Новости
хирургии
Журнал включен
в систему цитирования Scopus









2022 г. №2 Том 30

НАУЧHЫЕ ПУБЛИКАЦИИ
ЭКСПЕРИМЕHТАЛЬHАЯ ХИРУРГИЯ

DOI: https://dx.doi.org/10.18484/2305-0047.2022.2.135   |  

В.И. ЛУПАЛЬЦОВ, С.С. КИТЧЕHКО, И.В. СОРОКИHА, О.В. КАЛУЖИHА

МЕСТHАЯ ТРАHСПЛАHТАЦИЯ СТРОМАЛЬHЫХ КЛЕТОК ЖИРОВОЙ ТКАHИ В СРАВHИТЕЛЬHОЙ ОЦЕHКЕ ПОКАЗАТЕЛЕЙ ЗАЖИВЛЕHИЯ ЭКСПЕРИМЕHТАЛЬHОЙ ВЕHОЗHОЙ ТРОФИЧЕСКОЙ ЯЗВЫ

Харьковский национальный медицинский университет, г. Харьков,
Украина

Цель. Изучить эффективность стромальных клеток жировой ткани в восстановлении эпидермального слоя экспериментальной венозной трофической язвы.
Материал и методы. Формирование экспериментальной трофической язвы осуществлено у 14 кроликов-самцов линии Шиншилла. 7 кроликам (основная группа) в комплексном лечении осуществлялась аутотрансплантация мультипотентных мезенхимальных стромальных клеток (ММСК), выделенных из жировой ткани по методике P.A. Zuk et al. У 7 кроликов (контрольная группа) в местном лечении применялись ежедневные перевязки с обработкой язвы раствором диоксидина и последующим накладыванием мази на гидрофильной основе («Левомеколь»). В обеих группах на 1, 7, 14, 21-е сутки исследовались морфологические (демаркационный вал, относительный объем лейкоцитарно-некротической зоны и грануляционной ткани) и иммуногистохимические (определение оптической плотности иммунофлюоресценции коллагенов I и II типов, количественный подсчет иммунных клеток, продуцирующих ИЛ-6 и ФНОα) показатели.
Результаты. На 7-е сутки в основной группе показатели лейкоцитарно-некротического и лейкоцитарно-демаркационного валов составили 49,21±2,0% и 18,03±1,6% соответственно, в группе сравнения – 51,09±5,8%. Грануляционная ткань составляла в основной группе 32,55±2,4%, в группе сравнения – 29,73±2,9%. Оптическая плотность свечение коллагена III типа превышала показатель для коллагена I типа и составляла 0,069±0,001 ус. ед. св. в основной группе и 0,036±0,001 ус. ед. св. – в контрольной. На 21-е сутки в основной группе отмечалось уменьшение некротического очага, грануляционная ткань содержала большое количество микрососудов, клетки фибропластического ряда, макрофаги, лимфоциты, большое количество гигантских многоядерных клеток. Число клеток, экспрессирующих интерлейкин-6 и фактор некроза опухолей-α, значительно снизилось, отмечалось превалирование молодого интерстициального коллагена III типа.
Заключение. Применение клеточной терапии путем аутотрансплантации ММСК, выделенных из жировой ткани, в местном лечении экспериментальной «венозной» трофической язвы, приводит к ускорению репаративных процессов и позволяет достичь ее заживления.

Ключевые слова: хроническая венозная недостаточность, трофическая язва, клеточная терапия, мультипотентные мезенхимальные стромальные клетки, экспериме
с. 135-143 оригинального издания
Список литературы
  1. Бабинкіна ІБ, Новікова ГА, Бабинкіна ГП. Хірургічне лікування хронічної венозної недостатності нижніх кінцівок. Харківська Хірургічна Школа. 2020;(3):68-73. doi: 10.37699/2308-7005.3.2020.14
  2. Селиверстов ЕИ, Авакъянц ИП, Никишков АС, Золотухин ИА. Эпидемиология хронических заболеваний вен. Флебология. 2016;10(1):35-43. doi: 10.17116/flebo201610135-42
  3. Santler B, Goerge T. Chronic venous insufficiency - a review of pathophysiology, diagnosis, and treatment. J Dtsch Dermatol Ges. 2017 May;15(5):538-56. doi: 10.1111/ddg.13242
  4. Нікульніков ПІ, Ліксунов ОВ, Ратушнюк АВ, Бічер АГ. Можливості лікування трофічних виразок у хворих із декомпенсованими формами хронічної венозної недостатності нижніх кінцівок із використанням спрею КадефортТМ. Здоров’я України. Хірургія. Ортопедія. Травматологія. Інтенсивна Терапія. 2019;(1):19. https://health-ua.com/article/42852-mozhlivost-lkuvannya-trofchnih-virazok--uhvorih-zdekompensovanimi-formami--
  5. Черняк ВА, Корниенко КК. Характеристика механизма действия и место вазоактивных препаратов в лечении хронических заболеваний вен нижних конечностей по данным рекомендаций 2018 года. Хірургія України. 2019;(1):7-22. http://surgukraine.com.ua/article/view/SU2019-1-7
  6. Gottrup F, Apelqvist J, Bjarnsholt T, Cooper R, Moore Z, Peters EJ, Probst S. Antimicrobials and Non-Healing Wounds. Evidence, controversies and suggestions-key messages. J Wound Care. 2014 Oct;23(10):477-8, 480, 482. doi: 10.12968/jowc.2014.23.10.477
  7. Дубровщик ОИ, Довнар ИС, Колешко СВ, Ясюк ЛС, Ясюк АА. Трофические язвы венозного генеза: современные возможности лечения. Журн Гродн Гос Мед Ун-та. 2016;(2):107-111. http://journalgrsmu.by/index.php/ojs/article/view/1947
  8. Duzhiy ID, Nikolaienko AS, Popadynets VM, Kravets OV, Hresko IY, Holubnichyi SO, Sikora VV, Lyndіn MS, Romaniuk AM. Reparative processes features in trophic ulcers caused by diabetes mellitus with the use of platelet-rich plasma. Wiad Lek. 2020;73(10):2150-55. doi: 10.36740/WLek202010108
  9. Lonardi R, Leone N, Gennai S, Trevisi Borsari G, Covic T, Silingardi R. Autologous micro-fragmented adipose tissue for the treatment of diabetic foot minor amputations: a randomized controlled single-center clinical trial (MiFrAADiF). Stem Cell Res Ther. 2019 Jul 29;10(1):223. doi: 10.1186/s13287-019-1328-4
  10. Burgos-Alonso N, Lobato I, Hernández I, Sebastian KS, Rodríguez B, Grandes G, Andia I. Adjuvant Biological Therapies in Chronic Leg Ulcers. Int J Mol Sci. 2017 Nov 28;18(12):2561. doi: 10.3390/ijms18122561
  11. Zuk PA, Zhu M, Mizuno H, Huang J, Futrell JW, Katz AJ, Benhaim P, Lorenz HP, Hedrick MH. Multilineage cells from human adipose tissue: implications for cell-based therapies. Tissue Eng. 2001 Apr;7(2):211-28. doi: 10.1089/107632701300062859
  12. Пирс Э. Гистохимия (теоретическая и прикладная). Москва: Иностранная литература; 1962. 962 с.
  13. Brozman M. Immunofluorescence investigation of formol-paraffin material. Cesk Patol. 1979 Nov;15(4):215-20. [Article in Slovak]
  14. Magenta A, Florio MC, Ruggeri M, Furgiuele S. Autologous cell therapy in diabetes associated critical limb ischemia: From basic studies to clinical outcomes (Review). Int J Mol Med. 2021 Sep;48(3):173. doi: 10.3892/ijmm.2021.5006
  15. Lopes L, Setia O, Aurshina A, Liu S, Hu H, Isaji T, Liu H, Wang T, Ono S, Guo X, Yatsula B, Guo J, Gu Y, Navarro T, Dardik A. Stem cell therapy for diabetic foot ulcers: a review of preclinical and clinical research. Stem Cell Res Ther. 2018 Jul 11;9(1):188. doi: 10.1186/s13287-018-0938-6
  16. Chisari E, Rehak L, Khan WS, Maffulli N. The role of the immune system in tendon healing: a systematic review. Br Med Bull. 2020 May 15;133(1):49-64. doi: 10.1093/bmb/ldz040
  17. Zhang Y, Wang JH, Zhang YY, Wang YZ, Wang J, Zhao Y, Jin XX, Xue GL, Li PH, Sun YL, Huang QH, Song XT, Zhang ZR, Gao X, Yang BF, Du ZM, Pan ZW. Deletion of interleukin-6 alleviated interstitial fibrosis in streptozotocin-induced diabetic cardiomyopathy of mice through affecting TGFβ1 and miR-29 pathways. Sci Rep. 2016 Mar 14;6:23010. doi: 10.1038/srep23010
  18. Theiss AL, Simmons JG, Jobin C, Lund PK. Tumor necrosis factor (TNF) alpha increases collagen accumulation and proliferation in intestinal myofibroblasts via TNF receptor 2. J Biol Chem. 2005 Oct 28;280(43):36099-109. doi: 10.1074/jbc.M505291200
  19. Kirsner R.S. Wound iealing. In: Bolognia JL, Jorizzo JL, Rapini RP, eds. Dermatology. 2nd ed. St Louis (MO): Elsevier Health Sciences; 2008;2. р. 2147-58.
  20. Nielsen MJ, Karsdal MA. Chapter 3 - Type III Collagen. In: Karsdal MA, ed. Biochemistry of Collagens, Laminins and Elastin. Academic Press: 2016. p. 21-30. doi: 10.1016/B978-0-12-809847-9.00003-9
  21. Anderson JM, Rodriguez A, Chang DT. Foreign body reaction to biomaterials. Semin Immunol. 2008 Apr;20(2):86-100. doi: 10.1016/j.smim.2007.11.004
Адрес для корреспонденции:
61022, Украина, г. Харьков,
Харьковский национальный медицинский университет, проспект Науки, 4,
тел.: +38 057 725-57-74,
е-mail: surgdis@ukr.net,
Лупальцов Владимир Иванович
Cведения об авторах:
Лупальцов Владимир Иванович, д.м.н., профессор, член-корреспондент НАМН Украины, заведующий кафедрой хирургии № 3, Харьковский национальный медицинский университет, г. Харьков, Украина.
http://orcid.org/0000-0003-2121-529X
Китченко Сергей Сергеевич, ассистент кафедры хирургии № 3, Харьковский национальный медицинский университет, г. Харьков, Украина.
http://orcid.org/0000-0001-6330-6187
Сорокина Ирина Викторовна, д.м.н., профессор, и.о. заведующего кафедрой патологической анатомии, Харьковский национальный медицинский университет, г. Харьков, Украина.
http://orcid.org/0000-0002-5945-2605
Калужина Оксана Владимировна, к.мед.н., доцент кафедры патологической анатомии, Харьковский национальный медицинский университет, г. Харьков, Украина.
https://orcid.org/0000-0002-4181-9704

ОБЩАЯ И ЧАСТHАЯ ХИРУРГИЯ

DOI: https://dx.doi.org/10.18484/2305-0047.2022.2.144   |  

В.А. ЛАЗАРЕHКО, Е.А. БОБРОВСКАЯ

АHАЛИЗ ПОКАЗАТЕЛЕЙ МИКРОЦИРКУЛЯЦИИ У ПАЦИЕHТОВ ПРИ РАЗВИТИИ РЕСТЕHОЗА В ЗОHЕ АРТЕРИАЛЬHОЙ РЕКОHСТРУКЦИИ ПОСЛЕ БЕДРЕHHО-ПОДКОЛЕHHОГО ШУHТИРОВАHИЯ

Курский государственный медицинский университет, г. Курск,
Российская Федерация

Цель. Выявить особенности нарушений микроциркуляции при развитии рестеноза зоны артериальной реконструкции у пациентов с облитерирующим атеросклерозом после бедренно-подколенного шунтирования.
Материал и методы. В исследование включено 82 пациента с облитерирующим атеросклерозом со II Б-III степенью хронической артериальной недостаточности, которым выполнено бедренно-подколенное шунтирование. У 21 пациента послеоперационный период протекал без развития рестеноза зоны артериальной реконструкции (I группа). Во II группу вошли 61 пациент, у которых в течение года развился рестеноз зоны артериальной реконструкции. Оценивали показатели микроциркуляции с анализом амплитудно-частотного спектра осцилляций кровотока до и после реваскуляризующей операции.
Результаты. Установлено, что у пациентов II группы ниже показатель микроциркуляции (45,3%, р<0,001) и резерв капиллярного кровотока (49,2%, р<0,001) как исходно до операции, так и после проведения реваскуляризации (30,7%, р<0,001 и 51,4%, р<0,001) со значимо высокими значениями артериоло-венулярного шунтирования до и после операции (26,6%, р<0,001 и 41,9%, р<0,001), возрастающими после окклюзионной пробы, по сравнению с I группой. В амплитудно-частотном спектре II группы отмечено нарушение активных компонентов за счет исходного низкого значения миогенного компонента (47,3%, р<0,001) и высокого нейрогенного (35,5%, р<0,001) компонента со значимо высоким показателем после окклюзионной пробы (64,3%, р<0,05) по сравнению с I группой, которые не нормализовались после реваскуляризации конечности, наряду с нарушением функции пассивных механизмов модуляции кровотока.
Заключение. Развитие рестеноза после бедренно-подколенного шунтирования сопровождается выраженным нарушением состояния микроциркуляции и сбалансированности механизмов модуляции кровотока, не нормализующихся после реваскуляризации конечности. Исследование показателей микроциркуляции с оценкой функциональной активности микроциркуляторного кровотока до и после операции позволит верифицировать имеющиеся нарушения и персонифицировать лечебную тактику.

