Новости
хирургии
Журнал включен
в систему цитирования Scopus









2020 г. №4 Том 28

НАУЧHЫЕ ПУБЛИКАЦИИ
ЭКСПЕРИМЕHТАЛЬHАЯ ХИРУРГИЯ

DOI: https://dx.doi.org/10.18484/2305-0047.2020.4.359   |  

И.В. МАЙБОРОДИH 1, А.А. ШЕВЕЛА 1, С.В. МАРЧУКОВ 1, В.В. МОРОЗОВ 1, В.А. МАТВЕЕВА 1, В.И. МАЙБОРОДИHА 2, А.М. НОВИКОВ 3, А.И. ШЕВЕЛА 1

РЕГЕHЕРАЦИЯ КОСТHОГО ДЕФЕКТА В УСЛОВИЯХ ЭКСПЕРИМЕHТАЛЬHОГО ПРИМЕHЕHИЯ ЭКСТРАЦЕЛЛЮЛЯРHЫХ МИКРОВЕЗИКУЛ МУЛЬТИПОТЕHТHЫХ СТРОМАЛЬHЫХ КЛЕТОК

Институт химической биологии и фундаментальной медицины
Сибирского отделения Российской академии наук 1,
Федеральный исследовательский центр фундаментальной и трансляционной медицины
Министерства науки и высшего образования РФ,
Институт молекулярной патологии и патоморфологии 2,
АО Медицинский центр «Авиценна» 3, г. Новосибирск,
Российская Федерация

Цель. Изучить результаты применения экстрацеллюлярных микровезикул мультипотентных мезенхимальных стромальных клеток костномозгового происхождения крысы (ЭМВ) для регенерации дефекта костной ткани кроликов, а также получить данные о сохранности ЭМВ в тканях после их введения.
Материал и методы. В проксимальных мыщелках большеберцовой кости беспородных кроликов создавали дефект диаметром 2 мм и глубиной 4 мм. На левой конечности дефект заполняли физиологическим раствором, на правой конечности в дефект вводили 50 мкг ЭМВ.
Результаты. К 12-м суткам в контроле у всех кроликов сохранялся дефект в костной ткани с формирующимися костными структурами и грубым толстым рубцом на границе с неповрежденными участками. После введения ЭМВ в большинстве случаев повреждение кости не было найдено, рубец был тонким, с упорядоченными структурами межклеточного матрикса. Спустя 12 суток после применения ЭМВ, меченных Vybrant® CM-Dil, в надкостнице и рядом с ней, костном мозге, сосудах костной ткани были найдены единичные, очень мелкие, пылевидные объекты, флюоресцирующие красным цветом на фоне применения фильтра для родамина. Иногда был отмечен четкий красный оттенок включений в крупных клеточных элементах – макрофагах. К 21-му дню справа (опыт) в 4 случаях из 5 на месте дефекта костной ткани были найдены только структуры рубца, тогда как слева (контроль) – только в 2 наблюдениях из 5.
Заключение. Предварительные результаты применения ЭМВ для регенерации дефекта костной ткани в эксперименте свидетельствуют о более быстром заживлении, увеличении частоты успешной регенерации поврежденной кости и формировании менее грубой костной мозоли. У кроликов ЭМВ присутствуют в тканях в месте применения не менее 12 суток. Часть введенных ЭМВ оказывается в макрофагах.

