE trial. BJS Open. 2021 Mar 5;5(2):zrab011. doi: 10.1093/bjsopen/zrab011
  43. Liang Y, Xin W, Xi L, Fu H, Yang Y, Yang G, Li X. Role of mechanical and oral antibiotic bowel preparation in children with Hirschsprung’s disease undergoing colostomy closure and pull-through. Transl Pediatr. 2021 Jan;10(1):153-59. doi: 10.21037/tp-20-306.
Адрес для корреспонденции:
AZ 1022, Азербайджанская Республика,
г. Баку, ул. А. Касумзаде, 14,
Азербайджанский медицинский университет, кафедра общей хирургии,
тел.: +994 50 312 44 19,
e-mail: doc-elcin@yandex.ru,
Агаев Эльчин Камильоглы
Cведения об авторах:
Агаев Эльчин Камиль оглы, д.м.н., профессор, заведующий кафедрой общей хирургии, Азербайджанский медицинский университет.
https://orcid.org/0000-0003-0679-3008
Исмайылова Зульфия Эльман кызы, к.м.н., ассистент, кафедра общей хирургии, Азербайджанский медицинский университет.
https://orcid.org/0000-0001-9462-9923
Мамедов Тапдыг Эльдар оглы, старший лаборант кафедры, кафедра общей хирургии, Азербайджанский медицинский университет.
https://orcid.org/0000-0001-6558-6821

В.Ю. РАЙH

БИЛИАРHАЯ ФИСТУЛА ПОСЛЕ ПАHКРЕАТОДУОДЕHАЛЬHОЙ РЕЗЕКЦИИ

Ханты-Мансийская государственная медицинская академия, г. Ханты-Мансийск,
Российская Федерация

Литературный поиск проведен на информационной платформе Pubmed и в библиотеках elibrary и cyberleninka по ключевым словам. Критерии включения: доступность полнотекстового варианта оригинальной статьи, полное соответствие теме, давность публикации не более 5 лет. Из 144 полученных публикаций исключены полностью дублирующие и не соответствующие критериям включения статьи. Всего в обзор включено 36 статей. Рассмотрены эпидемиология билиарной фистулы после панкреатодуоденальной резекции, современные взгляды на патогенез, классификация, профилактические мероприятия и лечебно-диагностическая тактика при ее развитии. В послеоперационном периоде панкреатодуоденальной резекции билиарная фистула формируется с частотой 1-24%. Немодифицируемые факторы риска включают мужской пол, тонкий общий желчный проток, доброкачественную патологию билиопанкреатодуоденальной зоны и онкопатологию с предшествующей неоадъювантной терапией. К модифицируемым факторам риска относятся ожирение, гипоальбуминемия, механическая желтуха, продолжительность гепатикоеюностомии и предшествующее эндоскопическое билиарное дренирование. В арсенале современной интервенционной радиологии имеются эффективные и безопасные процедуры для диагностики и лечения послеоперационной билиарной фистулы, которые могут применяться как альтернатива эндоскопическим манипуляциям и ревизионным вмешательствам, когда последние сопряжены с высокими рисками осложнений. Свое-временное выявление и лечение обеспечивает профилактику тяжелого течения билиарной фистулы и повторных вмешательств, благоприятный прогноз, а также сбережение медицинских и финансовых ресурсов.