Ключевые слова: микроциркуляция, атеросклероз, рестеноз, бедренно-подколенное шунтирование, лазерная допплеровская флоуметрия
с. 144-151 оригинального издания
Список литературы
  1. Аракелян ВС. Пути снижения частоты осложнений у больных, перенесших реконструктивные и эндоваскулярные операции на артериях нижних конечностей. Ангиология и Сосудистая Хирургия. 2020;26(1):165-73. doi: 10.33529/ANGIO2020106
  2. Conte MS, Bradbury AW, Kolh P, White JV, Dick F, Fitridge R, Mills JL, Ricco JB, Suresh KR, Murad MH, Aboyans V, Aksoy M, Alexandrescu VA, Armstrong D, Azuma N, Belch J, Bergoeing M, Bjorck M, Chakfé N, Cheng S, Dawson J, Debus ES, Dueck A, Duval S, Eckstein HH, Ferraresi R, Gambhir R, Gargiulo M, Geraghty P, Goode S, Gray B, Guo W, Gupta PC, Hinchliffe R, Jetty P, Komori K, Lavery L, Liang W, Lookstein R, Menard M, Misra S, Miyata T, Moneta G, Munoa Prado JA, Munoz A, Paolini JE, Patel M, Pomposelli F, Powell R, Robless P, Rogers L, Schanzer A, Schneider P, Taylor S, De Ceniga MV, Veller M, Vermassen F, Wang J, Wang S; GVG Writing Group for the Joint Guidelines of the Society for Vascular Surgery (SVS), European Society for Vascular Surgery (ESVS), and World Federation of Vascular Societies (WFVS). Global Vascular Guidelines on the Management of Chronic Limb-Threatening Ischemia. Eur J Vasc Endovasc Surg. 2019 Jul;58(1 Suppl):S1-S109.e33. doi: 10.1016/j.ejvs.2019.05.006
  3. Белов ЮВ, Виноградов ОА, Ульянов НД, Дзюндзя АН. Прогнозирование результатов реваскуляризирующих операций на артериях нижних конечностей на основе методов оценки регионарного кровотока. Кардиология и Сердечно-Сосудистая Хирургия. 2014;7(5):62-67. https://www.mediasphera.ru/issues/kardiologiya-i-serdechno-sosudistaya-khirurgiya/2014/5/031996-63852014512
  4. Гороховский СЮ, Лызиков АА, Каплан МЛ, Тихманович ВЕ. Необходимость и варианты функционального контроля в определении объема оперативного вмешательства при окклюзирующих поражениях артерий нижних конечностей. Новости Хирургии. 2020;28(5):505-14. doi: 10.18484/2305-0047.2020.5.505
  5. Ikeoka K, Watanabe T, Shinoda Y, Minamisaka T, Fukuoka H, Inui H, Ueno K, Inoue S, Mine K, Hoshida S. Pressure- and Velocity-based physiological assessment of stenotic lesions at hyperemia in superficial femoral artery disease: importance of hyperemic stenosis resistance. Ann Vasc Dis. 2019 Sep 25;12(3):362-66. doi: 10.3400/avd.oa.19-00034
  6. Okamoto S, Iida O, Nakamura M, Yamauchi Y, Fukunaga M, Yokoi Y, Soga Y, Zen K, Hirano K, Suematsu N, Suzuki K, Shintani Y, Miyashita Y, Urasawa K, Kitano I, Yamaoka T, Ohura N, Hamasaki T, Uematsu M, Nanto S; OLIVE Investigators. Postprocedural skin perfusion pressure correlates with clinical outcomes 1 year after endovascular therapy for patients with critical limb ischemia. Angiology. 2015 Oct;66(9):862-66. doi: 10.1177/0003319715569907
  7. Заболевания артерий нижних конечностей. Клинические рекомендации [Электронный ресурс]. Москва, РФ; 2016. 94 с. Available from: https://racvs.ru/clinic/files/2016/Diseases-lower-limb-arteries.pdf
  8. Крупаткин АИ, Сидоров ВВ. Функциональная диагностика состояния микроциркуляторно-тканевых систем: колебания, информация, нелинейность: рук для врачей. Москва, РФ: ЛИБРОКОМ; 2013. 496 с.
  9. Jasperse JL, Shoemaker JK, Gray EJ, Clifford PS. Positional differences in reactive hyperemia provide insight into initial phase of exercise hyperemia. J Appl Physiol (1985). 2015 Sep 1;119(5):569-75. doi: 10.1152/japplphysiol.01253.2013
  10. Treml B, Kleinsasser A, Stadlbauer KH, Steiner I, Pajk W, Pilch M, Burtscher M, Knotzer H. Cutaneous microvascular blood flow and reactivity in hypoxia. Front Physiol. 2018 Mar 6;9:160. doi: 10.3389/fphys.2018.00160. eCollection 2018
  11. Ichinose M, Nakabayashi M, Ono Y. Difference in the integrated effects of sympathetic vasoconstriction and local vasodilation in human skeletal muscle and skin microvasculature. Physiol Rep. 2019 Apr;7(7):e14070. doi: 10.14814/phy2.14070
  12. Лазаренко ВА, Бобровская ЕА, Путинцева ЕВ, Богданова ЮГ, Жеребилов НН. Оценка состояния системы микроциркуляции и механизмов регуляции тканевого кровотока у больных облитерирующим атеросклерозом при различных уровнях поражения артериального русла. Курский науч-практ вестн «Человек и Его Здоровье». 2011;(3):82-86. https://cyberleninka.ru/article/n/otsenka-sostoyaniya-sistemy-mikrotsirkulyatsii-i-mehanizmov-regulyatsii-tkanevogo-krovotoka-u-bolnyh-obliteriruyuschim
  13. Стрельцова НН, Васильев АП, Бессонов ИС, Колунин ГВ. Изменение микроциркуляторной картины у больных перемежающейся хромотой после эндоваскулярного восстановления магистрального кровотока конечности. Регионарное Кровообращение и Микроциркуляция. 2018;17(2):42-48. doi: 10.24884/1682-6655-2018-17-2-42-48
  14. Васильев АП, Стрельцова НН, Бессонов ИС, Коротких АВ. Состояние микроциркуляции у больных атеросклерозом и сахарным диабетом после реваскуляризации конечности. Ангиология и Сосудистая Хирургия. 2020;26(1):22-29. doi: 10.33529/ANGIO2020112
  15. Ruzsa Z, Róna S, Tóth GG, Sótonyi P, Bertrand OF, Nemes B, Merkely B, Hüttl K. Fractional flow reserve in below the knee arteries with critical limb ischemia and validation against gold-standard morphologic, functional measures and long term clinical outcomes. Cardiovasc Revasc Med. 2018 Mar;19(2):175-81. doi: 10.1016/j.carrev.2017.07.007
Адрес для корреспонденции:
305041, Российская Федерация,
г. Курск, ул. К. Маркса, д. 3,
Курский государственный медицинский университет, кафедра хирургических болезней Института непрерывного образования,
тел.: +7 4712 58-81-32,
e-mail: azaroks@mail.ru,
Лазаренко Виктор Анатольевич
Cведения об авторах:
Лазаренко Виктор Анатольевич, д.м.н., профессор, заведующий кафедрой хирургических болезней Института непрерывного образования, Курский государственный медицинский университет, г. Курск, Российская Федерация.
https://orcid.org/0000-0002-2069-7701
Бобровская Елена Анатольевна, д.м.н., доцент, профессор кафедры хирургических болезней Института непрерывного образования, Курский государственный медицинский университет, г. Курск, Российская Федерация.
https://orcid.org/0000-0003-3898-5522
DOI: https://dx.doi.org/10.18484/2305-0047.2022.2.152   |  

И.В. МАКАРОВ, Н.А. ПРОКОФЬЕВА, А.Ю. СИДОРОВ, В.М. ГОЛУБОВА

СПОСОБЫ ЛАБОРАТОРHОЙ ИHТЕГРАЛЬHОЙ ОЦЕHКИ ФОСФОРHО-КАЛЬЦИЕВОГО ОБМЕHА В ДИАГHОСТИКЕ ПЕРВИЧHОГО ГИПЕРПАРАТИРЕОЗА

Самарский государственный медицинский университет, г. Самара,
Российская Федерация

Цель. Разработка способов лабораторной интегральной оценки фосфорно-кальциевого обмена для получения сведений о функциональном состоянии околощитовидных желез (ОЩЖ), вероятном наличии или отсутствии первичного гиперпаратиреоза (ПГПТ) и контроля эффективности проведенного лечения.
Материал и методы. Обследованы 70 пациентов с ПГПТ (первая группа) и 19 здоровых добровольцев (вторая группа). В первой группе женщин было 59 (84%), мужчин – 11 (16%), средний возраст – 59±12,6 года (M±σ). Эта группа была разделена на две равные подгруппы: 1 А и 1 Б. В первой (до и после операции) и во второй группах рассчитывали 2 показателя: IПГПТ и КПГПТ. IПГПТ определяли в 1А и второй группе как отношение произведения фосфора и общего кальция к паратгормону (ПТГ); КПГПТ рассчитывали в 1 Б и второй группе как отношение произведения фосфора и ионизированного кальция к ПТГ. Наличие или отсутствие аденом ОЩЖ подтверждали УЗИ шеи, сцинтиграфией ОЩЖ, МРТ шеи.
Результаты. При определении IПГПТ в 1 А подгруппе до операции его значения варьировали от 0,037 до 2,46 (1,12±0,83). Во второй группе – от 3,35 до 9,5 (5,6±1,99) (M±σ). При определении КПГПТ в 1 Б группе до операции его значения варьировали от 0,017 до 1,95 (0,52±0,36). У обследуемых второй группы – от 2,88 до 6,34 (3,86±1,27). В 1-е сутки после удаления аденом ОЩЖ средние значения индексов приближались к значениям здоровых людей второй группы: IПГПТ в 1 А подгруппе – 9,7±5,68, а КПГПТ в 1 Б подгруппе – 3,30±3,34, что подтверждало эффективность проведенной операции.
Заключение. Предложенные способы лабораторной интегральной оценки фосфорно-кальциевого обмена являются достоверными методами количественной оценки функции ОЩЖ. Значения IПГПТ ≥ 2,46 и КПГПТ > 1,95 свидетельствуют об отсутствии патологии ОЩЖ. Значения IПГПТ ≤ 2,46 и КПГПТ ≤ 1,95 свидетельствуют о наличии ПГПТ.

Ключевые слова: первичный гиперпаратиреоз, фосфорно-кальциевый обмен, лабораторная диагностика, интегральные показатели, хирургическое лечение
с. 152-161 оригинального издания
Список литературы
  1. Дедов ИИ, Мельниченко ГА, Мокрышева НГ, Рожинская ЛЯ, Кузнецов НС, Пигарова ЕА, Еремкина АК, Егшатян ЛВ, Мамедова ЕО, Крупинова ЮА. Первичный гиперпаратиреоз: клиника, диагностика, дифференциальная диагностика, методы лечения. Проблемы Эндокринологии. 2016;62(6):40-77. doi: 10.14341/probl201662640-77
  2. Клинические рекомендации. Первичный гиперпаратиреоз. 2020. [Электронный ресурс]. Рос ассоциация эндокринологов [ссылка активна на 2021 Март 15]. 90 с. Режим доступа: https://rae-org.ru/system/files/documents/pdf/pervichnyy_giperparatireoz.pdf
  3. De Lucia F, Minisola S, Romagnoli E, Pepe J, Cipriani C, Scillitani A, Parikh N, Rao DS. Effect of gender and geographic location on the expression of primary hyperparathyroidism. J Endocrinol Invest. 2013 Feb;36(2):123-26. doi: 10.3275/8455
  4. Мамедова ЕО, Мокрышева НГ, Рожинская ЛЯ. Особенности первичного гиперпаратиреоза у пациентов молодого возраста. Проблемы Эндокринологии. 2018;64(3):163-69. doi: 10.14341/probl9399
  5. Wang WH, Chen LW, Lee CC, Sun CY, Shyu YC, Hsu HR, Chien RN, Wu IW. Association between Parathyroid Hormone, 25 (OH) Vitamin D, and Chronic Kidney Disease: A Population-Based Study. Biomed Res Int. 2017;2017:7435657. doi: 10.1155/2017/7435657
  6. Catalano A, Chilà D, Bellone F, Nicocia G, Martino G, Loddo I, Morabito N, Benvenga S, Loddo S. Incidence of hypocalcemia and hypercalcemia in hospitalized patients: Is it changing? J Clin Transl Endocrinol. 2018 May 29;13:9-13. doi: 10.1016/j.jcte.2018.05.004. eCollection 2018 Sep.
  7. Bilezikian JP, Silva BC, Cusano NE. Primary hyperparathyroidism – hypercalcemic and normocalcemic variants. Curr Opin Endocr Metab Res. 2018 Dec;3:42-50. doi: 10.1016/j.coemr.2018.03.003
  8. Assadipour Y, Zhou H, Kuo EJ, Haigh PI, Adams AL, Yeh MW. End-organ effects of primary hyperparathyroidism: A population-based study. Surgery. 2019 Jan;165(1):99-104. doi: 10.1016/j.surg.2018.04.088
  9. Wilhelm SM, Wang TS, Ruan DT, Lee JA, Asa SL, Duh QY, Doherty GM, Herrera MF, Pasieka JL, Perrier ND, Silverberg SJ, Solórzano CC, Sturgeon C, Tublin ME, Udelsman R, Carty SE. The American Association of Endocrine Surgeons Guidelines for Definitive Management of Primary Hyperparathyroidism. JAMA Surg. 2016 Oct 1;151(10):959-68. doi: 10.1001/jamasurg.2016.2310
  10. Khan AA, Hanley DA, Rizzoli R, Bollerslev J, Young JE, Rejnmark L, Thakker R, D’Amour P, Paul T, Van Uum S, Shrayyef MZ, Goltzman D, Kaiser S, Cusano NE, Bouillon R, Mosekilde L, Kung AW, Rao SD, Bhadada SK, Clarke BL, Liu J, Duh Q, Lewiecki EM, Bandeira F, Eastell R, Marcocci C, Silverberg SJ, Udelsman R, Davison KS, Potts JT Jr, Brandi ML, Bilezikian JP. Primary hyperparathyroidism: review and recommendations on evaluation, diagnosis, and management. A Canadian and international consensus. Osteoporos Int. 2017 Jan;28(1):1-19. doi: 10.1007/s00198-016-3716-2
Адрес для корреспонденции:
443099, Российская Федерация,
г. Самара, ул. Чапаевская, 89,
Самарский государственный
медицинский университет,
кафедра хирургии Института педиатрии,
тел. +79033342259,
e-mail: i.v.makarov@samsmu.ru,
Макаров Игорь Валерьевич
Cведения об авторах:
Макаров Игорь Валерьевич, д.м.н., профессор, заведующий кафедрой хирургии Института педиатрии, Самарский государственный медицинский университет, г. Самара, Российская Федерация. https://orcid.org/0000-0002-1068-3330
Прокофьева Наталья Александровна, ассистент кафедры хирургии Института педиатрии, Самарский государственный медицинский университет, г. Самара, Российская Федерация.
https://orcid.org/0000-0001-7620-6724
Сидоров Александр Юрьевич, доцент кафедры хирургии Института педиатрии, Самарский государственный медицинский университет, г. Самара, Российская Федерация.
https://orcid.org/0000-0003-3613-4863
Голубова Валентина Михайловна, ординатор кафедры хирургии Института педиатрии, Самарский государственный медицинский университет, г. Самара, Российская Федерация.
https://orcid.org/0000-0003-3510-2763
DOI: https://dx.doi.org/10.18484/2305-0047.2022.2.162   |  