Ключевые слова: костная ткань, регенерация костной ткани, экстрацеллюлярные микровезикулы, макрофаги, люминесцентная микроскопия
с. 359-369 оригинального издания
Список литературы
  1. Takeda YS, Xu Q. Neuronal differentiation of human mesenchymal stem cells using exosomes derived from differentiating neuronal cells. PLoS One. 2015;10(8):e0135111. doi: 10.1371journal.pone.0135111
  2. Wu Y, Huang Q, Bu S. Cross talk between exosomes and pancreatic β-cells in diabetes. Arch Physiol Biochem. 2020 Jul 8:1-10. doi: 10.1080/13813455.2020.1760303. Online ahead of print.
  3. Kumagai Y, Murakami T, Kuwahara-Arai, Iba T, Reich J, Nagaoka I. Antimicrobial peptide LL-37 ameliorates a murine sepsis model via the induction of microvesicle release from neutrophils. Innate Immun. 2020 Jun 29:1753425920936754. doi: 10.1177/1753425920936754. Online ahead of print.
  4. Silachev DN, Goryunov KV, Shpilyuk MA, Beznoschenko OS, Morozova NY, Kraevaya EE, Popkov VA, Pevzner IB, Zorova LD, Evtushenko EA, Starodubtseva NL, Kononikhin AS, Bugrova AE, Evtushenko EG, Plotnikov EY, Zorov DB, Sukhikh GT. Effect of mscs and msc-derived extracellular vesicles on human blood coagulation. Cells. 2019 Mar 19;8(3). pii: E258. doi: 10.3390/cells8030258
  5. Lener T, Gimona M, Aigner L, Börger V, Buzas E, Camussi G, Chaput N, Chatterjee D, Court FA, Del Portillo HA, O’Driscoll L, Fais S, Falcon-Perez JM, Felderhoff-Mueser U, Fraile L, Gho YS, Görgens A, Gupta RC, Hendrix A, Hermann DM, Hill AF, Hochberg F, Horn PA, de Kleijn D, Kordelas L, Kramer BW, Krämer-Albers EM, Laner-Plamberger S, Laitinen S, Leonardi T, Lorenowicz MJ, Lim SK, Lötvall J, Maguire CA, Marcilla A, Nazarenko I, Ochiya T, Patel T, Pedersen S, Pocsfalvi G, Pluchino S, Quesenberry P, Reischl IG, Rivera FJ, Sanzenbacher R, Schallmoser K, Slaper-Cortenbach I, Strunk D, Tonn T, Vader P, van Balkom BW, Wauben M, Andaloussi SE, Théry C, Rohde E, Giebel B. Applying extracellular vesicles based therapeutics in clinical trials – an ISEV position paper. J Extracell Vesicles. Dec 31;4:30087. doi: 10.3402/jev.v4.30087. eCollection 2015.
  6. Narayanan R, Huang CC, Ravindran S. Hijacking the cellular mail: exosome mediated differentiation of mesenchymal stem cells. Stem Cells Int. 2016;2016:3808674. doi: 10.1155/2016/3808674
  7. Furuta T, Miyaki S, Ishitobi H, Ogura T, Kato Y, Kamei N, Miyado K, Higashi Y, Ochi M. Mesenchymal stem cell-derived exosomes promote fracture healing in a mouse model. Stem Cells Transl Med. 2016 Dec;5(12):1620-30. doi: 10.5966/sctm.2015-0285
  8. Майбородин ИВ, Матвеева ВА, Колесников ИС, Дровосеков МН, Тодер МС, Шевела АИ. Влияние аутологичных мезенхимальных стволовых клеток костномозгового происхождения на регенерацию поврежденной кости нижней челюсти крыс. Стоматология. 2012;91(1):5-8. https://www.mediasphera.ru/issues/stomatologiya/2012/1/030039-1735201211
  9. Zhang S, Chu WC, Lai RC, Lim SK, Hui JH, Toh WS. Exosomes derived from human embryonic mesenchymal stem cells promote osteochondral regeneration. Osteoarthritis Cartilage. 2016 Dec;24(12):2135-40. doi: 10.1016/j.joca.2016.06.022