Ключевые слова: панкреатодуоденальная резекция несостоятельность гепатикоеюноанастомоза, несостоятельность билиодигестивного анастомоза, послеоперац
с. 95-101 оригинального издания
Список литературы
  1. Патютко ЮИ, Котельников АГ, Поляков АН, Подлужный ДВ. Эволюция хирургии рака головки поджелудочной железы и периампулярной зоны. Анналы Хирург Гепатологии. 2019;24(3):45-53. doi: 10.16931/1995-5464.2019345-53
  2. Angileri SA, Gorga G, Tortora S, Avrilingi M, Petrillo M, Ierardi AM, Carrafiello G. Biliary injuries after pancreatic surgery: interventional radiology management. Gland Surg. 2019 Apr;8(2):141-49. doi: 10.21037/gs.2019.01.05
  3. Kapoor VK. Complications of pancreato-duodenectomy. Rozhl Chir. 2016 Feb;95(2):53-59.
  4. Tonolini M, Ierardi AM, Carrafiello G. Elucidating early CT after pancreatico-duodenectomy: a primer for radiologists. Insights Imaging. 2018 Aug;9(4):425-36. doi: 10.1007/s13244-018-0616-3
  5. Патютко ЮИ, Котельников АГ, Кудашкин НЕ, Поляков АН, Мороз ЕА, Ястребова ЕВ. Рак большого сосочка двенадцатиперстной кишки: лечение и прогноз. Анналы Хирург Гепатологии. 2016;21(4):84-92. doi: 10.16931/1995-5464.2016484-92
  6. Атавов РС, Ионин ВП. Наружное трансанастомозное дренирование гепатикоеюноанастомоза при панкреатодуоденальной резекции: техника формирования и основные результаты. Научн Мед Вестн Югры. 2018;16(2):52-53. doi: 10.25017/2306-1367-2018-16-2-52-53
  7. Павелец КВ, Вавилова ОГ, Федорова ПС, Флоровский ГН, Костина ЮД, Калюжный СА. Технические аспекты формирования холедохоэнтероанастомоза на реконструктивном этапе пилоруссохраняющей панкреатодуоденальной резекции. Мед Обозрение. 2018;2(12):12-15. URL: https://www.rusmedreview.com/upload/iblock/12b/12-15.pdf
  8. Chincarini M, Zamboni GA, Pozzi Mucelli R. Major pancreatic resections: normal postoperative findings and complications. Insights Imaging. 2018;9(2):173-87. doi: 10.1007/s13244-018-0595-4
  9. Атавов РС, Ионин ВП, Авдеев ДЕ, Зотов ПБ, Федоров НМ. Течение несостоятельности гепатикоеюноанастомоза после панкреатодуоденальной резекции. Медиц Наука и Образование Урала. 2018;19(2):58-61. https://www.elibrary.ru/item.asp?id=35189981
  10. Радионов ЮВ, Коханенко НЮ. Дренирование панкреатикоеюно- и гепатикоеюноанастомозов при панкреатодуоденальной резекции, выполненной по поводу периампулярного рака. Медицина: Теория и Практика. 2018;3(1):М78-М79. https://gpmu.org/userfiles/file/journals/Medicinetheory/!Med_theor_praktik_1_2018_tezisy_gastro.pdf
  11. Jester AL, Chung CW, Becerra DC, Molly Kilbane E, House MG, Zyromski NJ, Max Schmidt C, Nakeeb A, Ceppa EP. The impact of hepaticojejunostomy leaks after pancreatoduodenectomy: a devastating source of morbidity and mortality. J Gastrointest Surg. 2017 Jun;21(6):1017-24. doi: 10.1007/s11605-017-3406-1
  12. Malgras B, Duron S, Gaujoux S, Dokmak S, Aussilhou B, Rebours V, Palazzo M, Belghiti J, Sauvanet A. Early biliary complications following pancreaticoduodenectomy: prevalence and risk factors. HPB (Oxford). 2016 Apr;18(4):367-74. doi: 10.1016/j.hpb.2015.10.012
  13. El Nakeeb A, El Sorogy M, Hamed H, Said R, Elrefai M, Ezzat H, Askar W, Elsabbagh AM. Biliary leakage following pancreaticoduodenectomy: Prevalence, risk factors and management. Hepatobiliary Pancreat Dis Int. 2019 Feb;18(1):67-72. doi: 10.1016/j.hbpd.2018.10.005
  14. Михайлов ИВ, Бондаренко ВМ, Кудряшов ВА, Ачинович СЛ, Киселев ПГ, Нестерович ТН, Виракоон ЧА. Одноэтапные операции при раке головки поджелудочной железы, осложненном механической желтухой. Проблемы Здоровья и Экологии. 2019;61(3):33-38. https://journal.gsmu.by/jour/article/view/132/132
  15. Михайлов И, Бондаренко ВМ, Кудряшов ВА, Ачинович СЛ, Киселев ПГ, Грабарева ГЛ, Подгорный НН, Шимановский ГМ, Новак СВ, Довидович СВ, Атаманенко АВ, Дятлов АП. Динамика результатов лечения резектабельного рака головки поджелудочной железы за 30-летний период. Проблемы Здоровья и Экологии. 2019;61(3):50-55. https://journal.gsmu.by/jour/article/view/135/135
  16. Райн ВЮ, Чернов АА. Сравнительный анализ непосредственных результатов панкреатодуоденальной резекции при раке головки поджелудочной железы на фоне хронического описторхоза Chronos. 2020;(6):8-14. https://chronos-journal.ru/archive/new/Chronos_multi_june_2020.pdf
  17. Райн ВЮ, Заботкин СО. Микробный пейзаж желчи при панкреатодуоденальной резекции по поводу периампулярного рака на фоне хронического описторхоза. Мед Наука и Образование Урала. 2020;21(3):76-79. https://www.elibrary.ru/item.asp?id=44072944
  18. Атавов РС, Ионин ВП, Авдеев ДЕ, Зотов ПБ, Федоров НМ. Сравнение наружного и внутреннего стентирования гепатикоеюноанастомоза при панкреатодуоденальной резекции. Мед Наука и Образование Урала. 2018;19(3):96-99. https://www.elibrary.ru/item.asp?id=35686810
  19. Райн ВЮ, Ионин ВП, Персидский МА, Чернов АА, Букирь ВВ. Клинико-эпидемиологические особенности при очаговой патологии головки поджелудочной железы на фоне хронического описторхоза. Науч Мед Вестн Югры. 2020;(2):20-27.