В.И. АВЕРИH ¹, Ю.Г. ДЕГТЯРЕВ ¹, Н.С. ПРОКОПЕHЯ ², О.А. ГОВОРУХИHА ², С.А. СУХАРЕВ ²

ДИАГHОСТИКА И ЛЕЧЕHИЕ ДЕТЕЙ С КРЕСТЦОВО-КОПЧИКОВЫМИ ТЕРАТОМАМИ

Белорусский государственный медицинский университет 1,
Республиканский научно-практический центр детской хирургии 2, г. Минск,
Республика Беларусь

Цель. Оценить методы диагностики и результаты хирургического лечения детей с крестцово-копчиковыми тератомами (ККТ) в Республике Беларусь с 1994 по 2020 годы.
Материал и методы. В исследование включены 73 пациента с ККТ, девочек – 55 (75,3%), мальчиков – 18 (24,7%). Для диагностики применяли ультразвуковое исследование, обзорную рентгенографию брюшной полости и костей таза, компьютерную и магнитно-резонансную томографию, определение альфа-фетопротеина.
Результаты. В Беларуси ККТ встречаются с частотой 1: 37 173 новорожденных. Антенатально патология выявлена в 45 (61,6%) случаях при сроках беременности от 20 до 34 недель (24,7±4,9). I и II тип ККТ был выявлен у 58 (79,5%), III – у 10 (13,7%) и IV – у 5 (6,8%) пациентов. Зрелая ККТ диагностирована у 68 (93,2%), незрелая – у 3 (4,1%), злокачественная – у 2 (2,7%) пациентов. Из них у 14 (19,2%) были множественные врожденные пороки развития. Радикальная операция выполнена 68 детям в первые две недели жизни (93,2%). В возрасте 2 месяцев поступили 3 ребенка, в 6 месяцев – 1 (с рецидивом ККТ), в 10 месяцев – 1, и в 14 месяцев – 1 ребенок. Функциональные нарушения тазовых органов (недержание кала) у 5 пациентов. Дизурические расстройства отмечены у 16 пациентов, в раннем послеоперационном периоде – у 9, в отдаленном периоде у 7 развилась клиническая картина нейрогенного мочевого пузыря. Рецидив ККТ отметили через 6 месяцев у одного пациента (1,4%). Летальность составила 4,16%, из 72 оперированных умерло 3, при гистологическом исследовании образования у которых была выявлена морфологически незрелая опухоль.
Заключение. При своевременной диагностике и радикальном удалении ККТ прогноз благоприятный. Однако, по нашим данным, существуют проблемы с функциональным нарушением тазовых органов (9,58%).

Ключевые слова: крестцово-копчиковая тератома, дети, эпидемиология, пренатальная диагностика, клиническая картина, хирургическое лечение
с. 162-170 оригинального издания
Список литературы
  1. Lev-Chelouche D, Gutman M, Goldman G, Even-Sapir E, Meller I, Issakov J, Klausner JM, Rabau M. Presacral tumors: a practical classification and treatment of a unique and heterogeneous group of diseases. Surgery. 2003 May;133(5):473-8. doi: 10.1067/msy.2003.118
  2. Pappalardo G, Frattaroli FM, Casciani E, Moles N, Mascagni D, Spoletini D, Fanello G, Gualdi G. Retrorectal tumors: the choice of surgical approach based on a new classification. Am Surg. 2009 Mar;75(3):240-48. doi: 10.1177/000313480907500311
  3. Norris HJ, Zirkin HJ, Benson WL. Immature (malignant) teratoma of the ovary: a clinical and pathologic study of 58 cases. Cancer. 1976 May;37(5):2359-72. doi: 10.1002/1097-0142(197605)37:5<2359::aid-cncr2820370528>3.0.co;2-q
  4. Srivastava A, Jaiswal AK, Jain K, Behari S. Sacrococcygeal teratoma. J Pediatr Neurosci. 2010 Jan;5(1):30-31. doi: 10.4103/1817-1745.66682
  5. Swamy R, Embleton N, Hale J. Sacrococcygeal teratoma over two decades: birth prevalence, prenatal diagnosis and clinical outcomes. Prenat Diagn. 2008 Nov;28(11):1048-51. doi: 10.1002/pd.2122
  6. Richie AC, eds. Boyd’s textbook of pathology, vols I and II. 9th ed. Lea & Febiger; 1990. 2065 p. doi: 10.1002/path.1711650317
  7. Горелова ЕМ. Крестцово-копчиковая тератома (ККТ). Дет Хирургия. 2016;20(4):194-99. doi 10.18821/1560-9510-2016-20-4-194-199
  8. Altman RP, Randolph JG, Lilly JR. Sacrococcygeal teratoma: American Academy of Pediatrics Surgical Section Survey-1973. J Pediatr Surg. 1974 Jun;9(3):389-98. doi: 10.1016/s0022-3468(74)80297-6
  9. Gabra HO, Jesudason EC, McDowell HP, Pizer BL, Losty PD. Sacrococcygeal teratoma – a 25-year experience in a UK regional center. J Pediatr Surg. 2006 Sep;41(9):1513-16. doi: 10.1016/j.jpedsurg.2006.05.019
  10. Dolk H. EUROCAT: 25 years of European surveillance of congenital anomalies. Arch Dis Child Fetal Neonatal Ed. 2005 Sep;90(5):F355-8. doi: 10.1136/adc.2004.062810
  11. Численность населения на 1 января 2021 г. и среднегодовая численность населения за 2020 год по Республике Беларусь в разрезе областей, районов, городов, поселков городского типа [Электронный ресурс] 2021 [дата обращения: 2021 Май 26]. Минск, РБ: Нац стат комитет Респ Беларусь. 25 с. Available from: https://www.belstat.gov.by/upload/iblock/158/1584531a2b89fa1a0945f6dc809ff268.pdf
  12. Коноплицкий ВС, Погорелый ВВ, Дубровин АГ, Моравская ОА, Чугу ТВ, Якименко АГ, Лукиянец ОА. Тактика и стратегия лечения гигантской крестцово-копчиковой тератобластомы в сочетании с тератомой у новорожденного. Хирургия Дет Возраста. 2018;(1):61-65. doi: 10.15574/PS.2018.58.61
  13. Чепурной МГ, Чепурной ГИ, Кацупеев ВБ, Лейга АВ, Розин БГ, Каргезян РЛ. 35-летний опыт лечения крестцово-копчиковых тератом у детей. Дет Хирургия. 2015;19(2):4-8. https://www.elibrary.ru/item.asp?id=23279011
  14. Chirdan LB, Uba AF, Pam SD, Edino ST, Mandong BM, Chirdan OO. Sacrococcygeal teratoma: clinical characteristics and long-term outcome in Nigerian children. Ann Afr Med. 2009 Apr-Jun;8(2):105-9. doi: 10.4103/1596-3519.56238
Адрес для корреспонденции:
220116, Республика Беларусь,
г. Минск, пр. Дзержинского, д. 83,
Белорусский государственный медицинский университет, кафедра детской хирургии,
тел. раб.: +375 017 290-49-23,
e-mail: averinvi@mail.ru,
Аверин Василий Иванович
Cведения об авторах:
Аверин Василий Иванович, д.м.н., профессор, заведующий кафедрой детской хирургии, Белорусский государственный медицинский университет, г. Минск, Республика Беларусь.
https://orcid.org/0000-0003-3343-8810
Дегтярев Юрий Григорьевич, д.м.н., профессор кафедры детской хирургии, Белорусский государственный медицинский университет, г. Минск, Республика Беларусь.
https://orcid.org/0000-0002-2696-4989
Прокопеня Наталья Сергеевна, врач-детский хирург, РНПЦ детской хирургии, 2 хирургическое отделение, г. Минск, Республика Беларусь.
https://orcid.org/0000-0002-1347-6847
Говорухина Ольга Алексеевна, к.м.н., доцент, заведующий 2 хирургическим отделением, РНПЦ детской хирургии, г. Минск, Республика Беларусь.
https://orcid.org/0000-0002-1605-7031
Сухарев Сергей Александрович, врач-детский хирург, РНПЦ детской хирургии, 2 хирургическое отделение, г. Минск, Республика Беларусь.
https://orcid.org/0000-0001-8295-6919
DOI: https://dx.doi.org/10.18484/2305-0047.2022.2.171   |  

М.Ж. АЛИЕВ 1, А.И. МУСАЕВ 1, К.И. НИЯЗБЕКОВ 2

ПРОФИЛАКТИКА ПОСЛЕОПЕРАЦИОHHЫХ ОСЛОЖHЕHИЙ ПРИ ЭХИHОКОККЭКТОМИИ ПЕЧЕHИ

Городская клиническая больница № 11, г. Бишкек,
Кыргызская государственная медицинская академия имени И.К. Ахунбаева 2,
Кыргызская Республика

Цель. Оценить результаты применения гемостатической коллагеновой губки в профилактике возникновения остаточной полости и использования инфракрасного облучения операционной раны для предотвращения воспалительных раневых осложнений при эхинококкэктомии печени.
Материал и методы. 226 пациентам выполнены операции при эхинококкозе печени. Выделены группы: контрольная (122 человека) и основная (104 человека). По клиническим показателям (пол, возраст, форма эхинококкоза, размеры кист) группы были сопоставимы. В обеих группах использованы общепринятые методы эхинококкэктомии печени. В контрольной группе выполнены органосохраняющие у 78 и радикальные операции у 44 больных. В послеоперационном периоде пациенты получали традиционное лечение. В основной группе у 87 пациентов произведены органосохраняющие операции, у 17 – радикальная эхинококкэктомия. Из 87 больных у 18 для профилактики остаточной полости, когда не удавалось полностью ликвидировать полость фиброзной капсулы, использована гемостатическая коллагеновая губка. Для предотвращения раневых осложнений применяли инфракрасное излучение на область операционной раны у 104 пациентов. С целью оценки результатов использовано определение количества лейкоцитов, лейкоцитарный индекс интоксикаций, ультразвуковое исследование и измерение зоны инфильтрации раны (эхоморфометрия).
Результаты. В контрольной группе остаточная полость выявлена у 12 (9,8%), а раневые осложнения – у 6 (4,9%) пациентов. В основной группе остаточная полость выявлена у одного пациента и раневые осложнения – у 2 (1,9%) больных. При оценке клинических показателей установлено, что нормализация температуры тела, исчезновение болей, нормализация количества лейкоцитов происходили быстрее в основной группе, получавшей инфракрасное излучение, а при выполнении эхоморфометрии операционной раны размеры гипоэхогенной зоны с увеличением срока в послеоперационном периоде уменьшались быстрее.
Заключение. Гемостатическая коллагеновая губка может использоваться при капитонаже и инвагинации, когда есть риск возникновения осложнений. Применение гемостатической губки при органосохраняющих операциях предотвращает возникновение остаточной полости, а инфракрасное облучение области раны является профилактикой воспалительных осложнений.

Ключевые слова: эхинококкоз печени, оперативное лечение, гемостатическая коллагеновая губка, инфракрасное излучение, эхоморфометрия
с. 171-178 оригинального издания
Список литературы
  1. Kern P, Menezes da Silva A, Akhan O, Müllhaupt B, Vizcaychipi KA, Budke C, Vuitton DA. The echinococcoses: diagnosis, clinical management and burden of disease. Adv Parasitol. 2017;96:259-69. doi: 10.1016/bs.apar.2016.09.006
  2. Deplazes P, Rinaldi L, Alvarez Rojas CA, Torgerson PR, Harandi MF, Romig T, Antolova D, Schurer JM, Lahmar S, Cringoli G, Magambo J, Thompson RC, Jenkins EJ. Global distribution of alveolar and cystic echinococcosis. Adv Parasitol. 2017;95:315-93. doi: 10.1016/bs.apar.2016.11.001
  3. Вишневский ВА, Ефанов МГ, Икрамов РЗ, Назаренко НА, Чжао АВ. Эхинококкоз печени. Хирургическое лечение. Доказательная Гастроэнтерология. 2013;(2):18-25. https://www.mediasphera.ru/issues/dokazatelnayagastroentero-logiya/2013/2/032305-2260201323
  4. Prousalidis J, Kosmidis C, Anthimidis G, Kapoutzis K, Karamanlis E, Fachantidis E. Postoperative recurrence of cystic hydatidosis. Can J Surg. 2012 Feb;55(1):15-20. doi: 10.1503/cjs.013010
  5. Джаборов АИ, Кахаров АН, Курбонов ДжМ. Рецидивный эхинококкоз печени. Вестн Авиценны. 2015;(4):30-34. doi: 10.25005/2074-0581-2015-17-4-30-34
  6. Sozuer E, Akyuz M, Akbulut S. Open surgery for hepatic hydatid disease. Int Surg. 2014 Nov-Dec;99(6):764-69. doi: 10.9738/INTSURG-D-14-00069.1
  7. Bedioui H, Bouslama K, Maghrebi H, Farah J, Ayari H, Hsairi H, Kacem M, Jouini M, Bensafta Z. Predictive factors of morbidity after surgical treatment of hepatic hydatid cyst. Pan Afr Med J. 2012;13:29. https://www.ncbi.nlm.nih.gov/pmc/articles/PMC3527061/
  8. Baraket O, Moussa M, Ayed K, Kort B, Bouchoucha S. Predictive factors of morbidity after surgical treatment of hydatid cyst of the liver. Arab J Gastroenterol. 2014 Sep-Dec;15(3-4):119-22. doi: 10.1016/j.ajg.2014.05.004
  9. Альперович БИ. Хирургия печени. Москва, РФ: ГЭОТАР-Медиа; 2013. 352 с.
  10. Birnbaum DJ, Hardwigsen J, Barbier L, Bouchiba N, Le Treut YP. Is hepatic resection the best treatment for hydatid cyst? J Gastrointest Surg. 2012 Nov;16(11):2086-93. doi: 10.1007/s11605-012-1993-4
  11. Tagliacozzo S, Miccini M, Amore Bonapasta S, Gregori M, Tocchi A. Surgical treatment of hydatid disease of the liver: 25 years of experience. Am J Surg. 2011 Jun;201(6):797-804. doi: 10.1016/j.amjsurg.2010.02.011
  12. Pang Q, Jin H, Man Z, Wang Y, Yang S, Li Z, Lu Y, Liu H, Zhou L. Radical versus conservative surgical treatment of liver hydatid cysts: a meta-analysis. Front Med. 2018 Jun;12(3):350-59. doi: 10.1007/s11684-017-0559-y
  13. Georgiou GK, Lianos GD, Lazaros A, Harissis HV, Mangano A, Dionigi G, Katsios C. Surgical management of hydatid liver disease. Int J Surg. 2015 Aug;20:118-22. doi: 10.1016/j.ijsu.2015.06.058
  14. Fischer L, Seiler CM, Broelsch CE, de Hemptinne B, Klempnauer J, Mischinger HJ, Gassel HJ, Rokkjaer M, Schauer R, Larsen PN, Tetens V, Büchler MW. Hemostatic efficacy of TachoSil in liver resection compared with argon beam coagulator treatment: an open, randomized, prospective, multicenter, parallel-group trial. Surgery. 2011 Jan;149(1):48-55. doi: 10.1016/j.surg.2010.02.008
  15. Амонов ШШ, Прудков МИ, Орлов ОГ, Гульмурадов ТГ, Амонов ШН, Саидов МС. Опыт использования раневого покрытия «Тахокомб» при эхинококкозе печени. Доклады Академии наук Республики Таджикстан. 2013;56(5):415-19. https://cyberleninka.ru/article/n/opyt-ispolzovaniya-ranevogo-pokrytiya-tahokomb-pri-ehinokokkoze-pecheni
  16. Мусаев УС, Толоров ЖЖ, Оморов ТБ. Меры профилактики осложнений при деструктивных формах острого холецистита. Вестн ОшГУ. 2018;(3):177-82. https://www.elibrary.ru/item.asp?id=36486895
Адрес для корреспонденции:
720054, Кыргызская Республика,
г. Бишкек, ул. Ю. Фучика, 15,
городская клиническая больница №1,
тел.: +996 550 650008,
е-mail: musa-aliev-69@mail.ru,
Алиев Мусабай Жумашович
Cведения об авторах:
Мусаев Акылбек Инаятович, д.м.н., профессор, главный врач городской клинической больницы № 1, г. Бишкек, Кыргызская Республика.
http://orcid.org /0000-0002-3915-0300
Алиев Мусабай Жумашович, к.м.н., врач хирургического отделения № 1, Городская клиническая больница № 1, г. Бишкек, Кыргызская Республика.
http://orcid.org /0000-0003-0771-245X
Ниязбеков Кубат Ибраимович, к.м.н., доцент кафедры хирургии общей практики с курсом комбустиологии, Кыргызская государственная медицинская академия имени И.К. Ахунбаева, Кыргызская Республика.
http://orcid.org/0000-0002-4103-3138
DOI: https://dx.doi.org/10.18484/2305-0047.2022.2.179   |  