  10. Wang KX, Xu LL, Rui YF, Huang S, Lin SE, Xiong JH, Li YH, Lee WY, Li G. The effects of secretion factors from umbilical cord derived mesenchymal stem cells on osteogenic differentiation of mesenchymal stem cells. PLoS One. 2015 Mar 23;10(3):e0120593. doi: 10.1371/journal.pone.0120593. eCollection 2015.
  11. Torreggiani E, Perut F, Roncuzzi L, Zini N, Baglìo SR, Baldini N. Exosomes: novel effectors of human platelet lysate activity. Eur Cell Mater. 2014 Sep 22;28:137-51; discussion 151. doi: 10.22203/ecm.v028a11
  12. Lei L, Tzekov R, Tang S, Kaushal S. Accumulation and autofluorescence of phagocytized rod outer segment material in macrophages and microglial cells. Mol Vis. 2012;18:103-13. http://www.molvis.org/molvis/v18/a13
  13. Tang XD, Shi L, Monsel A, Li XY, Zhu HL, Zhu YG, Qu JM. Mesenchymal Stem Cell Microvesicles Attenuate Acute Lung Injury in Mice Partly Mediated by Ang-1 mRNA. Stem Cells. 2017 Jul;35(7):1849-59. doi: 10.1002/stem.2619
Адрес для корреспонденции:
630090, Российская Федерация,
г. Новосибирск, пр. акад. Лаврентьева, д. 8,
Институт химической биологии
и фундаментальной медицины СО РАН,
Центр новых медицинских технологий,
тел.: +7-913-753-0767,
e-mail: imai@mail.ru,
Майбородин Игорь Валентинович
Cведения об авторах:
Майбородин Игорь Валентинович, д.м.н., профессор, главный научный сотрудник лаборатории технологий управления здоровьем, Центр новых медицинских технологий, Институт химической биологии и фундаментальной медицины, г. Новосибирск, Российская Федерация.
http://orcid.org/0000-0002-8182-5084
Шевела Александр Андреевич, к.м.н., докторант лаборатории технологий управления здоровьем, Центр новых медицинских технологий, Институт химической биологии и фундаментальной медицины, г. Новосибирск, Российская Федерация.
http://orcid.org/0000-0001-9235-9384
Марчуков Сергей Вадимович, к.м.н., докторант лаборатории технологий управления здоровьем, Центр новых медицинских технологий, Институт химической биологии и фундаментальной медицины, г. Новосибирск, Российская Федерация.
https://orcid.org/0000-0002-7381-5820
Морозов Виталий Валерьевич, д.м.н., профессор, заведующий лабораторией технологий управления здоровьем, Центр новых медицинских технологий, Институт химической биологии и фундаментальной медицины, г. Новосибирск, Российская Федерация.
https://orcid.org/0000-0002-9810-5593
Матвеева Вера Александровна, к.б.н., старший научный сотрудник лаборатории технологий управления здоровьем, Центр новых медицинских технологий, Институт химической биологии и фундаментальной медицины, г. Новосибирск, Российская Федерация.
https://orcid.org/0000-0002-8706-4853
Майбородина Виталина Игоревна, д.м.н., ведущий научный сотрудник лаборатории ультраструктурных основ патологии, Федеральный исследовательский центр фундаментальной и трансляционной медицины Министерства науки и высшего образования РФ, г. Новосибирск, Российская Федерация.
http://orcid.org/0000-0002-5169-6373
Новиков Алексей Михайлович, врач-гинеколог, отделение гинекологии, АО «Авиценна», г. Новосибирск, Российская Федерация.
https://orcid.org/0000-0003-1371-7492
Шевела Андрей Иванович, д.м.н., профессор, заведующий отделом, Центр новых медицинских технологий, Институт химической биологии и фундаментальной медицины, г. Новосибирск, Российская Федерация.
http://orcid.org/0000-0002-3164-9377