  20. Birgin E, Tesfazgi W, Knoth M, Wilhelm TJ, Post S, Rückert F. Evaluation of the new isgls definitions of typical posthepatectomy complications. Scand J Surg. 2019 Jun;108(2):130-36. doi: 10.1177/1457496918798202
  21. Andrianello S, Marchegiani G, Malleo G, Pollini T, Bonamini D, Salvia R, Bassi C, Landoni L. Biliary fistula after pancreaticoduodenectomy: data from 1618 consecutive pancreaticoduodenectomies. HPB (Oxford). 2017 Mar;19(3):264-69. doi: 10.1016/j.hpb.2016.11.011
  22. Maatman TK, Weber DJ, Qureshi B, Ceppa EP, Nakeeb A, Schmidt CM, Zyromski NJ, House MG. Does the Microbiology of Bactibilia Drive Postoperative Complications After Pancreatoduodenectomy? J Gastrointest Surg. 2020 Nov;24(11):2544-50. doi: 10.1007/s11605-019-04432-5
  23. Sasaki M, Hori T, Furuyama H, Machimoto T, Hata T, Kadokawa Y, Ito T, Kato S, Yasukawa D, Aisu Y, Kimura Y, Takamatsu Y, Kitano T, Yoshimura T. Postoperative biliary leak treated with chemical bile duct ablation using absolute ethanol: a report of two cases. Am J Case Rep. 2017 Aug 8;18:871-77. doi: 10.12659/ajcr.905093
  24. Maatman TK, Loncharich AJ, Flick KF, Simpson RE, Ceppa EP, Nakeeb A, Nguyen TK, Schmidt CM, Zyromski NJ, House MG. Transient biliary fistula after pancreatoduodenectomy increases risk of biliary anastomotic stricture. J Gastrointest Surg. 2021 Jan;25(1):169-77. doi: 10.1007/s11605-020-04727-y
  25. El Nakeeb A, ElGawalby A, A Ali M, Shehta A, Hamed H, El Refea M, Moneer A, Abd El Rafee A. Efficacy of octreotide in the prevention of complications after pancreaticoduodenectomy in patients with soft pancreas and non-dilated pancreatic duct: A prospective randomized trial. Hepatobiliary Pancreat Dis Int. 2018 Feb;17(1):59-63. doi: 10.1016/j.hbpd.2018.01.015
  26. Klotz R, Hofer S, Schellhaaß A, Dörr-Harim C, Tenckhoff S, Bruckner T, Klose C, Diener MK, Weigand MA, Büchler MW, Knebel P. Intravenous versus epidural analgesia to reduce the incidence of gastrointestinal complications after elective pancreatoduodenectomy (the PAKMAN trial, DRKS 00007784): study protocol for a randomized controlled trial. Trials. 2016;17:194. doi: 10.1186/s13063-016-1306-4
  27. Moole H, Bechtold M, Puli SR. Efficacy of preoperative biliary drainage in malignant obstructive jaundice: a meta-analysis and systematic review. World J Surg Oncol. 2016 Jul 11;14(1):182. doi: 10.1186/s12957-016-0933-2
  28. Gaujoux S, Jacques J, Bourdariat R, Sulpice L, Lesurtel M, Truant S, Robin F, Prat F, Palazzo M, Schwarz L, Buc E, Sauvanet A, Taibi A, Napoleon B. Pancreaticoduodenectomy following endoscopic ultrasound-guided choledochoduodenostomy with electrocautery-enhanced lumen-apposing stents an ACHBT - SFED study. HPB (Oxford). 2021 Jan;23(1):154-60. doi: 10.1016/j.hpb.2020.06.001
  29. Gong L, Huang X, Wang L, Xiang C. The effect of preoperative biliary stents on outcomes after pancreaticoduodenectomy: A meta-analysis. Medicine (Baltimore). 2020 Oct 16; 99(42):e22714. doi: 10.1097/MD.0000000000022714
  30. Pan J, Ge X, Zhou W, Zhong X, Gu L, Zhu H, Li X, Qi W, Wang X. Comparison of clinical outcomes between mesh-reinforced pancreatojejunostomy and pancreatogastrostomy following pancreaticoduodenectomy: a cohort study. World J Surg Oncol. 2018 Sep 17;16(1):190. doi: 10.1186/s12957-018-1491-6
  31. Filip B, Hutanu I, Musina AM, Radu I, Gavrilescu M, Scripcariu DV, Scripcariu V. Functional Results Following Pylorus-Preserving Pancreatoduodenectomy with Pancreaticogastrostomy. Chirurgia (Bucur). 2018 May-Jun;113(3):391-98. doi: 10.21614/chirurgia.113.3.391
  32. Lyu Y, Cheng Y, Wang B, Zhao S, Chen L. Peritoneal drainage or no drainage after pancreaticoduodenectomy and/or distal pancreatectomy: a meta-analysis and systematic review. Surg Endosc. 2020 Nov;34(11):4991-5005. doi: 10.1007/s00464-019-07293-w
  33. Qin R, Kendrick ML, Wolfgang CL, Edil BH, Palanivelu C, Parks RW, Yang Y, He J, Zhang T, Mou Y, Yu X, Peng B, Senthilnathan P, Han HS, Lee JH, Unno M, Damink SWMO, Bansal VK, Chow P, Cheung TT, Choi N, Tien YW, Wang C, Fok M, Cai X, Zou S, Peng S, Zhao Y. International expert consensus on laparoscopic pancreaticoduodenectomy. Hepatobiliary Surg Nutr. 2020 Aug;9(4):464-83. doi: 10.21037/hbsn-20-446
  34. Song KB, Kim SC, Lee W, Hwang DW, Lee JH, Kwon J, Park Y, Lee SJ, Park G. Laparoscopic pancreaticoduodenectomy for periampullary tumors: lessons learned from 500 consecutive patients in a single center. Surg Endosc. 2020 Mar;34(3):1343-52. doi: 10.1007/s00464-019-06913-9
  35. Bhogal RH, Pericleous S, Khan AZ. Open and Minimal Approaches to Pancreatic Adenocarcinoma. Gastroenterol Res Pract. 2020;2020:4162657. doi: 10.1155/2020/4162657
Адрес для корреспонденции:
628011, Российская Федерация,
г. Ханты-Мансийск, ул. Мира, д. 40,
Ханты-Мансийская государственная медицинская академия, кафедра госпитальной хирургии,
тел. моб.: +7 982 194-67-41,
е-mail: raynvu@okbhmao.ru,
Райн Василиса Юрьевна
Cведения об авторах:
Райн Василиса Юрьевна, старший преподаватель кафедры госпитальной хирургии, врач-аспирант, Ханты-Мансийская государственная медицинская академия, г. Ханты-Мансийск, Российская Федерация.
http://orcid.org/0000-0003-2406-0000