А.Ю. НИШТ, Н.Ф. ФОМИH

АHАТОМО-ЭКСПЕРИМЕHТАЛЬHЫЕ ПОДХОДЫ К ОБОСHОВАHИЮ ПРИЕМОВ УСКОРЕHHОЙ СЕЛЕКТИВHОЙ РЕИHHЕРВАЦИИ МЫШЦ КИСТИ ПРИ ПРОКСИМАЛЬHЫХ ТРАВМАХ ПЕРИФЕРИЧЕСКИХ HЕРВОВ

Военно-медицинская академия имени С.М. Кирова МО РФ, г. Санкт-Петербург,
Российская Федерация

Цель. Обосновать с топографо-анатомических позиций приемы ранней селективной реиннервации мышц тенара при высоких проксимальных травмах и обширных дефектах срединного нерва.
Материал и методы. На 37 верхних конечностях трупов исследованы особенности строения и топографии мышечных ветвей периферических нервов. В эксперименте на 15 верхних конечностях выполнено моделирование этапов реконструктивных вмешательств с соединением нервов по типу «конец в бок».
Результаты. Индивидуальные различия в строении периферических нервов в основном заключаются в неодинаковом количестве и размерах пучков, а также выраженности внутриствольных межпучковых связей и зависят от формы сегментов конечностей. Локтевой и срединный нервы, составляющие потенциальную пару нервов «донор-реципиент», на относительно узких и длинных конечностях располагаются достоверно ближе друг к другу, по сравнению с широкими и короткими конечностями. На анатомическом материале разработаны и апробированы оперативные доступ и прием для создания оптимальных технических условий выполнения ранней селективной реиннервации мышц возвышения I пальца при высоких проксимальных травмах и обширных дефектах срединного нерва. Суть предлагаемого оперативного вмешательства заключается в мобилизации возвратной двигательной ветви срединного нерва и соединении ее по типу «конец в бок» с глубокой ветвью локтевого нерва.
Заключение. Выполнение внутриствольных микрохирургических вмешательств на нервах с формированием межпучковых периневральных анастомозов по типу «конец в бок» позволяет создать морфологические условия для регенерации нервных волокон из состава глубокой ветви локтевого нерва в направлении тканей таргетных зон возвратной двигательной ветви срединного нерва. Характерные для относительно узких и длинных конечностей более протяженные ветви нервов с малым количеством межпучковых связей способствуют созданию условий для менее травматичной мобилизации и транспозиции двигательных ветвей с целью селективной реиннервации тканей швом периферических нервов «конец в бок».

Ключевые слова: периферический нерв, травма нерва, шов нерва «конец в бок», двигательная иннервация, мышцы тенара, оппозиция I пальца
с. 179-185 оригинального издания
Список литературы
  1. Konofaos P, Bassilios Habre S, Wallace RD. End-to-Side Nerve Repair: Current Concepts and Future Perspectives. Ann Plast Surg. 2018 Dec;81(6):736-40. doi: 10.1097/SAP.0000000000001663
  2. Tuffaha SH, Meaike JD, Moran SL. Direct muscle neurotization with long acellular nerve allograft: A case report. Microsurgery. 2020 Feb;40(2):258-60. doi: 10.1002/micr.30498
  3. Бацаленко НП, Решетов ИВ, Харькова НВ. Прямая невротизация мышцы: механизм, способы стимуляции аксонального роста. Методы оценки результатов. Голова и Шея=Head and Neck. Russian Journal. 2017;(4):53-56. https://headneckfdr.ru/files/HM2017004.pdf
  4. Журавлев СА, Голубев ИО. Варианты невротизаций при повреждениях плечевого сплетения и нервов верхней конечности. Вестник Травматологии и Ортопедии им НН Приорова. 2015;22(4):77-82. doi: 10.17816/vto201522477-82
  5. Millesi H, Schmidhammer R. Nerve fiber transfer by end-to-side coaptation. Hand Clin. 2008 Nov;24(4):461-83, vii. doi: 10.1016/j.hcl.2008.04.007
  6. Beris A, Gkiatas I, Gelalis I, Papadopoulos D, Kostas-Agnantis I. Current concepts in peripheral nerve surgery. Eur J Orthop Surg Traumatol. 2019 Feb;29(2):263-269. doi: 10.1007/s00590-018-2344-2
  7. Geuna S, Papalia I, Ronchi G, d'Alcontres FS, Natsis K, Papadopulos NA, Colonna MR. The reasons for end-to-side coaptation: how does lateral axon sprouting work? Neural Regen Res. 2017 Apr;12(4):529-33. doi: 10.4103/1673-5374.205081
  8. Paiva GR, Viterbo F, Deffune E, Custódio MAD. Stem cells in end-to-side neurorrhaphy. Experimental study in rats. Acta Cir Bras. 2021 Jan 20;35(12):e351207. doi: 10.1590/ACB351207. eCollection 2021.
  9. Ништ АЮ, Фомин НФ, Имельбаев АИ, Микулич АА. Восстановление двигательной иннервации соединением периферических нервов по типу «конец-в-бок»: экспериментальное моделирование и клинико-инструментальный контроль реиннервации. Вестн Эксперим и Клин Хирургии. 2020;13(1):24-33. doi: 10.18499/2070-478X-2020-13-1-24-33
  10. Ozcelik IB, Yildiran G, Mersa B, Sutcu M, Celik ZE, Ozalp T. A novel nerve transfer: The first palmar interosseous motor branch of the ulnar nerve to the recurrent motor branch of the median nerve. Injury. 2020 Dec;51 Suppl 4:S81-S83. doi: 10.1016/j.injury.2020.02.119
  11. Aman M, Böcker A, Kneser U, Harhaus L. Selective nerve transfers for thenar branch reconstruction. Oper Orthop Traumatol. 2021 Oct;33(5):384-91. doi: 10.1007/s00064-020-00689-1 [Article in German]
Адрес для корреспонденции:
194044, Российская Федерация,
г. Санкт-Петербург, ул. Академика Лебедева,
д. 6, Военно-медицинская академия имени
С.М. Кирова МО РФ,
кафедра оперативной хирургии
(с топографической анатомией),
тел.: +7 905 260-49-44,
e-mail: nachmed82@mail.ru,
Ништ Алексей Юрьевич
Cведения об авторах:
Ништ Алексей Юрьевич, к.м.н., доцент, докторант кафедры оперативной хирургии (с топографической анатомией), Военно-медицинская академия имени С.М. Кирова МО РФ, г. Санкт-Петербург, Российская Федерация.
https://orcid.org/0000-0002-6696-1897
Фомин Николай Федорович, д.м.н., профессор, заведующий кафедрой оперативной хирургии (с топографической анатомией), Военно-медицинская академия имени С.М. Кирова МО РФ, г. Санкт-Петербург, Российская Федерация.
https://orcid.org/0000-0003-3961-1987
DOI: https://dx.doi.org/10.18484/2305-0047.2022.2.186   |  

А.А. ЛЫЗИКОВ, М.Л. КАПЛАH, Д.А. ЗИHОВКИH, В.Е. ТИХМАHОВИЧ, Ю.К. КУЛИКОВИЧ

ВЛИЯHИЕ КОHСЕРВИРУЮЩИХ РАСТВОРОВ HА МОРФОЛОГИЧЕСКИЕ СВОЙСТВА ПОДКОЖHОЙ ВЕHЫ ЧЕЛОВЕКА

Гомельский государственный медицинский университет, г. Гомель,
Республика Беларусь

Цель. Проанализировать и оценить влияние растворов для хранения и сроков на морфологические характеристики большой подкожной вены человека.
Материал и методы. Для изучения влияния варикозной трансформации образцы были подразделены на 2 группы: группа 1 – 120 участков варикозных вен, группа 2 – 82 вены без варикозной трансформации.
В зависимости от раствора хранения вены первой группы были подразделены на 2 подгруппы: 40 вен хранились в физиологическом растворе с добавлением папаверина и гепарина (подгруппа 1), и 80 вен хранились в кардиоплегическом растворе (подгруппа 2). Хранение кондуитов осуществлялось в холодильной установке при температуре +4°С. В сроки от 1 дня и до 1 месяца проводились гистологические и морфологические исследования полученных образцов.
Результаты. Использование холодного кардиоплегического раствора позволяет достигать полной децеллюляризации подкожной вены в сроки от одних суток до одной недели, при этом декомпозиция и гомогенизация стенки кондуита наблюдаются в сроки от двух до трёх недель в случае неизмененных кондуитов и в сроки от трёх недель для вен с варикозной деформацией. Коллагеновый каркас сохраняется до трёх недель наблюдений, что коррелирует с сохранением прочностных характеристик венозных кондуитов. Потеря коллагеновых волокон от первоначального их количества в сроки до 3 недель для варикозных вен составляла 8,6%, для вен без варикозной трансформации – 13,5%.
Заключение. Использование данного метода хранения венозных кондуитов позволяет достигать адекватного уровня децеллюляризации сосудов уже на первые сутки хранения, что способствует уменьшению вероятности последующего отторжения кондуита и аллосенсибилизации реципиента, а сохранение коллагенового каркаса в сроки до трех недель позволяет использовать данные кондуиты в тканевой инженерии сосудов и для реконструктивных операций на сосудистом русле.