ОБЩАЯ И ЧАСТHАЯ ХИРУРГИЯ

DOI: https://dx.doi.org/10.18484/2305-0047.2020.4.370   |  

Ю.В. БЕЛОВ 1, К.Н. РЫБАКОВ 2,3, И.А. ГУБАРЕВ 2, А.З. САЛЕХ 2, И.А. ВИHОКУРОВ 3

БЛИЖАЙШИЕ РЕЗУЛЬТАТЫ ЛЕЧЕHИЯ ПАЦИЕHТОВ С ПОРОКОМ АОРТАЛЬHОГО КЛАПАHА В СОЧЕТАHИИ С ПОСТСТЕHОТИЧЕСКИМ РАСШИРЕHИЕМ ВОСХОДЯЩЕЙ АОРТЫ МЕHЕЕ 5 СМ

Российский научный центр хирургии им. акад. Б.В. Петровского 1,
Городская клиническая больница № 1 им. Н.И. Пирогова 2,
Первый Московский государственный медицинский университет имени И. М. Сеченова
(Сеченовский Университет) Минздрава России 3, г. Москва,
Российская Федерация

Цель. Провести сравнительную оценку ближайших результатов изолированных операций на аортальном клапане и комбинированного хирургического вмешательства на аортальном клапане и восходящей аорте у пациентов с пороками аортального клапана в сочетании с постстенотическим расширением восходящей аорты менее 5 см.
Материал и методы. В статье проанализированы результаты хирургического лечения 39 пациентов с пороками аортального клапана в сочетании с аневризмами восходящей аорты. Различия заключались в тактике хирургического лечения: 22 пациентам было выполнено комбинированное хирургическое вмешательство на аортальном клапане и восходящей аорте, 17 пациентам – изолированные операции на аортальном клапане. В каждой из групп исследования производилась оценка интраоперационных данных, реабилитационного периода и осложнений в раннем послеоперационном периоде.
Результаты. Статистический анализ не выявил достоверной разницы по реабилитационному периоду и осложнениям в раннем послеоперационном периоде между основной группой и группой сравнения за исключением показателя послеоперационных кровотечений, который оказался достоверно выше у пациентов, перенесших комбинированное хирургическое вмешательство на аортальном клапане и восходящей аорте, и зафиксирован в 18,2% наблюдений (р=0,03).
Заключение. Умеренное увеличение продолжительности операции и искусственного кровообращения, а также интраоперационной кровопотери за счет формирования дополнительного анастомоза на восходящей аорте у пациентов, перенесших комбинированное протезирование аортального клапана и восходящей аорты, в сравнении с изолированным протезированием аортального клапана существенно не влияет на послеоперационный реабилитационный период и частоту осложнений в раннем послеоперационном периоде. Окончательное решение вопроса о целесообразности выполнения комбинированного протезирования аортального клапана и восходящей аорты у пациентов с пороком аортального клапана в сочетании с постстенотическим расширением восходящей аорты менее 5 см требует дополнительного сравнительного анализа отдаленных результатов хирургического лечения исследуемых групп пациентов.

Ключевые слова: расширение восходящей аорты, аневризма восходящей аорты, порок аортального клапана, стеноз аортального клапана, протезирование аортально
с. 370-376 оригинального издания
Список литературы
  1. Белов ЮВ, Степаненко АБ, Генс АП, Григорян ГР, Белов АЮ. Хирургические технологии в лечении аневризм грудного и торакоабдоминального отделов аорты. Хирургия. Журн им НИ Пирогова. 2003;(2):22-27.
  2. Isselbacher EM. Thoracic and abdominal aortic aneurysms. Circulation. 2005 Feb 15;111(6):816-28. doi: 10.1161/01.CIR.0000154569.08857.7A
  3. Robicsek F. About ascending aortic dilatation during aortic valve replacement. J Cardiovasc Surg. 2003;44(2):279. https://www.minervamedica.it/en/journals/cardiovascular-surgery/article.php?cod=R37Y2003N02A0279
  4. Zajac P, Plewka M, Rogowski W, Kasprzak JD. Ascending aortic dilatation as a late complication after implantation of a mechanical aortic valve performed 37 years earlier. Kardiochir Torakochirurgia Pol. 2014 Dec;11(4):437-40. Published online 2014 Nov 30. doi: 10.5114/kitp.2014.47348
  5. Лазоришинец ВВ, Попов ВВ, Большак АА. Экзопротезирование восходящей аорты при ее постстенотическом расширении и коррекции аортального стеноза. Кардиология в Беларуси. 2016;(3):385-89. https://www.rucont.ru/efd/477774
  6. Andrus BW, O’Rourke DJ, Dacey LJ, Palac RT. Stability of ascending aortic dilatation following aortic valve replacement. Circulation. 2003 Sep 9;108 Suppl 1:II295-99. doi: 10.1161/01.cir.0000087385.63569.79
  7. Matsuyama K, Usui A, Akita T, Yoshikawa M, Murayama M, Yano T, Takenaka H, Katou W, Toyama M, Okada M, Sawaki M, Ueda Y. Natural history of a dilated ascending aorta after aortic valve replacement. Circ J. 2005 Apr;69(4):392-96. doi: 10.1253/circj.69.392
Адрес для корреспонденции:
119049, Российская Федерация,
Москва, Ленинский проспект, д. 8,
учреждение, структурное подразделение,
тел.: +7 985 353 51 90,
e-mail: angiodoc@mail.ru,
Губарев Игорь Александрович
Cведения об авторах:
Белов Юрий Владимирович, д.м.н., профессор, академик РАН, директор Института кардио-аортальной хирургии, Российский научный центр хирургии им. акад. Б.В. Петровского, г. Москва, Российская Федерация.
http://orcid.org/0000-0002-9280-8845
Рыбаков Кирилл Николаевич, врач-сердечно-сосудистый хирург, Городская клиническая больница № 1 им. Н.И. Пирогова, г. Москва, Российская. Федерация
https://orcid.org/0000-0002-6530-3382
Губарев Игорь Александрович, соискатель, Российский научный центр хирургии им. акад. Б.В. Петровского, врач-сердечно-сосудистый хирург, Городская клиническая больница № 1 им. Н.И. Пирогова, г. Москва, Российская Федерация.
http://orcid.org/0000-0003-3961-5670
Салех Амро Зухайр Салах, к.м.н., врач-сердечно-сосудистый хирург, Городская клиническая больница № 1 им. Н.И. Пирогова, г. Москва, Российская Федерация.
http://orcid.org/0000-0001-6479-1743
Винокуров Иван Андреевич, к.м.н., доцент кафедры госпитальной хирургии, Первый Московский Государственный Медицинский Университет имени И. М. Сеченова Минздрава России (Сеченовский Университет), г. Москва, Российская Федерация.
https://orcid.org/0000-0003-0433-2523
DOI: https://dx.doi.org/10.18484/2305-0047.2020.4.377   |  