ОБМЕH ОПЫТОМ

К.В. ЛИПАТОВ 1, А.Г. АСАТРЯH 2, Г.Г. МЕЛКОHЯH 2, В.А. КУЗHЕЦОВ 1, И.В. ГОРБАЧЕВА 1, М.В. ЮРЧЕHКО 2

НЕКРОТИЗИРУЮЩИЙ ФАСЦИИТ ВЕРХHЕЙ КОHЕЧHОСТИ: КЛИHИКА, ДИАГHОСТИКА, ЛЕЧЕHИЕ

Первый Московский государственный медицинский университет
им. И.М. Сеченова (Сеченовский университет) 1,,
Городская клиническая больница № 4 2, г. Москва,
Российская Федерация

Цель. Изучить результаты лечения пациентов с некротизирующим фасциитом верхней конечности.
Материал и методы. Проанализированы собственные наблюдения – 9 пациентов с редким и тяжелым заболеванием: некротизирующий фасциит (НФ) верхней конечности. Входными воротами для инфекции стали незначительные повреждения кожи в области кисти. Средний период до госпитализации составил 4,8±1,8 (M±σ) суток. Сразу при поступлении диагноз НФ был установлен у 5 пациентов. За этим следовала экстренная радикальная операция. Остальные также были экстренно оперированы, но с диагнозом «флегмона кисти» и в недостаточном объеме. Диагноз НФ у них был установлен в течение первых суток, и проводилась повторная операция. Поражение в большинстве случаев включало ткани кисти, предплечья, плеча. Первичное хирургическое вмешательство дополнялось этапными некрэктомиями, число которых в среднем составляло 4,7±1,9 на одного заболевшего. В комплекс интенсивного лечения входили антибиотики широкого спектра действия, антикоагулянты (эноксапарин 8 000 анти-Ха МЕ/сут.). Хирургическое закрытие постнекрэктомических ран проводилось с помощью кожно-пластических операций: пластики местными тканями, аутодермопластики расщепленным трансплантатом.
Результаты. Большая часть случаев заболевания была классифицирована как НФ II типа (Streptococcus pyogenes или Staphylococcus aureus). В одном случае наблюдали очень редкий и крайне тяжело протекающий НФ, вызванный Pasteurella multocida. Антибиотикоустойчивых штаммов обнаружено не было. Экстренная радикальная операция стала краеугольным камнем в достижении успеха. Необходимость этапных некрэктомий определялась формированием вторичных некрозов в связи с выраженными расстройствами микроциркуляции. Обширные постнекрэктомические раны закрывались после стихания воспаления с помощью кожно-пластических операций. Средняя длительность стационарного лечения составила 20,8±6,2 суток. Летальных исходов не было.
Заключение. Комплексный подход к лечению НФ верхней конечности позволил во всех случаях получить положительные результаты лечения.

Ключевые слова: некротизирующий фасциит верхней конечности, некротизирующая инфекция мягких тканей, Streptococcus pyogenes, Pasteurella multocida, хирургическое лечение
с. 102-111 оригинального издания
Список литературы
  1. Chen LL, Fasolka B, Treacy C. Necrotizing fasciitis: A comprehensive review. Nursing. 2020 Sep;50(9):34-40. doi: 10.1097/01.NURSE.0000694752.85118.62
  2. Nawijn F, Verhiel SHWL, Lunn KN, Eberlin KR, Hietbrink F, Chen NC. Factors associated with mortality and amputation caused by necrotizing soft tissue infections of the upper extremity: a retrospective cohort study. World J Surg. 2020 Mar;44(3):730-40. doi: 10.1007/s00268-019-05256-9
  3. Kückelhaus M, Hirsch T, Lehnhardt M, Daigeler A. Nekrotisierende Fasziitis der oberen und unteren Extremität. Chirurg. 2017;88(4):353-66. doi: 10.1007/s00104-017-0397-0
  4. Misiakos EP, Bagias G, Patapis P, Sotiropoulos D, Kanavidis P, Machairas A. Current concepts in the management of necrotizing fasciitis. Front Surg. 2014 Sep 29;1:36. doi: 10.3389/fsurg.2014.00036. eCollection 2014
  5. Hakkarainen TW, Kopari NM, Pham TN, Evans HL. Necrotizing soft tissue infections: review and current concepts in treatment, systems of care, and outcomes. Curr Probl Surg. 2014 Aug;51(8):344-62. doi: 10.1067/j.cpsurg.2014.06.001
  6. Choueka J, De Tolla JE. Necrotizing Infections of the Hand and Wrist: Diagnosis and Treatment Options. J Am Acad Orthop Surg. 2020 Jan 15;28(2):e55-e63. doi: 10.5435/JAAOS-D-17-00716
  7. Khamnuan P, Chongruksut W, Jearwattanakanok K, Patumanond J, Yodluangfun S, Tantraworasin A. Necrotizing fasciitis: risk factors of mortality. Risk Manag Healthc Policy. 2015 Feb 16;8:1-7. doi: 10.2147/RMHP.S77691. eCollection 2015
  8. Kheiran A, Palial V, Rollett R, Wildin CJ, Chatterji U, Singh HP. Cat bite: an injury not to underestimate. J Plast Surg Hand Surg. 2019 Dec;53(6):341-46. doi: 10.1080/2000656X.2019.1637750
  9. Milani-Nejad N, Tyler K, Grieco CA, Kaffenberger BH. Pasteurella multocida ecthyma complicated by necrotizing fasciitis. Dermatol Online J. 2017 Apr 15;23(4):13030/qt1h02t0tc
  10. Tessier JM, Sanders J, Sartelli M, Ulrych J, De Simone B, Grabowski J, Buckman S, Duane TM. Necrotizing Soft Tissue Infections: A Focused Review of Pathophysiology, Diagnosis, Operative Management, Antimicrobial Therapy, and Pediatrics. Surg Infect (Larchmt). 2020 Mar;21(2):81-93. doi: 10.1089/sur.2019.219
  11. Lancerotto L, Tocco I, Salmaso R, Vindigni V, Bassetto F. Necrotizing fasciitis: classification, diagnosis, and management. J Trauma Acute Care Surg. 2012 Mar;72(3):560-66. doi: 10.1097/TA.0b013e318232a6b3
  12. Jung N, Eckmann C. Essentials in the management of necrotizing soft-tissue infections. Infection. 2019 Aug;47(4):677-79. doi: 10.1007/s15010-019-01316-3
  13. Leiblein M, Marzi I, Sander AL, Barker JH, Ebert F, Frank J. Necrotizing fasciitis: treatment concepts and clinical results. Eur J Trauma Emerg Surg. 2018 Apr;44(2):279-90. doi: 10.1007/s00068-017-0792-8
  14. Wong CH, Khin LW, Heng KS, Tan KC, Low CO. The LRINEC (Laboratory Risk Indicator for Necrotizing Fasciitis) score: a tool for distinguishing necrotizing fasciitis from other soft tissue infections. Crit Care Med. 2004 Jul;32(7):1535-41. doi: 10.1097/01.ccm.0000129486.35458.7d
  15. El-Menyar A, Asim M, Mudali IN, Mekkodathil A, Latifi R, Al-Thani H. The laboratory risk indicator for necrotizing fasciitis (LRINEC) scoring: the diagnostic and potential prognostic role. Scand J Trauma Resusc Emerg Med. 2017 Mar 7;25(1):28. doi: 10.1186/s13049-017-0359-z
  16. Chaudhry AA, Baker KS, Gould ES, Gupta R. Necrotizing fasciitis and its mimics: what radiologists need to know. AJR Am J Roentgenol. 2015 Jan;204(1):128-39. doi: 10.2214/AJR.14.12676
  17. Melillo A, Addagatla K, Jarrett NJ. Necrotizing Soft Tissue Infections of the Upper Extremity. Hand Clin. 2020 Aug;36(3):339-44. doi: 10.1016/j.hcl.2020.03.007
  18. Corona PS, Erimeiku F, Reverté-Vinaixa MM, Soldado F, Amat C, Carrera L. Necrotising fasciitis of the extremities: implementation of new management technologies. Injury. 2016 Sep;47 Suppl 3:S66-S71. doi: 10.1016/S0020-1383(16)30609-X
Адрес для корреспонденции:
119991, Российская Федерация,
г. Москва, ул. Большая Пироговская, 2, стр. 4, Первый Московский государственный
медицинский университет им. И.М. Сеченова, кафедра общей хирургии,
тел. моб.: +7 (916) 635-89-88,
e-mail: k_lipatov@mail.ru,
Липатов Константин Владимирович
Cведения об авторах:
Липатов Константин Владимирович, д.м.н., профессор кафедры общей хирургии, Первый Московский государственный медицинский университет им. И.М. Сеченова (Сеченовский Университет) Мин-здрава России, г. Москва, Российская Федерация.
http://orcid.org/0000-0002-9902-2650
Асатрян Артур Генрикович, к.м.н., заведующий отделением гнойной хирургии, городская клиническая больница № 4, г. Москва, Российская Федерация.
http://orcid.org/0000-0002-8409-2605
Мелконян Георгий Геннадьевич, д.м.н., профессор, главный врач, городская клиническая больница № 4, г. Москва, Российская Федерация
http://orcid.org/0000-0001-7234-4185
Кузнецов Владимир Александрович, студент, Первый Московский государственный медицинский университет им. И.М. Сеченова (Сеченовский Университет) Минздрава России, г. Москва, Российская Федерация.
http://orcid.org/0000-0001-8385-4113
Горбачева Ирина Викторовна, к.м.н., доцент кафедры общей хирургии, Первый Московский государственный медицинский университет им. И.М. Сеченова (Сеченовский Университет) Минздрава России, г. Москва, Российская Федерация.
http://orcid.org/0000-0002-1060-1163
Юрченко Марк Владимирович, врач-хирург отделения гнойной хирургии, городская клиническая больница № 4, г. Москва, Российская Федерация.
http://orcid.org/0000-0002-4059-7548