Ключевые слова: гипотермическое хранение, растворы для хранения, длительное хранение аллотрансплантантов вен, морфология подкожной вены человека, децелл
с. 186-197 оригинального издания
Список литературы
  1. Albers M, Battistella VM, Romiti M, Rodrigues AA, Pereira CA. Meta-analysis of polytetrafluoroethylene bypass grafts to infrapopliteal arteries. J Vasc Surg. 2003 Jun;37(6):1263-69. doi: 10.1016/s0741-5214(02)75332-9
  2. Batt M, Feugier P, Camou F, Coffy A, Senneville E, Caillon J, Calvet B, Chidiac C, Laurent F, Revest M, Daures JP; Research Group for Vascular Graft Infection. A meta-analysis of outcomes after in situ reconstructions for aortic graft infection. Angiology. 2018 May;69(5):370-79. doi: 10.1177/0003319717710114
  3. Deutsch M, Meinhart J, Scheme J, Hubbell J, Zilla PP. Endothelial cell seeding: revisiting the issues. J Vasc Surg. 2000;31(6):1265-68.
  4. L’Heureux N, Paquet S, Labbé R, Germain L, Auger FA. A completely biological tissue-engineered human blood vessel. FASEB J. 1998 Jan;12(1):47-56. doi: 10.1096/fasebj.12.1.47
  5. Kouzi-Koliakos K, Kanellaki-Kyparissi M, Marinov G, Knyazhev V, Tsalie E, Batzios C, Kovachev D. Prebypass histological and ultrastructural evaluation of the long saphenous vein as a predictor of early graft failure. Cardiovasc Pathol. 2006 Nov-Dec;15(6):336-46. doi: 10.1016/j.carpath.2006.07.005
  6. Buckley CJ, Abernathy S, Lee SD, Arko FR, Patterson DE, Manning LG. Suggested treatment protocol for improving patency of femoral-infrapopliteal cryopreserved saphenous vein allografts. J Vasc Surg. 2000 Oct;32(4):731-38. doi: 10.1067/mva.2000.110049
  7. Touma J, Cochennec F, Parisot J, Fialaire Legendre A, Becquemin JP, Desgranges P. In situ reconstruction in native and prosthetic aortic infections using cryopreserved arterial allografts. Eur J Vasc Endovasc Surg. 2014 Sep;48(3):292-99. doi: 10.1016/j.ejvs.2014.04.023
  8. Garot M, Delannoy PY, Meybeck A, Sarraz-Bournet B, d’Elia P, d’Escrivan T, Devos P, Leroy O. Intra-abdominal aortic graft infection: prognostic factors associated with in-hospital mortality. BMC Infect Dis. 2014 Apr 22;14:215. doi: 10.1186/1471-2334-14-215
  9. Bisdas T, Wilhelmi M, Haverich A, Teebken OE. Cryopreserved arterial homografts vs silver-coated Dacron grafts for abdominal aortic infections with intraoperative evidence of microorganisms. J Vasc Surg. 2011 May;53(5):1274-81.e4. doi: 10.1016/j.jvs.2010.11.052
  10. Brockbank KG, Donovan TJ, Ruby ST, Carpenter JF, Hagen PO, Woodley MA. Functional analysis of cryopreserved veins. Preliminary report. J Vasc Surg. 1990 Jan;11(1):94-100; discussion 100-2. doi: 10.1016/0741-5214(90)90333-6
  11. Elmore JR, Gloviczki P, Brockbank KG, Miller VM. Cryopreservation affects endothelial and smooth muscle function of canine autogenous saphenous vein grafts. J Vasc Surg. 1991 May;13(5):584-92. doi: 10.1067/mva.1991.27527
  12. Faggioli GL, Gargiulo M, Giardino R, Pasquinelli G, Preda P, Fini M, Corbascio M, Stella A, D’Addato M, Ricotta JJ. Long-term cryopreservation of autologous veins in rabbits. Cardiovasc Surg. 1994 Apr;2(2):259-65. doi: 10.1177/096721099400200224
  13. Bambang LS, Mazzucotelli JP, Moczar M, Beaujean F, Loisance D. Effects of cryopreservation on the proliferation and anticoagulant activity of human saphenous vein endothelial cells. J Thorac Cardiovas Surg. 1995 Oct 1;110(4):998-1004. doi: 10.1016/S0022-5223(05)80167-9
  14. Carpenter JP, Tomaszewski JE. Immunosuppression for human saphenous vein allograft bypass surgery: a prospective randomized trial. J Vasc Surg. 1997 Jul;26(1):32-42. doi: 10.1016/s0741-5214(97)70144-7
  15. Ochsner JL, Lawson JD, Eskind SJ, Mills NL, DeCamp PT. Homologous veins as an arterial substitute: long-term results. J Vasc Surg. 1984 Mar;1(2):306-13. doi: 10.1067/mva.1984.avs0010306
  16. Posner MP, Makhoul RG, Altman M, Kimball P, Cohen N, Sobel M, Dattilo J, Lee HM. Early results of infrageniculate arterial reconstruction using cryopreserved homograft saphenous conduit (CADVEIN) and combination low-dose systemic immunosuppression. J Am Coll Surg. 1996 Sep;183(3):208-16.
  17. Har-Shai Y, Sela E, Rubinstien I, Lindenbaum ES, Mitz V, Hirshowitz B. Computerized morphometric quantitation of elastin and collagen in SMAS and facial skin and the possible role of fat cells in SMAS viscoelastic properties. Plast Reconstr Surg. 1998 Dec;102(7):2466-70. doi: 10.1097/00006534-199812000-00033
  18. Hoch J, Jarrell BE, Schneider T, Williams SK. Endothelial cell interactions with native surfaces. Ann Vasc Surg. 1989 Apr;3(2):153-59. doi: 10.1016/S0890-5096(06)62009-8
Адрес для корреспонденции:
246046, Республика Беларусь,
г. Гомель, ул. Медицинская, д. 4,
Гомельский государственный
медицинский университет,
кафедра хирургических болезней № 1,
тел.: +375 232 49-19-54,
e-mail: surgery_1@gsmu.by,
Тихманович Виктор Евгеньевич
Cведения об авторах:
Лызиков Алексей Анатольевич, д.м.н., профессор, заведующий кафедрой хирургических болезней № 1 с курсом сердечно-сосудистой хирургии, Гомельский государственный медицинский университет, г. Гомель, Республика Беларусь.
https://orcid.org/0000-0003-0639-121X
Каплан Марк Львович, к.м.н., доцент, доцент кафедры хирургических болезней № 1 с курсом сердечно-сосудистой хирургии, Гомельский государственный медицинский университет, г. Гомель, Республика Беларусь.
https://orcid.org/0000-0001-7782-3281
Зиновкин Дмитрий Александрович, ассистент кафедры патологической анатомии, Гомельский государственный медицинский университет, г. Гомель, Республика Беларусь.
https://orcid.org/0000-0002-3808-8832
Тихманович Виктор Евгеньевич, ассистент кафедры хирургических болезней № 1 с курсом сердечно-сосудистой хирургии, Гомельский государственный медицинский университет, г. Гомель, Республика Беларусь.
https://orcid.org/0000-0002-3486-9113
Куликович Юлия Константиновна, асссистент кафедры хирургических болезней № 1 с курсом сердечно-сосудистой хирургии, Гомельский государственный медицинский университет, г. Гомель, Республика Беларусь.
https://orcid.org/0000-0002-1317-4662

ОБЗОРЫ

DOI: https://dx.doi.org/10.18484/2305-0047.2022.2.198   |  

П.С. РЕМОВ

АКТУАЛЬHЫЕ ВОПРОСЫ ХИРУРГИЧЕСКОГО ЛЕЧЕHИЯ ПОЯСHИЧHЫХ ДОРСОПАТИЙ

Республиканский научно-практический центр травматологии и ортопедии, г. Минск,
Республика Беларусь

В ходе проведенного анализа современной литературы, посвященной хирургическому лечению поясничных дорсопатий, был выявлен ряд спорных вопросов. Результаты исследований, содержащих данные по сравнению эффективности декомпрессионных и декомпрессионно-стабилизирующих вмешательств, по многим аспектам являются противоречивыми. При использовании различных методик в ряде случаев специалистам не удается добиться благоприятного результата в отдаленном периоде. Важнейшим вопросом, затронутым в обзоре, является обоснование стабилизации позвоночника. Проведен детальный разбор факторов, которые необходимо учитывать при определении необходимости заднего спондилодеза и фиксации. Несмотря на высокий уровень развития виртуальных технологий, на сегодняшний день нет абсолютного метода диагностики нестабильности позвоночно-двигательного сегмента. К неоднозначным маркерам поясничной нестабильности относят параметры межпозвонковых дисков, связочного аппарата, дугоотростчатых суставов и вентральных остеофитов. Функциональная спондилография остается основной методикой (диагностическая эффективность составляет 63,3%) выявления гипермобильности позвоночника на поясничном уровне, но, в силу своих недостатков, требует сопоставления с данными нейровизуализации и клиническими параметрами. Определение показаний к использованию спондилодеза при дегенеративно-дистрофических заболеваниях позвоночника на поясничном уровне требует комплексного подхода и учета патогенетических, рентгенологических и общесоматических факторов.

Ключевые слова: дегенеративный стеноз, задний спондилодез, нестабильность позвоночника, функциональная рентгенография, трансляция, ангуляция
с. 198-206 оригинального издания
Список литературы
  1. Pao JL, Lin SM, Chen WC, Chang CH. Unilateral biportal endoscopic decompression for degenerative lumbar canal stenosis. J Spine Surg. 2020 Jun;6(2):438-46. doi: 10.21037/jss.2020.03.08
  2. Sharif S, Shaikh Y, Bajamal AH, Costa F, Zileli M. Fusion Surgery for Lumbar Spinal Stenosis: WFNS Spine Committee Recommendations. World Neurosurg X. 2020 Mar 18;7:100077. doi: 10.1016/j.wnsx.2020.100077. eCollection 2020 Jul.
  3. Dijkerman ML, Overdevest GM, Moojen WA, Vleggeert-Lankamp CLA. Decompression with or without concomitant fusion in lumbar stenosis due to degenerative spondylolisthesis: a systematic review. Eur Spine J. 2018 Jul;27(7):1629-43. doi: 10.1007/s00586-017-5436-5
  4. Хоминец ВВ, Надулич КА, Нагорный ЕБ, Кудяшев АЛ, Теремшонок АВ. Особенности хирургической тактики при лечении больных с поясничным дегенеративным спондилолистезом. Гений Ортопедии. 2018;24(2):221-28. doi: 10.18019/1028-4427-2018-24-2-221-228
  5. Detwiler PW, Marciano FF, Porter RW, Sonntag VK. Lumbar stenosis: indications for fusion with and without instrumentation. Neurosurg Focus. 1997 Aug 15;3(2):e4; discussion 1 p following e4. doi: 10.3171/foc.1997.3.2.7
  6. Iii WS, Orías AAE, Shifflett GD, Lee JYB, Siemionow K, Gandhi S, Fogg L, Samartzis D, Inoue N, An HS. Image-Based Markers Predict Dynamic Instability in Lumbar Degenerative Spondylolisthesis. Neurospine. 2020 Mar;17(1):221-27. doi: 10.14245/ns.1938440.220
  7. Reid PC, Morr S, Kaiser MG. State of the union: a review of lumbar fusion indications and techniques for degenerative spine disease. J Neurosurg Spine. 2019 Jul 1;31(1):1-14. doi: 10.3171/2019.4.SPINE18915
  8. Cole AA. Fusion for lumbar spinal stenosis? BMJ [Electronic resource]. 2016 [cited 2021 Янв 17];353. Available from: https://www.bmj.com/content/353/bmj.i3145
  9. Resnick DK, Watters WC 3rd, Mummaneni PV, Dailey AT, Choudhri TF, Eck JC, Sharan A, Groff MW, Wang JC, Ghogawala Z, Dhall SS, Kaiser MG. Guideline update for the performance of fusion procedures for degenerative disease of the lumbar spine. Part 10: lumbar fusion for stenosis without spondylolisthesis. J Neurosurg Spine. 2014 Jul;21(1):62-66. doi: 10.3171/2014.4.SPINE14275
  10. Гуща АО, Колесов СВ, Полторако ЕН, Колбовский ДА, Казьмин АИ. Хирургическое лечение многоуровневого стеноза позвоночного канала в поясничном отделе позвоночника с применением динамической стабилизации в рамках мультицентрового исследования. Вестн Травматологии и Ортопедии им НН Приорова. 2017;24(4):11-17. doi: 10.17816/vto201724411-17
  11. Гринь АА, Никитин АС, Каландари АА, Асратян СА, Юндин СВ, Юсупов С-ЭР. Ригидная транспедикулярная фиксация в лечении пациентов с дегенеративным поясничным стенозом. Вопр Нейрохирургии им НН Бурденко. 2020;84(5):41-49. doi: 10.17116/neiro20208405141
  12. Daniels CJ, Wakefield PJ, Bub GA, Toombs JD. A Narrative Review of lumbar fusion surgery with relevance to chiropractic practice. J Chiropr Med. 2016 Dec;15(4):259-71. doi: 10.1016/j.jcm.2016.08.007
  13. Ochia RS, Inoue N, Renner SM, Lorenz EP, Lim TH, Andersson GB, An HS. Three-dimensional in vivo measurement of lumbar spine segmental motion. Spine (Phila Pa 1976). 2006 Aug 15;31(18):2073-78. doi: 10.1097/01.brs.0000231435.55842.9e
  14. Zhang Y, Lu D, Ji W, He F, Chen AC, Yang H, Zhu X. Which is the most effective treatment for lumbar spinal stenosis: Decompression, fusion, or interspinous process device? A Bayesian network meta-analysis. J Orthop Translat. 2020 Sep 26;26:45-53. doi: 10.1016/j.jot.2020.07.003. eCollection 2021 Jan.
  15. Бывальцев ВА, Оконешникова АК, Калинин АА, Рабинович СС. Взаимосвязь тропизма и ангуляции дугоотростчатых суставов и результатов стабилизирующих операций при дегенеративных заболеваниях поясничного отдела позвоночника. Хирургия Позвоночника. 2018;15(4):70-179. doi: 10.14531/ss2018.4.70-79
  16. Burgstaller JM, Porchet F, Steurer J, Wertli MM. Arguments for the choice of surgical treatments in patients with lumbar spinal stenosis – a systematic appraisal of randomized controlled trials. BMC Musculoskelet Disord. 2015 Apr 22;16:96. doi: 10.1186/s12891-015-0548-8
  17. Pearson AM. Fusion in degenerative spondylolisthesis: how to reconcile conflicting evidence. J Spine Surg. 2016 Jun;2(2):143-45. doi: 10.21037/jss.2016.06.02
  18. Dick W. The «fixateur interne» as a versalite impant for spine surgery. Spine (Phila Pa). 1987 Nov; 12(9): 882-900. doi: 10.1097/00007632-198711000-00009
  19. Omidi-Kashani F, Hasankhani EG, Ashjazadeh A. Lumbar spinal stenosis: who should be fused? An updated review. Asian Spine J. 2014 Aug;8(4):521-30. doi: 10.4184/asj.2014.8.4.521
  20. Бывальцев ВА, Калинин АА, Белых ЕГ, Сороковиков ВА, Шепелев ВВ. Оптимизация результатов лечения пациентов с сегментарной нестабильностью поясничного отдела позвоночника при использовании малоинвазивной методики спондилодеза. Вопросы Нейрохирургии. 2015;(3):45-54. doi: 10.17116/neiro201579345-54
  21. Rathod AK, Dhake RP. Radiographic Incidence of Lumbar Spinal Instability in Patients with Non-spondylolisthetic Low Backache. Cureus. 2018 Apr 4;10(4):e2420. doi: 10.7759/cureus.2420
  22. Thomas K, Faris P, McIntosh G, Manners S, Abraham E, Bailey CS, Paquet J, Cadotte D, Jacobs WB, Rampersaud YR, Manson NA, Hall H, Fisher CG. Decompression alone vs. decompression plus fusion for claudication secondary to lumbar spinal stenosis. Spine J. 2019 Oct;19(10):1633-39. doi: 10.1016/j.spinee.2019.06.003
  23. Sun W, Xue C, Tang XY, Feng H, Yuan F, Guo KJ, Zhao J. Selective versus multi-segmental decompression and fusion for multi-segment lumbar spinal stenosis with single-segment degenerative spondylolisthesis. J Orthop Surg Res. 2019 Feb 12;14(1):46. doi: 10.1186/s13018-019-1092-2
  24. Ghogawala Z, Dziura J, Butler WE, Dai F, Terrin N, Magge SN, Coumans JV, Harrington JF, Amin-Hanjani S, Schwartz JS, Sonntag VK, Barker FG 2nd, Benzel EC. Laminectomy plus fusion versus laminectomy alone for lumbar spondylolisthesis. N Engl J Med. 2016;374(15):1424-34. doi: 10.1056/NEJMoa1508788
  25. Satoh I, Yonenobu K, Hosono N, Ohwada T, Fuji T, Yoshikawa H. Indication of posterior lumbar interbody fusion for lumbar disc herniation. J Spinal Disord Tech. 2006 Apr;19(2):104-8. doi: 10.1097/01.bsd.0000180991.98751.95
  26. Гадоев КК, Хужаназаров ИЭ, Алимов ИР, Косимов АА, Алиходжаева ГА. Дифференцированный подход к диагностике и выбору хирургической тактики лечения больных дегенеративным спондилолистезом поясничного отдела позвоночника. Журн Теорет и Клин Медицины. 2020;(1):70-74. http://repository.tma.uz/xmlui/handle/1/693
  27. Spina N, Schoutens C, Martin BI, Brodke DS, Lawrence B, Spiker WR. Defining Instability in Degenerative Spondylolisthesis: Surgeon Views. Clin Spine Surg. 2019 Dec;32(10):E434-E439. doi: 10.1097/BSD.0000000000000874
  28. Kersten RFMR, van Gaalen SM, Willems PC, Arts MP, Peul WC, Öner FC. Lumbar spinal fusion: indications, surgical techniques and post-operative management. A survey among spine surgeons in the Netherlands. MOJ Orthop Rheumatol. 2016;4(5):00155. doi: 10.15406/mojor.2016.04.00155
  29. Yavin D, Casha S, Wiebe S, Feasby TE, Clark C, Isaacs A, Holroyd-Leduc J, Hurlbert RJ, Quan H, Nataraj A, Sutherland GR, Jette N. Lumbar Fusion for Degenerative Disease: A Systematic Review and Meta-Analysis. Neurosurgery. 2017 May 1;80(5):701-15. doi: 10.1093/neuros/nyw162
  30. Yavin D, Casha S, Wiebe S, Feasby TE, Clark C, Isaacs A, Holroyd-Leduc J, Hurlbert RJ, Quan H, Nataraj A, Sutherland GR, Jette N. lumbar fusion for degenerative disease: a systematic review and meta-analysis. Neurosurgery. 2017 May 1;80(5):701-15. doi: 10.1093/neuros/nyw162
  31. Lee MJ, Hacquebord J, Varshney A, Cizik AM, Bransford RJ, Bellabarba C, Konodi MA, Chapman J. Risk factors for medical complication after lumbar spine surgery: a multivariate analysis of 767 patients. Spine (Phila Pa 1976). 2011 Oct 1;36(21):1801-6. doi: 10.1097/brs.0b013e318219d28d
  32. Крутько АВ, Байков ЕС, Коновалов НА, Назаренко АГ. Сегментарная нестабильность позвоночника: нерешенные вопросы. Хирургия Позвоночника. 2017;14(3):74-83. doi: 10.14531/ss2017.3.74-83
  33. Dunn RN. Lumbar fusion – indications and surgical options. SA Orthopaedic Journal [Electronic resource]. 2008 [cited 2021 Jan 22];7(2):8-12. Available from: http://www.scielo.org.za/pdf/saoj/v7n2/03.pdf
  34. Мураби З, Пташников ДА, Масевнин СВ, Михайлов ДА, Заборовский ИВ, Волков ИВ, Ян Л. Сегментарная нестабильность поясничного отдела позвоночника. Обзор зарубежной литературы. Вестн Северо-Запад Гос Мед Ун-та им ИИ Мечникова. 2017;9(4):59-65. doi: 10.17816/mechnikov20179459-65
  35. Фраерман АП, Яриков АВ, Котельников АО, Смирнов ИИ, Леонов ВА, Хомченков МВ, Перльмуттер ОА, Соснин АГ. Сегментарная нестабильность в поясничном отделе позвоночника при дегенеративно-дистрофических заболеваниях. Наука и Инновации в Медицине. 2020;5(3):164-69. doi: 10.35693/2500-1388-2020-5-3-164-169
  36. Leone A, Cassar-Pullicino VN, Guglielmi G, Bonomo L. Degenerative lumbar intervertebral instability: what is it and how does imaging contribute? Skeletal Radiol. 2009 Jun;38(6):529-33. doi: 10.1007/s00256-009-0646-5
  37. Терновой СК, Серова НС, Абрамов АС, Мискарян ТИ. Значение функциональной мультиспиральной компьютерной томографии в диагностике нестабильности позвоночно-двигательных сегментов шейного отдела позвоночника. Вестн Рентгенологии и Радиологии. 2020;101(5):296-303. doi: 10.20862/0042-4676-2020-101-5-296-303
  38. Gopinath P. Lumbar segmental instability: Points to ponder. J Orthop. 2015 Oct 8;12(4):165-67. doi: 10.1016/j.jor.2015.09.005. eCollection 2015 Dec.
  39. Cho IY, Park SY, Park JH, Suh SW, Lee SH. MRI findings of lumbar spine instability in degenerative spondylolisthesis. J Orthop Surg (Hong Kong). 2017 May-Aug;25(2):2309499017718907. doi: 10.1177/2309499017718907
  40. Поздеева НА, Сороковиков ВА, Немаров АА. Диагностика нестабильности позвоночно-двигательного сегмента при остеохондрозе поясничного отдела позвоночника. Бюл ВСНЦ СО РАМН (Иркутск). 2007;(1):36-39. https://cyberleninka.ru/article/n/diagnostika-nestabilnosti-pozvonochno-dvigatelnogo-segmenta-pri-osteohondroze-poyasnichnogo-otdela-pozvonochnika
  41. Donnarumma P, Tarantino R, Nigro L, Rullo M, Messina D, Diacinti D, Delfini R. Decompression versus decompression and fusion for degenerative lumbar stenosis: analysis of the factors influencing the outcome of back pain and disability. J Spine Surg. 2016 Mar; 2(1):52-58. doi: 10.21037/jss.2016.03.07
Адрес для корреспонденции:
220024, Республика Беларусь,
г. Минск, ул. Лейтенанта Кижеватова, д. 60, к. 4.
Республиканский научно-практический
центр травматологии и ортопедии,
лаборатория травматических повреждений позвоночника и спинного мозга,
тел. моб.: +375 29 334-31-22,
e-mail: neuro_ugokb2013@mail.ru,
Ремов Павел Сергеевич
Cведения об авторах:
Ремов Павел Сергеевич, младший научный сотрудник лаборатории травматических повреждений позвоночника и спинного мозга, Республиканский научно-практический центр травматологии и ортопедии, г. Минск, Республика Беларусь.
https://orcid.org/0000-0003-2194-5233
DOI: https://dx.doi.org/10.18484/2305-0047.2022.2.207   |  