А.Р. ПРУДHИКОВ, А.Н. ЩУПАКОВА, Г.Д. КОРОБОВ

ПРОГHОЗИРОВАHИЕ РАЗВИТИЯ ПОВТОРHЫХ СЕРДЕЧHО-СОСУДИСТЫХ СОБЫТИЙ В ТЕЧЕHИЕ ГОДА ПОСЛЕ СТЕHТИРОВАHИЯ КОРОHАРHЫХ АРТЕРИЙ У ПАЦИЕHТОВ С ИHФАРКТОМ МИОКАРДА

Витебский государственный медицинский университет, г. Витебск,
Республика Беларусь

Цель. Разработать модель прогнозирования развития повторных сердечно-сосудистых событий в течение года после стентирования коронарных артерий на основании данных профиля цитокинов и показателей системы иммунитета у пациентов с инфарктом миокарда.
Материалы и методы. Исследование проведено у 23 пациентов с диагнозом инфаркт миокарда, верифицированного по данным коронароангиографии, результатам электрокардиограммы и биохимического анализа крови. Всем пациентам было проведено стентирование симптом-связанных артерий. Оценивали уровни интерлейкинов 4, 6, 8, 10 и 18, фактора некроза опухолей альфа (ФНО-α), сосудистой адгезионной молекулы sVCAM-1, показателей системы иммунитета (Т- и В-клеточный иммунитет, IgА, IgG, IgM, фагоцитарное число, фагоцитарный индекс лейкоцитов, циркулирующие иммунные комплексы), активность нейтрофильной эластазы и БАПНА-амидазы в сыворотке крови.
Результаты. При использовании дискриминантного анализа, «деревьев классификации» выявлено, что возраст, уровень ИЛ-6 и IgG могут применяться в качестве параметров (реперные значения) для отнесения пациентов в группу высокого или низкого риска развития повторных сердечно-сосудистых событий. В частности, в группу высокого риска попадают пациенты старше 52 лет с уровнем ИЛ-6 менее 1,19 пг/мл и более 4,83 пг/мл и уровнем IgG более 9,075 г/л. Неблагополучный исход предсказывается в 100% случаев, благополучный – в 80% случаев, 88,5% – процент правильного прогноза. На основании полученных результатов использования логистической регрессии с последующим ROC-анализом исследуемых факторов разработана модель прогнозирования, которая включает в себя возраст пациентов, уровень ИЛ-6, IgG, циркулирующих иммунных комплексов, количество активных Т-лимфоцитов (CD3+CD4+HLA-DR+), фагоцитарный индекс лейкоцитов. AUC модели (площадь под кривой) – 0,845 (95% ДИ 0,645-1,0), чувствительность – 80%, специфичность – 90,9%.
Заключение. Разработанная модель позволяет прогнозировать возникновение у пациентов с инфарктом миокарда повторных сердечно-сосудистых событий в течение года после стентирования коронарных артерий.