СЛУЧАИ ИЗ ПРАКТИКИ

М.А. МЕДВЕДЧИКОВ-АРДИЯ 1, 2, Е.А. КОРЫМАСОВ 1, 2, А.С. БЕHЯH 1, 2

ВЕРТИКАЛЬHЫЙ ЛОСКУТ ПРЯМОЙ МЫШЦЫ ЖИВОТА В РЕКОHСТРУКЦИИ ДЕФЕКТА ПЕРЕДHЕЙ ГРУДHОЙ СТЕHКИ

Самарский государственный медицинский университет 1,
Самарская областная клиническая больница им. В.Д. Середавина 2, г. Самара,
Российская Федерация

В публикации описывается клиническое наблюдение пациента с постстернотомным медиастинитом. Продемонстрирован успешный случай лечения такого грозного осложнения после кардиохирургического вмешательства. Успех в лечении таких пациентов зависит от полноценного купирования воспалительного процесса в области операции, а также восстановления целости грудной стенки. Продемонстрирован положительный клинический эффект вакуум-ассистированных повязок в лечении постстернотомного медиастинита. В качестве пластического материала для устранения дефекта грудной стенки использован лоскут прямой мышцы живота. Подробно описан ход оперативного вмешательства и результат лечения в целом. На сегодняшний день в хирургическом обществе не выработана общепринятая тактика в лечении постстернотомного медиастинита как на этапе купирования инфекционного процесса, так и в процессе реконсртуктивно-восстановительного вмешательства. В практической деятельности наряду с аллопластическими материалами применяют синтетические и металлические импланты. К аутологичным тканям относят мышечные лоскуты и большой сальник. Лоскут прямой мышцы живота активно применяется в пластической хирургии лица, груди, промежности. В торакальной хирургии прямая мышца живота может служить альтернативой оментопластики при протяженных дефектах грудной стенки.