П.В. РОГОЖКИH 1, 2, Е.А. БОРОДУЛИHА 1, В.В. ПИСКУH 1, Е.П. ЕРЕМЕHКО 1

ХИРУРГИЧЕСКОЕ ЛЕЧЕHИЕ ТУБЕРКУЛЕЗА У ВИЧ-ИHФИЦИРОВАHHЫХ ПАЦИЕHТОВ

Самарский государственный медицинский университет МЗ РФ 1,
Самарский областной клинический противотуберкулезный диспансер 2, г. Самара,
Российская Федерация

Вероятность заболевания туберкулезом у ВИЧ-позитивных лиц в 100 раз выше, чем у ВИЧ-отрицательных. Рост коморбидного заболевания туберкулез/ВИЧ (ТБ/ВИЧ) сопровождается высокой летальностью, заболеванию подвержены преимущественно лица молодого и трудоспособного возраста. В последние годы пациентам с сочетанием ВИЧ-инфекции и туберкулеза стали широко выполняться хирургические вмешательства – радикальные резекции легких, и большинство авторов указывает на высокую эффективность данных операций. Выполнен анализ публикаций за 2014-2020 годы, посвященных хирургическому лечению туберкулеза легких у ВИЧ-инфицированных пациентов. Можно выделить следующие особенности хирургического лечения пациентов данной группы: требуется проведение полного курса противотуберкулезной химиотерапии в предоперационном периоде и возобновление интенсивной фазы химиотерапии в послеоперационном периоде; необходимо проведение антиретровирусной терапии (АРТ); при выраженной иммуносупрессии и снижении количества CD4+-лимфоцитов менее 200 кл/мкл следует осторожно подходить к определению показаний к плановой операции; широко используются операции с использованием торакоскопической техники, и данные операции показали свою высокую эффективность. За последние 7 лет в литературе недостаточно исследований, описывающих отдаленные результаты хирургического лечения туберкулеза легких у ВИЧ-инфицированных пациентов. Основная причина этого – потеря наблюдения за пациентами после завершения лечения туберкулеза. Поиск путей для улучшения техники операции, для снижения вероятности послеоперационных осложнений, для улучшения тактики послеоперационного ведения является актуальным и перспективным.

Ключевые слова: туберкулез, ВИЧ-инфекция, хирургическое лечение, CD4+-лимфоциты, послеоперационный период, видеоторакоскопия
с. 207-213 оригинального издания
Список литературы
  1. Васильева ИА, Белиловский ЕМ, Борисов СЕ, Стерликов СА, Синицын МВ. Туберкулёз, сочетанный с ВИЧ-инфекцией, в странах мира и в Российской Федерации. Туберкулез и Болезни Легких. 2017;95(9):8-18. doi: 10.21292/2075-1230-2017-95-9-8-18
  2. Нечаева ОБ. Эпидемическая ситуация по туберкулезу среди лиц с ВИЧ-инфекцией в Российской Федерации. Туберкулез и Болезни Легких. 2017;95(3):13-19. doi: 10.21292/2075-1230-2017-95-3-13-19
  3. Santoso P, Soeroto AY, Juniati R, Hartantri Y, Wisaksana R, Alisjabana B, Nataprawira HM, Parwati I. Improving Diagnostic of Pulmonary Tuberculosis in HIV Patients by Bronchoscopy: A Cross Sectional Study. Acta Med Indones. 2017 Oct;49(4):330-35. http://www.actamedindones.org/index.php/ijim/article/view/595/pdf
  4. Бородулина ЕА, Маткина ТН, Вдоушкина ЕС. Причины смерти больных ВИЧ-инфекцией и туберкулезом. Туберкулез и Болезни Легких. 2015;(5):44-45. https://www.tibl-journal.com/jour/article/view/383
  5. Пузырева ЛВ, Мордык АВ, Руденко СА, Антропова ВВ, Жигалова ЛА, Пугачев АН, Николаева ИИ, Шестак ЕМ. Анализ летальных исходов пациентов противотуберкулезного диспансера с выделением случаев сочетания «ВИЧ–туберкулез». Мед Вестн Север Кавказа. 2017;12(2):169-72. doi: 10.14300/mnnc.2017.12047
  6. Цыбикова ЭБ, Пунга ВВ, Русакова ЛИ. Туберкулез, сочетанный с ВИЧ-инфекцией, в России: статистика и взаимосвязи. Туберкулёз и Болезни Лёгких. 2018;96(12):9-17. doi: 10.21292/2075-1230-2018-96-12-9-17
  7. Кранц ИМ. Хирургическое лечение туберкулеза легких. Главврач. 2018;(11):72-81. https://panor.ru/articles/khirurgicheskoe-lechenie-tuberkuleza-legkikh/17328.html
  8. Яблонский ПК, ред. Применение хирургических методов в лечении туберкулеза легких. Торакальная хирургия: национальные клинические рекомендации. Москва, РФ: ГЭОТАР-Медиа; 2014. 160 с. https://www.rosmedlib.ru/book/ISBN9785970432129.html
  9. Елькина ИА, Пьянзова ТВ. Эффективность лечения больных впервые выявленным туберкулезом в зависимости от ВИЧ-статуса. Туберкулез и Болезни Легких. 2018;96(5):52-53. doi: 10.21292/2075-1230-2018-96-5-52-53
  10. Маньшина АВ, Тоскин И, Хальфин РА, Мадьянова ВВ, Гетахун Х, Блондил К. Эпидемиология туберкулеза, сочетанного с ВИЧ-инфекцией, в странах Восточной Европы и в Российской Федерации в 2004–2014 гг. (обзор литературы). Профилакт Медицина. 2017;20(1):50-56. doi: 10.17116/profmed201720150-56
  11. Синицын МВ, Белиловский ЕМ, Борисов СЕ, Рыбалка ЛН, Данилова ИД, Котова ЕА. Сравнительная оценка эффективности лечения больных туберкулезом в зависимости от наличия ВИЧ-инфекции. Туберкулез и Социально Значимые Заболевания. 2016;(5):18-25. https://elibrary.ru/download/elibrary_42686666_61753518.pdf
  12. Алказ ДВ, Басек ТС, Пашина ЮИ, Джамшедов ДШ, Пантелеев АМ, Елькин АВ. Частота и характер осложнений после резекций легких по поводу туберкулеза у ВИЧ-инфицированных пациентов. Вестн Хирургии им ИИ Грекова. 2018;177(5):74-79. doi: 10.24884/0042-4625-2018-177-5-74-79
  13. Синицын МВ, Вирский НЮ, Титюхина МВ, Барский БГ, Абу Аркуб ТИ, Калинина МВ. Хирургическое лечение туберкулеза у больных ВИЧ-инфекцией. Туберкулёз и Болезни Лёгких. 2018;96(7):18-24. doi: 10.21292/2075-1230-2018-96-7-18-24
  14. Асеев АВ, Миляев АА. Ретростернальная лимфотропная химиотерапия у больных туберкулезом/ВИЧ-инфекцией. Туберкулез и Болезни Легких. 2015;(7):18-19. https://www.tibl-journal.com/jour/article/view/652/653
  15. Корецкая НМ, Элярт ВФ, Яновский АВ, Наркевич АН. Хирургическое лечение туберкулеза легких у ВИЧ-позитивных больных в условиях пенитенциарной системы: особенности пред- и послеоперационного ведения. Туберкулез и Болезни Легких. 2016;94(12):53-56. doi: 10.21292/2075-1230-2016-94-12-53-56
  16. Догорова ОЕ, Винокурова МК. Эффективность лимфотропного введения противотуберкулезных препаратов в химиотерапии туберкулеза легких с множественной лекарственной устойчивостью. Туберкулез и Болезни Легких. 2015;(6):51-52. https://www.tibl-journal.com/jour/article/view/535
  17. Рейхруд МВ, Краснов ДВ, Авдиенко КА, Грищенко НГ, Скворцов ДА, Кононенко ВГ. Отдаленные результаты резекционных и коллапсохирургических вмешательств при туберкулезе легких. Туберкулёз и Болезни Лёгких. 2018;96(12):34-40. doi: 10.21292/2075-1230-2018-96-12-34-40
  18. Шаповалов АС, Полежаев АА, Белов СА. Коллапсотерапия при туберкулезе легких: возвращение к истокам. Тихоокеан Мед Журн. 2017;(1):84-87. doi: 10.17238/PmJ1609-1175.2017.1.84-87
  19. Луговкина ТК, Скорняков СН, Кильдюшева ЕИ, Егоров ЕА. Современные подходы к поиску активных препаратов, схем и режимов химиотерапии туберкулеза. Туберкулёз и Болезни Лёгких. 2020;98(6):60-69. doi: 10.21292/2075-1230-2020-98-6-60-69
  20. Deshpande D, Srivastava S, Chapagain M, Magombedze G, Martin KR, Cirrincione KN, Lee PS, Koeuth T, Dheda K, Gumbo T. Ceftazidime-avibactam has potent sterilizing activity against highly drug-resistant tuberculosis. Sci Adv. 2017 Aug 30;3(8):e1701102. doi: 10.1126/sciadv.1701102. eCollection 2017 Aug.
  21. Гиллер ДБ, Садовникова СС, Папков АВ, Гиллер ГВ, Глотов АА. Эффективность выполнения видеоассистированных анатомических резекций легких. Рос Мед-Биол Вестн им Акад ИП Павлова. 2014;22(1):126-31. doi: 10.17816/PAVLOVJ20141126-131
  22. Корпусенко ИВ. Результаты применения мини-инвазивных операций при лечении пациентов с двусторонним деструктивным туберкулезом легких. Новости Хирургии. 2015;23(4):398-403. doi: 10.18484/2305-0047.2015.4.398
  23. Порханов ВА, Данилов ВВ, Кононенко ВБ, Нарыжный НВ, Коваленко АЛ, Штрауб ВВ, Жихарев ВА. Торакоскопическая пневмонэктомия в хирургическом лечении заболеваний легких. Вестн Хирургии им ИИ Грекова. 2019;178(1):25-29. doi: 10.24884/0042-4625-2019-178-1-25-29
  24. Порханов ВА, Данилов ВВ, Поляков ИС, Кононенко ВБ, Жихарев ВА, Крыгин СА. Мини- инвазивные видеоторакоскопические и робот-ассистированные лобэктомии. Хирургия Журн им НИ Пирогова. 2019;(8):46-52. doi: 10.17116/hirurgia201908146
  25. Яблонский ПК, Кудряшов ГГ, Васильев ИВ, Аветисян АО, Ушков АД, Соколова ОП. Эффективность и безопасность робот-ассистированных торакоскопических лобэктомий при туберкулезе легких. Туберкулез и Болезни Легких. 2018;96(5):28-35. doi: 10.21292/2075-1230-2018-96-5-28-35
Адрес для корреспонденции:
443099, Российская Федерация,
г. Самара, ул. Чапаевская, 89,
Самарский государственный
медицинский университет,
кафедра фтизиатрии и пульмонологии,
тел.: +7 917 958 34 82,
e-mail: borodulinbe@yandex.ru,
Бородулина Елена Александровна
Cведения об авторах:
Рогожкин Петр Владимирович, врач-торакальный хирург, Самарский областной клинический противотуберкулезный диспансер им. Н.В. Постникова, г. Самара, Российская Федерация.
http://orcid.org/0000-0003-2734-6178.
Бородулина Елена Александровна, д.м.н., профессор, заведующая кафедрой фтизиатрии и пульмонологии, Самарский государственный медицинский университет, г. Самара, Российская Федерация.
http://orcid.org/0000-0002-3063-1538
Пискун Вячеслав Викторович, студент, Самарский государственный медицинский университет, г. Самара, Российская Федерация.
http://orcid.org/0000-0003-3246-4953
Еременко Екатерина Павловна, к.м.н., доцент кафедры фтизиатрии и пульмонологии, Самарский государственный медицинский университет, г. Самара, Российская Федерация.
https://orcid.org/0000-0001-5909-4070