Ключевые слова: прогнозирование, сердечно-сосудистые события, стентирование, система иммунитета, инфаркт миокарда
с. 377-386 оригинального издания
Список литературы
  1. 10 ведущих причин смерти за 2016 год [Электронный ресурс]. Информ Бюл ВОЗ [дата обращения: 2019 Нояб 20]. Available from: https://www.who.int/ru/news-room/fact-sheets/detail/the-top-10-causes-of-death
  2. Беларусь – на шестом месте по смертности от сердечно-сосудистых заболеваний в мире [Электронный ресурс] [дата обращения: 2019 Нояб 20]. Available from: https://thinktanks.by/publication/2017/05/21/belarus-na-shestom-meste-po-smertnosti-ot-serdechno-sosudistyh-zabolevaniy-v-mire.html
  3. Сеть, кадры организаций здравоохранения и заболеваемость населения в Республике Беларусь за 2018 год [Электронный ресурс]. Нац стат кабинет Респ Беларусь [дата обращения: 2019 Нояб 20]. Available from: https://www.belstat.gov.by/ofitsialnaya-statistika/solialnaya-sfera/zdravoohranenie_2/publikatsii_3/index_7296/
  4. Libby P, Pasterkamp G. Requiem for the “vulnerable plaque”. Eur Heart J. 2015 Nov 14;36(43):2984-87. doi: 10.1093/eurheartj/ehv349
  5. Плечев ВВ, Рисберг РЮ, Бузаев ИВ, Олейник БА, Харасова АФ. Осложнения чрескожных коронарных вмешательств (современное состояние проблемы). Мед Вестн Башкортостана. 2016;11(6):102-108. https://mvb-bsmu.ru/files/journals/6_2016.pdf
  6. Cassese S, Byrne RA, Tada T, Pinieck S, Joner M, Ibrahim T, King LA, Fusaro M, Laugwitz KL, Kastrati A. Incidence and predictors of restenosis after coronary stenting in 10 004 patients with surveillance angiography. Heart. 2014 Jan;100(2):153-59. doi: 10.1136/heartjnl-2013-304933
  7. Орехова ЮН, Иванченко ДН, Дорофеева НП, Мартиросов ВЮ. Информативность маркеров системного воспаления у пациентов со стабильной ишемической болезнью сердца: влияние симптомов депрессии и рестеноза в анамнезе. Мед Вестн Юга России. 2018;9(1):70-79. doi: 10.21886/2219-8075-2018-9-1-70-79
  8. Flego D, Liuzzo G, Weyand CM, Crea F. Adaptive Immunity Dysregulation in Acute Coronary Syndromes: From Cellular and Molecular Basis to Clinical Implications. J Am Coll Cardiol. 2016 Nov 8;68(19):2107-17. doi: 10.1016/j.jacc.2016.08.036
  9. Peripheral arterial diseases are «a window into cardiovascular health». European Society of Cardiology. 2017 ESC Guidelines on the Diagnosis and Treatment of Peripheral Arterial Diseases, in collaboration with the European Society for Vascular Surgery (ESVS) – part 1 [Электронный ресурс] [дата обращения: 2020 Апр 04]. Available from: https://www.escardio.org/Congresses-&-Events/ESC-Congress/Congress-resources/Congress-news/peripheral-arterial-diseases-are-a-window-into-cardiovascular-health
  10. Прудников АР, Щупакова АН. Мультифокальный атеросклероз – один из главных факторов риска, ускоряющий развитие острых сердечно-сосудистых событий. Мед Акад Журн. 2018;18(2):29-42. doi: 10.17816/MAJ18229-42. https://elibrary.ru/item.asp?id=35664244&