Ключевые слова: стернальная инфекция, остеомиелит грудины, мышечный лоскут, дефект груди, пластика груди, диастаз грудины, лечение медиастинита
с. 112-118 оригинального издания
Список литературы
  1. Merritt RE. Chest Wall Reconstruction Without Prosthetic Material. Thorac Surg Clin. 2017 May;27(2):165-69. doi: 10.1016/j.thorsurg.2017.01.010
  2. Betancourt Cuellar SL, Heller L, Palacio DP, Hofstetter WL, Marom EM. Intra- and Extra-Thoracic Muscle Flaps and Chest Wall Reconstruction Following Resection of Thoracic Tumors. Semin Ultrasound CT MR. 2017 Dec;38(6):604-15. doi: 10.1053/j.sult.2017.07.003
  3. Momeni A, Kovach SJ. Important considerations in chest wall reconstruction. J Surg Oncol. 2016 Jun;113(8):913-22. doi: 10.1002/jso.24216
  4. Billington A, Dayicioglu D, Smith P, Kiluk J. Review of procedures for reconstruction of soft tissue chest wall defects following advanced breast malignancies. Cancer Control. 2019 Jan-Dec;26(1):1073274819827284. doi: 10.1177/1073274819827284
  5. Zhou Y, Zhang Y. Single- versus 2-stage reconstruction for chronic post-radiation chest wall ulcer: A 10-year retrospective study of chronic radiation-induced ulcers. Medicine (Baltimore). 2019 Feb;98(8):e14567. doi: 10.1097/MD.0000000000014567
  6. Malathi L, Das S, Nair JTK, Rajappan A. Chest wall reconstruction: success of a team approach-a 12-year experience from a tertiary care institution. Indian J Thorac Cardiovasc Surg. 2020 Jan;36(1):44-51. doi: 10.1007/s12055-019-00841-y
  7. Tewarie L, Moza AK, Khattab MA, Autschbach R, Zayat R. Effective Combination of Different Surgical Strategies for Deep Sternal Wound Infection and Mediastinitis. Ann Thorac Cardiovasc Surg. 2019 Apr 20;25(2):102-10. doi: 10.5761/atcs.oa.18-00115
  8. Piwnica-Worms W, Azoury SC, Kozak G, Nathan S, Stranix JT, Colen D, Othman S, Vallabhajosyula P, Serletti J, Kovach S. Flap reconstruction for deep sternal wound infections: factors influencing morbidity and mortality. Ann Thorac Surg. 2020 May;109(5):1584-90. doi: 10.1016/j.athoracsur.2019.12.014
  9. Митиш ВА, Усу-Вуйю ОУ, Пасхалова ВС, Ушаков АА, Звягин АА, Оруджева СА, Жестков МС. Опыт хирургического лечения хронического послеоперационного остеомиелита грудины и ребер после мини-инвазивной реваскуляризации миокарда. Раны и Раневая инфекция. Журн им проф БМ Костючёнка. 2015;2(2):46-55. doi: 10.17 650 / 2408-9613-2015-2-2-46-55
  10. van Wingerden JJ. Outcome following sternal reconstruction with the omental flap. J Reconstr Microsurg. 2018 Jun;34(5):e5. doi: 10.1055/s-0038-1668136
  11. Barbera F, Lorenzetti F, Marsili R, Lisa A, Guido G, Pantaloni M. The Impact of Preoperative Negative-Pressure Wound Therapy on Pectoralis Major Muscle Flap Reconstruction for Deep Sternal Wound Infections. Ann Plast Surg. 2019 Aug;83(2):195-200. doi: 10.1097/SAP.0000000000001799
  12. Lee SB, Lee JW, Kim HJ, Ko BS, Son BH, Eom JS, Lee TJ, Ahn SH. Long-term outcomes of patients with breast cancer after nipple-sparing mastectomy/skin-sparing mastectomy followed by immediate transverse rectus abdominis musculocutaneous flap reconstruction: Comparison with conventional mastectomy in a single center study. Medicine (Baltimore). 2018 May;97(18):e0680. doi: 10.1097/MD.0000000000010680
  13. Jeong W, Lee S, Kim J. Meta-analysis of flap perfusion and donor site complications for breast reconstruction using pedicled versus free TRAM and DIEP flaps. Breast. 2018 Apr;38:45-51. doi: 10.1016/j.breast.2017.12.003
  14. Johnstone MS. Vertical Rectus Abdominis Myocutaneous Versus Alternative Flaps for Perineal Repair After Abdominoperineal Excision of the Rectum in the Era of Laparoscopic Surgery. Ann Plast Surg. 2017 Jul;79(1):101-106. doi: 10.1097/SAP.0000000000001137
  15. Nichols DS, Satteson E, Harbor P, DeFranzo A, David L, Thompson JT 2nd. Factors associated with the use of vertical rectus abdominus myocutaneous flap reconstruction following abdominoperineal resection for anorectal cancer. J Surg Oncol. 2020 Oct;122(5):923-27. doi: 10.1002/jso.26086
  16. Netscher DT, Eladoumikdachi F, Goodman CM. Rectus abdominis muscle flaps used successfully for median sternotomy wounds after ipsilateral internal mammary artery ligation. Ann Plast Surg. 2001 Sep;47(3):223-28. doi: 10.1097/00000637-200109000-00001
Адрес для корреспонденции:
443079, Российская Федерация,
г. Самара, ул. Чапаевская, д. 89,
Самарский государственный
медицинский университет,
кафедра хирургии ИПО,
тел.: +7 9053052755,
e-mail: doctormama163@yahoo.com,
Медведчиков-Ардия Михаил Александрович
Cведения об авторах:
Медведчиков-Ардия Михаил Александрович, к.м.н., врач-торакальный хирург хирургического торакального отделения, Самарская областная клиническая больница им. В.Д. Середавина, доцент кафедры хирургии Института профессионального образования, Самарский государственный медицинский университет, г. Самара, Российская Федерация.
https://orcid.org/0000-0002-8884-1677
Корымасов Евгений Анатольевич, д.м.н., профессор, заведующий кафедрой хирургии Института профессионального образования, Самарский государственный медицинский университет, г. Самара, Российская Федерация.
https://orcid.org/0000-0001-9732-5212
Бенян Армен Сисакович, д.м.н., доцент, министр здравоохранения Самарской области, врач-торакальный хирург хирургического торакального отделения, Самарская областная клиническая больница им. В.Д. Середавина», профессор кафедры хирургии ИПО, Самарский государственный медицинский университет, г. Самара, Российская Федерация.
https://orcid.org/0000-0003-4371-7426