СЛУЧАИ ИЗ ПРАКТИКИ

DOI: https://dx.doi.org/10.18484/2305-0047.2022.2.214   |  

А.В. ВОРОБЕЙ 1, В.Ф. ОРЕХОВ 2, Н.А. ЛАГОДИЧ 1, А.С. КАПРАH 1, Е.И. ВИЖИHИС 1

МИHИМАЛЬHО ИHВАЗИВHЫЕ МЕТОДЫ ЛЕЧЕHИЯ РУБЦОВОЙ СТРИКТУРЫ ГЕПАТИКОЕЮHОАHАСТОМОЗА

Белорусская медицинская академия последипломного образования 1,
Республиканский научно-практический центр онкологии
и медицинской радиологии им. Н.Н. Александрова 2, г. Минск,
Республика Беларусь

Стриктуры гепатикоеюноанастомозов (ГЕА) являются актуальной проблемой билиарной хирургии. Данная патология часто осложняется рецидивирующим холангитом, холангиолитиазом, печеночной недостаточностью и циррозом печени. В наблюдении представлен клинический случай мини-инвазивного лечения пациента 56 лет с рубцовой стриктурой гепатикоеюноанастомоза, рецидивирующим холангитом, холангиолитиазом. Ему была выполнена гастропанкреатодуоденальная резекция с резекцией паранефральной клетчатки и мезоколон по поводу местнораспространенного стенозирующего рака двенадцатиперстной кишки (Т4N0M0 – умеренно дифференцированная аденокарцинома со средней степенью дифференцировки). В связи с развившейся рубцовой стриктурой ГЕА была предпринята попытка антеградной двухбаллонной энтероскопии по методике «рандеву». Последняя не удалась из-за спаечного процесса вокруг петли по Ру. Выполнена чрескожная чреспеченочная холангиостомия через левую долю печени под УЗИ и рентгенконтролем, реканализация ГЕА, баллонная дилатация стриктуры ГЕА, наружно-внутреннее желчеотведение. В дальнейшем повторный сеанс дилатации стриктуры ГЕА. Позднее произведена повторная баллонная дилатация ГЕА, механическая литотрипсия, литоэкстракция. При холангиографии была выявлена ригидная стриктура ГЕА. Выполнено билиарное стентирование саморасширяющимся нитиноловым стентом «SX-Ella» диаметром 8 мм и длиной 40 мм для внутреннего желчеотведения. При контрольном осмотре через 10 месяцев жалоб не предъявлял.

Ключевые слова: гепатикоеюноанастомоз, стриктура, холангиолитиаз, холангит, чрескожно-чреспеченочные вмешательства, баллонная дилатация, корзинка Дорми
с. 214-220 оригинального издания
Список литературы
  1. Johnson SR, Koehler A, Pennington LK, Hanto DW. Long-term results of surgical repair of bile duct injuries following laparoscopic cholecystectomy. Surgery. 2000 Oct;128(4):668-77. doi: 10.1067/msy.2000.108422
  2. Moraca RJ, Lee FT, Ryan JA Jr, Traverso LW. Long-term biliary function after reconstruction of major bile duct injuries with hepaticoduodenostomy or hepaticojejunostomy. Arch Surg. 2002 Aug;137(8):889-93; discussion 893-4. doi: 10.1001/archsurg.137.8.889
  3. Warren KW, Mountain JC, Midell AI. Management of strictures of the biliary tract. Surg Clin North Am. 1971 Jun;51(3):711-31. doi: 10.1016/s0039-6109(16)39447-6
  4. Pellegrini CA, Thomas MJ, Way LW. Recurrent biliary stricture. Patterns of recurrence and outcome of surgical therapy. Am J Surg. 1984 Jan;147(1):175-80. doi: 10.1016/0002-9610(84)90054-0
  5. Burhenne HJ. Dilatation of biliary tract strictures: a new roentgenologic technique. Radiol Clin (Basel). 1975;44(3):153-59.
  6. Molnar W, Stockum AE. Transhepatic dilatation of choledochoenterostomy strictures. Radiology. 1978 Oct;129(1):59-64. doi: 10.1148/129.1.59
  7. Citron SJ, Martin LG. Benign biliary strictures: treatment with percutaneous cholangioplasty. Radiology. 1991 Feb;178(2):339-41. doi: 10.1148/radiology.178.2.1987589
  8. Takekoshi T, Takagi K. Retrograde pancreatocholan-gioscopy. Gastroenterol Endosc. 1975;17(Is 5):678-83. doi: 10.11280/gee1973b.17.678 [in Japanese]
  9. Nimura Y, Shionoya S, Hayakawa N, Kamiya J, Kondo S, Yasui A. Value of percutaneous transhepatic cholangioscopy (PTCS). Surg Endosc. 1988;2(4):213-19. doi: 10.1007/BF00705323
  10. Chen YK, Pleskow DK. SpyGlass single-operator peroral cholangiopancreatoscopy system for the diagnosis and therapy of bile-duct. Gastrointest Endosc. 2007 May;65(6):832-41. doi: 10.1016/j.gie.2007.01.025
  11. Mou S, Waxman I, Chennat J. Peroral cholangioscopy in Roux-en-Y hepaticojejunostomy anatomy by using the SpyGlass Direct Visualization System (with video). Gastrointest Endosc. 2010 Aug;72(2):458-60. doi: 10.1016/j.gie.2009.11.017
  12. Koornstra JJ. Double balloon enteroscopy for endoscopic retrograde cholangiopancreaticography after Roux-en-Y reconstruction: case series and review of the literature. Neth J Med. 2008 Jul-Aug;66(7):275-79. http://www.njmonline.nl/getpdf.php?id=686
  13. Карпов ОЭ, Ветшев ПС, Бруслик СВ, Маады АС, Левчук АЛ, Свиридова ТИ. Сочетанное применение мини-инвазивных технологий в лечении механической желтухи. Анналы Хирург Гепатологии. 2019;24(2):100-104. doi.org/10.16931/1995-5464.20192100-104
  14. Охотников ОИ, Яковлева МВ, Григорьев СН. Рентгенэндобилиарные вмешательства при внутрипеченочном холангиолитиазе. Анналы Хирург Гепатологии. 2016;21(4):23-29. doi.org/10.16931/1995-5464.2016423-29
  15. Kulkarni CB, Pullara SK, Moorthy S, Prabhu NK, Nazar PK, Kannan RR. Percutaneous transhepatic balloon dilatation of benign bilioenteric strictures: Analysis of technique and long-term outcome. Gastrointest Interv. 2015;4(2):112-19. doi: 10.18528/gii150001
  16. Cantwell CP, Pena CS, Gervais DA, Hahn PF, Dawson SL, Mueller PR. Thirty years’ experience with balloon dilation of benign postoperative biliary strictures: long-term outcomes. Radiology. 2008 Dec;249(3):1050-57. doi: 10.1148/radiol.2491080050
  17. Bonnel DH, Fingerhut AL. Percutaneous transhepatic balloon dilatation of benign bilioenteric strictures: long-term results in 110 patients. Am J Surg. 2012 Jun;203(6):675-83. doi: 10.1016/j.amjsurg.2012.02.001
  18. Morrison MC, Lee MJ, Saini S, Brink JA, Mueller PR. Percutaneous balloon dilatation of benign biliary strictures. Radiol Clin North Am. 1990 Nov;28(6):1191-201.
  19. Schumacher B, Othman T, Jansen M, Preiss C, Neuhaus H. Long-term follow-up of percutaneous transhepatic therapy (PTT) in patients with definite benign anastomotic strictures after hepaticojejunostomy. Endoscopy. 2001 May;33(5):409-15. doi: 10.1055/s-2001-14264
Адрес для корреспонденции:
223041, Республика Беларусь,
Минская обл. и р-н, п. Лесной,1,
Минская областная клиническая больница, кафедра хирургии,
тел. раб.: +375172652213,
e-mail: dept-surg@hotmail.com,
Воробей Александр Владимирович
Cведения об авторах:
Воробей Александр Владимирович, член-кор-респондент НАН Беларуси, д.м.н., профессор, заведующий кафедрой хирургии, Белорусская медицинская академия последипломного образования, г. Минск, Республика Беларусь.
https://orcid.org/0000-0002-9765-2755
Орехов Виталий Фомич, врач-рентгено-эндоваску-лярный хирург, Республиканский научно-практический центр онкологии и мед. радиологии им. Н.Н. Александрова, г. Минск, Республика Беларусь.
https://orcid.org/ 0000-0002-6056-855X
Лагодич Наталья Анатольевна, к.м.н., доцент, кафедра хирургии, Белорусская медицинская академия последипломного образования, г. Минск, Республика Беларусь.
https://orcid.org/0000-0001-9870-7204
Капран Александр Сергеевич, аспирант, кафедра хирургии, Белорусская медицинская академия последипломного образования, г. Минск, Республика Беларусь.
https://orcid.org/0000-0002-7570-0509
Вижинис Ежи Ионас, к.м.н., доцент, кафедра хирургии, Белорусская медицинская академия последипломного образования, г. Минск, Республика Беларусь.
http://orcid.org/0000-0002-9185-7119
DOI: https://dx.doi.org/10.18484/2305-0047.2022.2.221   |  

А.В. МАЛОШТАH, А.А. НЕКЛЮДОВ, В.Ю. БРОВКИH

СПОHТАHHЫЙ РАЗРЫВ СЕЛЕЗЕHКИ КАК ПЕРВОЕ ПРОЯВЛЕHИЕ ХРОHИЧЕСКОГО МИЕЛОЛЕЙКОЗА

Институт общей и неотложной хирургии им. В.Т. Зайцева
Национальной академии медицинских наук Украины, г. Харьков,
Украина

Спонтанный разрыв селезенки является редким заболеванием и возникает без видимой внешней механической травмы. Однако летальность при этом превышает таковую при травматическом разрыве в 2-5 раз, что обычно связано с основным заболеванием. При большинстве этих патологических состояний пролиферативные процессы внутри органа, тромбозы сосудов, инфаркты и гематомы вызывают быстрое увеличение общего объема селезенки. На каком-то этапе этот объем начинает превышать допустимый объем органа, ограниченный пределом растяжения его капсулы. Происходит ее разрыв. Наши два наблюдения представляют интерес в том плане, что спонтанный разрыв селезенки с массивным кровотечением III степени произошел на фоне полного благополучия и явился первым симптомом запущенного пролиферативного заболевания крови. До спонтанного разрыва оба пациента не предъявляли жалоб на общее состояние организма и вели активный образ жизни. Один разрыв произошел во время компьютерной томографии с контрастом. Было диагностировано не только нарушение целостности органа, но и артериовенозное продолжающееся внутрибрюшное кровотечение. Второй разрыв произошел во время сна, когда любая, даже самая незначительная механическая травма полностью исключена. Своевременная хирургическая помощь (спленэктомия и гемостаз) позволила предотвратить неблагоприятные исходы.