В.Я. ХРЫЩАHОВИЧ, Н.Я. СКОБЕЛЕВА

ПРИHЦИПЫ ВЕДЕHИЯ БЕРЕМЕHHЫХ С ОСТРЫМ ВАРИКОТРОМБОФЛЕБИТОМ

Белорусский государственный медицинский университет, г. Минск,
Республика Беларусь

Тромбофлебит подкожных вен нижних конечностей, называемый также поверхностным тромбофлебитом (ПТ), хорошо известное и распространенное заболевание, часто наблюдаемое у беременных с варикозной болезнью (ВБ). Как правило, ПТ рассматривают как патологию, имеющую неосложненное и легкое течение, обычно не представляющую угрозы для жизни. Однако в случае возникновения сопутствующего тромбоза глубоких вен и/или легочной эмболии ПТ может явиться причиной тяжелых осложнений. В статье представлен клинический случай лечения беременной (на сроке гестации 28 недель) с острым восходящим варикотромбофлебитом в системе большой подкожной вены (БПВ). По данным ультразвукового исследования у пациентки были обнаружены недостаточность сафено-феморального соустья и окклюзивный тромбоз боковых притоков и ствола БПВ, распространяющийся до средней трети левого бедра. С учетом акушерского анамнеза, клинической и ультразвуковой картины заболевания, риска периоперационных осложнений было принято решение о назначении продленной антикоагуляции низкомолекулярным гепарином (НМГ) и выполнении флебоцентеза тромбированных сегментов БПВ. Базовым компонентом симптоматического лечения ПТ являлась эластическая компрессия. Выбранный вариант ведения гестационного варикотромбофлебита позволил улучшить общее самочувствие пациентки, быстро (в течение 2-3 суток) купировать местное воспаление, значительно уменьшить локальный отек и болевой синдром. Представленное клиническое наблюдение указывает на возможность успешного и безопасного применения пункционной тромбэктомии и антикоагуляции низкомолекулярным гепарином (НМГ) у беременной с восходящим варикотромбофлебитом.

Ключевые слова: варикозная болезнь, беременность, поверхностный тромбофлебит, диагностика, лечение
с. 119-124 оригинального издания
Список литературы
  1. de Almeida MJ, Guillaumon AT, Miquelin D, Joviliano EE, Hafner L, Sobreira ML, Geiger MA, Moura R, Raymundo S, Yoshida WB. Guidelines for superficial venous thrombosis. J Vasc Bras. 2019 Nov 20;18:e20180105. doi: 10.1590/1677-5449.180105
  2. Decousus H, Leizorovicz A. Superficial thrombophlebitis of the legs: still a lot to learn. J Thromb Haemost. 2005 Jun;3(6):1149-51. doi: 10.1111/j.1538-7836.2005.01445.x
  3. Czysz A, Higbee SL. Superficial Thrombophlebitis. In: StatPearls [Internet]. Treasure Island (FL): StatPearls Publishing; 2020 Jan.
  4. Lussana F, Coppens M, Cattaneo M, Middeldorp S. Pregnancy-related venous thromboembolism: risk and the effect of thromboprophylaxis. Thromb Res. 2012 Jun;129(6):673-80. doi: 10.1016/j.thromres.2012.01.017
  5. Хрыщанович ВЯ, Климчук ИП. Ретроспективный анализ встречаемости тромбоза глубоких вен у пациентов с поверхностным тромбофлебитом нижних конечностей. Хирургия. Восточная Европа. 2014;(1):66-74.
  6. Стойко ЮМ, Кириенко АИ, Илюхин ЕА, Лобастов КВ, Чаббаров РГ, Париков МА, Хорев НГ, Золотухин ИА, Андрияшкин ВВ, Карпенко АА, Фокин АА, Сушков СА, Сапелкин СВ, Сучков ИА, Крылов АЮ, Игнатьев ИМ. Диагностика и лечение тромбофлебита поверхностных вен конечностей. Рекомендации Ассоциации флебологов России. Флебология. 2019;13(2):78-97. doi: 10.17116/flebo20191302178
  7. Nicolaides AN, Fareed J, Kakkar AK, Comerota AJ, Goldhaber SZ, Hull R, Myers K, Samama M, Fletcher J, Kalodiki E, Bergqvist D, Bonnar J, Caprini JA, Carter C, Conard J, Eklof B, Elalamy I, Gerotziafas G, Geroulakos G, Giannoukas A, Greer I, Griffin M, Kakkos S, Lassen MR, Lowe GD, Markel A, Prandoni P, Raskob G, Spyropoulos AC, Turpie AG, Walenga JM, Warwick D. Prevention and treatment of venous thromboembolism--International Consensus Statement. Int Angiol. 2013 Apr;32(2):111-60.
  8. Kearon C, Akl EA, Comerota AJ, Prandoni P, Bounameaux H, Goldhaber SZ, Nelson ME, Wells PS, Gould MK, Dentali F, Crowther M, Kahn SR. Antithrombotic therapy for VTE disease: Antithrombotic Therapy and Prevention of Thrombosis, 9th ed: American College of Chest Physicians Evidence-Based Clinical Practice Guidelines. Chest. 2012 Feb;141(2 Suppl):e419S-e496S. doi: 10.1378/chest.11-2301
  9. Di Nisio M, Wichers IM, Middeldorp S. Treatment for superficial thrombophlebitis of the leg. Cochrane Database Syst Rev. 2018 Feb 25;2(2):CD004982. doi: 10.1002/14651858.CD004982.pub6
  10. Nicolaides A, Kakkos S, Baekgaard N, Comerota A, de Maeseneer M, Eklof B, Giannoukas AD, Lugli M, Maleti O, Myers K, Nelzén O, Partsch H, Perrin M. Management of chronic venous disorders of the lower limbs. Guidelines According to Scientific Evidence. Part I. Int Angiol. 2018 Jun;37(3):181-54. doi: 10.23736/S0392-9590.18.03999-8
  11. Российские клинические рекомендации по диагностике и лечению хронических заболеваний вен. Флебология. 2018;12(3):146-40. doi: 10.17116/flebo20187031146
  12. Chengelis DL, Bendick PJ, Glover JL, Brown OW, Ranval TJ. Progression of superficial venous thrombosis to deep vein thrombosis. J Vasc Surg. 1996 Nov;24(5):745-49. doi: 10.1016/s0741-5214(96)70007-1
  13. Pulliam CW, Barr SL, Ewing AB. Venous duplex scanning in the diagnosis and treatment of progressive superficial thrombophlebitis. Ann Vasc Surg. 1991 Mar;5(2):190-95. doi: 10.1007/BF02016755
  14. Kalodiki E, Stvrtinova V, Allegra C, Andreozzi G, Antignani PL, Avram R, Brkljacic B, Cadariou F, Dzsinich C, Fareed J, Gaspar L, Geroulakos G, Jawien A, Kozak M, Lattimer CR, Minar E, Partsch H, Passariello F, Patel M, Pécsvárady Z, Poredos P, Roztocil K, Scuderi A, Sparovec M, Szostek M, Skorski M. Superficial vein thrombosis: a consensus statement. Int Angiol. 2012 Jun;31(3):203-16. https://www.minervamedica.it/en/journals/international-angiology/article.php?cod=R34Y2012N03A0203
  15. Decousus H, Prandoni P, Mismetti P, Bauersachs RM, Boda Z, Brenner B, Laporte S, Matyas L, Middeldorp S, Sokurenko G, Leizorovicz A; CALISTO Study Group. Fondaparinux for the treatment of superficial-vein thrombosis in the legs. N Engl J Med. 2010 Sep 23;363(13):1222-32. doi: 10.1056/NEJMoa0912072
  16. Quenet S, Laporte S, Décousus H, Leizorovicz A, Epinat M, Mismetti P; STENOX Group. Factors predictive of venous thrombotic complications in patients with isolated superficial vein thrombosis. J Vasc Surg. 2003 Nov;38(5):944-49. doi: 10.1016/s0741-5214(03)00607-4
Адрес для корреспонденции:
220116, Республика Беларусь,
г. Минск, пр. Дзержинского, д. 83,
Белорусский государственный
медицинский университет,
2-я кафедра хирургических болезней,
тел.: +375 17277-11-55,
e-mail: vladimirkh77@mail.ru,
Хрыщанович Владимир Янович
Cведения об авторах:
Хрыщанович Владимир Янович, д.м.н., профессор, профессор 2-й кафедры хирургических болезней, Белорусский государственный медицинский университет, г. Минск, Республика Беларусь.
https://orcid.org/0000-0001-5353-205X
Скобелева Наталья Яновна, врач – акушер-гинеколог, аспирант кафедры акушерства и гинекологии, Белорусский государственный медицинский университет, г. Минск, Республика Беларусь.
https://orcid.org/0000-0003-2267-579X

НЕКРОЛОГ

СУШКОВ СЕРГЕЙ АЛЬБЕРТОВИЧ

18 февраля 2022 года на 62-ом году жизни ушел из жизни заместитель главного редактора журнала «Новости хирургии», проректор по научно-исследовательской работе ВГМУ, кандидат медицинских наук, доцент, Сушков Сергей Альбертович.
Родился Сергей Альбертович 11 октября 1960 года в д. Плюссы Браславского района Витебской области.
В 1983 году с отличием окончил Витебский государственный медицинский институт по специальности «лечебное дело». После окончания института обучался в клинической ординатуре на кафедре общей хирургии. С 1984 по 1988 год работал секретарём комитета комсомола института. С 1988 по 1990 год обучался в очной аспирантуре на кафедре общей хирургии, на которой впоследствии, до 1997 года работал ассистентом. С 1997 по 2000 год работал заведующим хирургическим отделением клинической больницы на станции Витебск.
С 2000 по 2009 год являлся заведующим кафедрой общей хирургии ВГМУ. В период с 2002 по 2004 год работал деканом факультета подготовки иностранных граждан.
С 3 июня 2009 года работал в должности проректора по научно-исследовательской работе.
Сушков С.А. являлся руководителем Витебского областного научно-практического центра «Флебология». Ежегодно в центре выполняется более 400 операций по поводу варикозной болезни нижних конечностей. На базе центра защищены 2 кандидатские диссертации, ведётся постоянная работа по разработке новых и усовершенствованию имеющихся методов лечения варикозной болезни нижних конечностей: эндовазальная лазерная коагуляция, эндоскопическая диссекция перфорантных вен, шейф-терапия трофических язв, склерооблитерация подкожных вен, мини-флебэктомия, экстравазальная коррекция клапанов бедренной вены, внедрена эндовенозная лазерная коагуляция с применением радиального световода, радиочастотная аблация вен.
Под руководством Сушкова С.А. проходила разработка Национальных рекомендаций по лечению острой и хронической венозной недостаточности.
С 2000 года работал в редакции журнала «Новости хирургии», с 2005 года – заместителем главного редактора журнала.
В 2009 г журнал по его инициативе представлен в Российский индекс научного цитирования. В 2010 г. журнал «Новости хирургии» стал первым белорусским научным медицинским изданием, включенным в перечень ВАК Российской Федерации. При активном участии проректора журнал «Новости хирургии» вошел в реферативную базу SCOPUS.
С.А.Сушков награждён Почетными грамотами Совета Министров Республики Беларусь, Министерства здравоохранения Республики Беларусь, Витебского областного исполнительного комитета, грамотой Министерства образования Республики Беларусь, нагрудным знаком «Отличник здравоохранения Республики Беларусь».

Редколлегия журнала от имени медицинской общественности выражает искреннее соболезнование родным и близким в связи с постигшей их тяжелой утратой.

Контакты | ©Витебский государственный медицинский университет, 2007-2023