Ключевые слова: селезенка, спонтанный разрыв, спленэктомия, миелолейкоз, гемотрансфузия
с. 221-227 оригинального издания
Список литературы
  1. Renzulli P, Hostettler A, Schoepfer AM, Gloor B, Candinas D. Systematic review of atraumatic splenic rupture. Br J Surg. 2009 Oct;96(10):1114-21. doi: 10.1002/bjs.6737
  2. Muñoz A, Flórez D, Lubinus F, Mendoza T. Pathological spleen rupture as clinical presentation of diffuse large B-cell lymphoma: case report. Rev Colomb Radiol. 2017;28(3):4495-98 http://contenido.acronline.org/Publicaciones/RCR/RCR28-3/015_Ruptura-Ingl%C3%A9s%20(para%20publicaci%C3%B3n).pdf
  3. Gedik E, Girgin S, Aldemir M, Keles C, Tuncer MC, Aktas A. Non-traumatic splenic rupture: report of seven cases and review of the literature. World J Gastroenterol. 2008 Nov 21;14(43):6711-16. doi: 10.3748/wjg.14.6711
  4. Liu J, Feng Y, Li A, Liu C, Li F. Diagnosis and treatment of atraumatic splenic rupture: experience of 8 cases. Gastroenterol Res Pract. 2019 Jan:1-5. doi: 10.1155/2019/5827694
  5. Franka EA, LaFleurb JR, Okosun S. Nontraumatic Splenic Rupture due to Infectious Mononucleosis. J Acute Care Surg. 2019;9(2):69-71. Published online October 30, 2019. doi: 10.17479/jacs.2019.9.2.69
  6. Amonkar SJ, Kumar EN. Spontaneous rupture of the spleen: three case reports and causative processes for the radiologist to consider. Br J Radiol. 2009 Jun;82(978):e111-13. doi: 10.1259/bjr/81440206
  7. Kaniappan K, Lim CTS, Chin PW. Non-traumatic splenic rupture - a rare first presentation of diffuse large B-cell lymphoma and a review of the literature. BMC Cancer. 2018 Aug 2;18(1):779. doi: 10.1186/s12885-018-4702-1
  8. Mello DFRE, Costa MJBD, Febronio EM, Landell GAM, Queiroz RM. Spontaneous splenic rupture associated with multiple myeloma: a serious and unusual case. Hematol Transfus Cell Ther. 2020 Jan-Mar;42(1):83-86. doi: 10.1016/j.htct.2019.01.011
  9. Sreehari D, Singh VB, Meen BL, Beniwal S, Ujwal V, Chetankumar HB. Spontaneous rupture of spleen in malaria: a case report. Int J Med Res Rev. 2014;2(1):67-69. 10.17511/ijmrr.2014.i01.12
  10. Полынский АА, Сухоцкий ДВ. Спонтанный разрыв селезенки, как показательный признак хронического лимфолейкоза. Журн ГрГМУ. 2013;(4):124-25. http://www.journal-grsmu.by/index.php/ojs/article/view/389
  11. Jafferbhoy S, Chantry A, Atkey N, Turner D, Wyld L. Spontaneous splenic rupture: an unusual presentation of CML. BMJ Case Rep. 2011 Mar 24;2011:bcr0220113879. doi: 10.1136/bcr.02.2011.3879
  12. Choudhury J, Uttam KG, Mukhopadhyay M. Spontaneous rupture of malarial spleen. Indian Pediatr. 2008 Apr;45(4):327-28. https://www.indianpediatrics.net/apr2008/327.pdf
  13. Опарин АА, Опарин АГ., Хоменко ЛА, Новохатняя АЕ, Кореновский ИП. Ультразвуковое исследование селезенки в норме и патологии. Восточно-Европейский Журн Внутренней и Семейной Медицины. 2018;(2):63-68. 10.15407/internalmed2018.02.063
  14. Stephenson JT, DuBois JJ. Nonoperative management of spontaneous splenic rupture in infectious mononucleosis: a case report and review of the literature. Pediatrics. 2007 Aug;120(2):e432-35. doi: 10.1542/peds.2006-3071
  15. Aldrete JS. Spontaneous rupture of the spleen in patients with infectious mononucleosis. Mayo Clin Proc. 1992 Sep;67(9):910-12. doi: 10.1016/s0025-6196(12)60835-0
Адрес для корреспонденции:
61103, Украина, г. Харьков, въезд Балакирева, д. 1,
Институт общей и неотложной хирургии
им. В. Т. Зайцева Национальной академии медицинских наук Украины,
отделение хирургии печени
и желчевыводящих путей,
тел.: +380 573 49-41-20,
e-mail: andrey.aleksandrovich@googlemail.com,
Неклюдов Андрей Александрович
Cведения об авторах:
Малоштан Александр Васильевич, д.м.н., главный научный сотрудник, Институт общей и неотложной хирургии им. В. Т. Зайцева Национальной академии медицинских наук Украины, г. Харьков, Украина.
https://orcid.org/0000-0001-5205-8480
Неклюдов Андрей Александрович, к.м.н., научный сотрудник, Институт общей и неотложной хирургии им. В. Т. Зайцева Национальной академии медицинских наук Украины, г. Харьков, Украина.
https://orcid.org/0000-0001-5567-2419
Бровкин Вячеслав Юрьевич, младший научный сотрудник, Институт общей и неотложной хирургии им. В.Т. Зайцева Национальной академии медицинских наук Украины, г. Харьков, Украина.
https://orcid.org/0000-0003-4684-9096
DOI: https://dx.doi.org/10.18484/2305-0047.2022.2.228   |  

Д.В. БАТЮКОВ 1, О.А. ЕРОХИHА 2, О.А. ЮДИHА 3, В.Н. ПОДГАЙСКИЙ 4, А.Ч. ДУБРОВСКИЙ 2

ИМПЛАHТ-АССОЦИИРОВАHHАЯ АHАПЛАСТИЧЕСКАЯ КРУПHОКЛЕТОЧHАЯ ЛИМФОМА. ПЕРВЫЙ СЛУЧАЙ В РЕСПУБЛИКЕ БЕЛАРУСЬ

Медицинский центр «Антес Мед» 1,
Республиканский научно-практический центр онкологии и медицинской
радиологии им. Н.Н. Александрова 2,
Республиканский клинический медицинский центр управления делами Президента РБ 3,
Белорусская медицинская академия последипломного образования 4, г. Минск,
Республика Беларусь

Увеличение груди имплантами является одной из наиболее популярных операций в пластической хирургии. Опыт и клинические наблюдения выявили связь имплантов для увеличения груди и особого вида лимфомы, возникающей вокруг них, – имплант-ассоциированной анапластической крупноклеточной лимфомы (ИААКЛ), что привело к изменению подходов к выбору имплантов и ограничительным мерам в ряде стран. Публикуем первый случай имплант-ассоциированной анапластической крупноклеточной лимфомы молочной железы в Беларуси. За 9 лет до диагностики лимфомы пациентке было проведено увеличение груди с подтяжкой по эстетическим показаниям. Использовались импланты 3 группы текстуры по ISO. Клинически заболевание проявлялось исключительно наличием серомы. До операции (капсулэктомии и репротезирования) пациентке в связи с ее отказом от оперативного лечения производились неоднократные пункции с анализом пунктата. Заключительный диагноз: крупноклеточная ассоциированная с грудными имплантами лимфома, стадия 1а. Наблюдение в течение 1,5 лет – рецидив не диагностирован. Анализ литературы по данной проблеме свидетельствует об увеличении количества случаев, большинство из которых проявляются в виде скопления жидкости, а тотальная капсулэктомия является достаточным и окончательным лечением. Наличие имплантов в груди без определенных симптомов в настоящее время не является показанием к их замене или удалению. Авторы считают рациональным создание национального регистра имплантов с целью аналитического подхода к возможным ассоциациям с патологическими состояниями.

Ключевые слова: имплант-ассоциированная лимфома, увеличение груди, крупноклеточная анапластическая лимфома, поздняя серома, импланты для увеличения груд
с. 228-235 оригинального издания
Список литературы
  1. ISAPS International Survey on Aesthetic/Cosmetic Procedures Performed in 2018 [Electronic resource]. ISAPS Official Data, 2018 Available from: https://www.isaps.org/wp-content/uploads/2019/12/ISAPS-Global-Survey-Results-2018-new.pdf
  2. Keech JA Jr, Creech BJ. Anaplastic T-cell lymphoma in proximity to a saline-filled breast implant. Plast Reconstr Surg. 1997 Aug;100(2):554-5. doi: 10.1097/00006534-199708000-00065
  3. Swerdlow SH, Campo E, Pileri SA, Harris NL, Stein H, Siebert R, Advani R, Ghielmini M, Salles GA, Zelenetz AD, Jaffe ES. The 2016 revision of the World Health Organization classification of lymphoid neoplasms. Blood. 2016 May 19;127(20):2375-90. doi: 10.1182/blood-2016-01-643569
  4. National Comprehensive Cancer Network Guidelines in Oncology. T-Cell Lymphomas [Electronic resource]. National Comprehensive Cancer Network https://www.nccn.org/professionals/physician_gls/pdf/t-cell.pdf
  5. Profile: investigating BIA-ALCL and Breast Implants. [Electronic resource]. The Plastic Surgery Foundation. https://www.thepsf.org/research/registries/profile
  6. FDA Updates Analysis of Medical Device Reports of Breast Implant Illness and Breast Implant-Associated Lymphoma [Electronic resource]. Food and Drug Administration. https://www.fda.gov/news-events/press-announcements/fda-updates-analysis-medical-device-reports-breast-implant-illness-and-breast-implant-associated
  7. Clemens MW, Medeiros LJ, Butler CE, Hunt KK, Fanale MA, Horwitz S, Weisenburger DD, Liu J, Morgan EA, Kanagal-Shamanna R, Parkash V, Ning J, Sohani AR, Ferry JA, Mehta-Shah N, Dogan A, Liu H, Thormann N, Di Napoli A, Lade S, Piccolini J, Reyes R, Williams T, McCarthy CM, Hanson SE, Nastoupil LJ, Gaur R, Oki Y, Young KH, Miranda RN. Complete Surgical Excision Is Essential for the Management of Patients With Breast Implant-Associated Anaplastic Large-Cell Lymphoma. J Clin Oncol. 2016 Jan 10;34(2):160-8. doi: 10.1200/JCO.2015.63.3412
  8. Cordeiro PG, Ghione P, Ni A, Hu Q, Ganesan N, Galasso N, Dogan A, Horwitz SM. Risk of breast implant associated anaplastic large cell lymphoma (BIA-ALCL) in a cohort of 3546 women prospectively followed long term after reconstruction with textured breast implants. J Plast Reconstr Aesthet Surg. 2020 May;73(5):841-846. doi: 10.1016/j.bjps.2019.11.064
  9. BIA-ALCL Physician Resources [Electronic resource]. American Society of Plastic Surgeons. https://www.plasticsurgery.org/for-medical-professionals/health-policy/bia-alcl-physician-resources
  10. Rastogi P, Riordan E, Moon D, Deva AK. Theories of Etiopathogenesis of Breast Implant-Associated Anaplastic Large Cell Lymphoma. Plast Reconstr Surg. 2019 Mar;143(3S A Review of Breast Implant-Associated Anaplastic Large Cell Lymphoma):23S-29S. doi: 10.1097/PRS.0000000000005566
  11. SCHEER (Scientific Committee on Health, Environmental and Emerging Risks), Scientific Opinion on the safety of breast implants in relation to anaplastic large cell lymphoma, 26 March 2021.
  12. Hojo N, Yakushijin Y, Narumi H, Minamoto Y, Sakai I, Takada K, Hato T, Yasukawa M, Fujita S. Non-Hodgkin’s lymphoma developing in a pacemaker pocket. Int J Hematol. 2003 May;77(4):387-90. doi: 10.1007/BF02982649
  13. Fleming D, Stone J, Tansley P. Update: Spontaneous Regression and Resolution of Breast Implant-Associated Anaplastic Large Cell Lymphoma-Implications for Research, Diagnosis and Clinical Management-Our Reflections and Current Thoughts Two Years On. Aesthetic Plast Surg. 2020 Aug;44(4):1116-19. doi: 10.1007/s00266-020-01771-6
  14. de Boer M, van Leeuwen FE, Hauptmann M, Overbeek LIH, de Boer JP, Hijmering NJ, Sernee A, Klazen CAH, Lobbes MBI, van der Hulst RRWJ, Rakhorst HA, de Jong D. Breast Implants and the Risk of Anaplastic Large-Cell Lymphoma in the Breast. JAMA Oncol. 2018 Mar 1;4(3):335-41. doi: 10.1001/jamaoncol.2017.4510
  15. Clemens MW, Jacobsen ED, Horwitz SM. 2019 NCCN Consensus Guidelines on the Diagnosis and Treatment of Breast Implant-Associated Anaplastic Large Cell Lymphoma (BIA-ALCL). Aesthet Surg J. 2019 Jan 31;39(Suppl_1):S3-S13. doi: 10.1093/asj/sjy331
  16. Mehta-Shah N, Clemens MW, Horwitz SM. How I treat breast implant-associated anaplastic large cell lymphoma. Blood. 2018 Nov 1;132(18):1889-98. doi: 10.1182/blood-2018-03-785972
  17. FDA takes action to protect patients from risk of certain textured breast implants; requests Allergan voluntarily recall certain breast implants and tissue expanders from market [Electronic resource]. Food and Drug Administration. https://www.fda.gov/news-events/press-announcements/fda-takes-action-protect-patients-risk-certain-textured-breast-implants-requests-allergan
Адрес для корреспонденции:
220037, Республика Беларусь,
Минск, пер. Козлова, д. 25-6,
медицинский центр «Антес Мед»,
тел.: +375 29 611-49-91,
e-mail: dmitry.batiukov@gmail.com,
Батюков Дмитрий Владимирович
Cведения об авторах:
Батюков Дмитрий Владимирович, к.м.н., заведующий хирургическим отделением, медицинский центр «Антес Мед», г. Минск, Республика Беларусь.
https://orcid.org/0000-0003-0891-4053
Ерохина Оксана Алексеевна, к.м.н., заведующий цитологической лабораторией, Республиканский научно-практический центр онкологии и медицинской радиологии им. Н.Н. Александрова, г. Минск, Республика Беларусь.
https://orcid.org/0000-0002-9518-5831
Юдина Ольга Анатольевна, к.м.н., доцент, врач-патологоанатом, Республиканский клинический медицинский центр УД Президента Республики Беларусь, г. Минск, Республика Беларусь.
https://orcid.org/0000-0001-7623-0601
Дубровский Александр Чеславович, к.м.н., заведующий патологоанатомическим отделением, Республиканский научно-практический центр онкологии и медицинской радиологии им. Н.Н. Александрова, г. Минск, Республика Беларусь.
https://orcid.org/0000-0002-2536-0294
Подгайский Владимир Николаевич, д.м.н., профессор, заведующий кафедрой пластической хирургии и комбустиологии Белорусской медицинской академии последипломного образования, г. Минск, Республика Беларусь.
https://orcid.org/0000-0002-5112-6506
Контакты | ©Витебский государственный медицинский университет, 2007