  11. Ibanez B, James S, Agewall S, Antunes MJ, Bucciarelli-Ducci С, Bueno H, Caforio ALP, Crea F, Goudevenos JA, Halvorsen S, Hindricks G, Kastrati A, Lenzen MJ, Prescott E, Roffi M, Valgimigli M, Varenhorst C, Vranckx P, Widimsky P. Рекомендации ЕОК по ведению пациентов с острым инфарктом миокарда с подъемом сегмента ST 2017. Рос Кардиол Журн. 2018;23(5):103-58. doi: 10.15829/1560-4071-2018-5-103-158
  12. Прищепенко ВА. Ферментативные активности сыворотки крови для диагностики и дифференциальной диагностики хронических диффузных заболеваний печени. Вестн ВГМУ. 2019;18(4):46-59. doi.org/10.22263/2312-4156.2019.4.46
  13. Новиков ДК, Новиков ПД, Янченко ВВ. Методы определения Т- и В-лимфоцитов диагностикумами на основе моноклональных антител (инструкция на метод). Иммунопатология, Аллергология, Инфектология. 2000;(2):31-33. http://www.immunopathology.com/ru/article.php?carticle=449
  14. Xu H, Zou J, Ye X, Han J, Gao L, Luo S, Wang J, Huang C, Yan X, Dai H. Impacts of clinical pharmacist intervention on the secondary prevention of coronary heart disease: a randomized controlled clinical study. Front Pharmacol. 2019 Oct 8;10:1112. doi: 10.3389/fphar.2019.01112. eCollection 2019.
  15. Backus BE, Six AJ, Kelder JH, Gibler WB, Moll FL, Doevendans PA. Risk scores for patients with chest pain: evaluation in the emergency department. Curr Cardiol Rev. 2011 Feb;7(1):2-8. doi: 10.2174/157340311795677662
Адрес для корреспонденции:
210009, Республика Беларусь,
г. Витебск, пр. Фрунзе, д. 27,
Витебский государственный
медицинский университет,
кафедра внутренних болезней,
тел. моб.: +375 29 515-80-15,
e-mail: prudnikov92@yandex.ru,
Прудников Александр Русланович
Cведения об авторах:
Прудников Александр Русланович, ассистент кафедры внутренних болезней, Витебский государственный медицинский университет, г. Витебск, Республика Беларусь.
https://orcid.org/0000-0001-9458-0867
Щупакова Алина Николаевна, д.м.н., профессор кафедры внутренних болезней, Витебский государственный медицинский университет, г. Витебск, Республика Беларусь.
https://orcid.org/0000-0003-1285-7709
Коробов Геннадий Дмитриевич, к.м.н., доцент учебного центра практической подготовки и симуляционного обучения, Витебский государственный университет, г. Витебск, Республика Беларусь.
https://orcid.org/0000-0001-6878-7573
DOI: https://dx.doi.org/10.18484/2305-0047.2020.4.387   |  

Е.В. МУШЕHКО 1, 2, Ю.В. АВДОСЬЕВ 1, А.М.ТИЩЕHКО 1, Р.М. СМАЧИЛО 1, 2, Ю.В. ИВАHОВА 2

ХИРУРГИЧЕСКОЕ ЛЕЧЕHИЕ ВИСЦЕРАЛЬHЫХ ПСЕВДОАHЕВРИЗМ

Институт общей и неотложной хирургии им. В.Т. Зайцева НАМН Украины 1,
Харьковский национальный медицинский университет 2, г. Харьков,
Украина

Цель. Оптимизация хирургической тактики при висцеральных псевдоаневризмах путем использования индивидуализированной тактики лечения, а также применения комбинированных методов их оперативного лечения.
Материал и методы. В исследование включены 35 пациентов с висцеральными псевдоаневризмами. Локализация в селезеночной артерии выявлена у 20 человек (57,2%), в общей печеночной артерии – у 8 пациентов (22,8%), в верхней или нижней панкреатодуоденальной артерий – в 5 наблюдениях (14,3%), в верхней брыжеечной артерии – в 2 случаях (5,7%). Асимптомное течение отмечено у 17 пациентов (48,6%), в то время как у остальных 18 человек (51,4%) отмечено симптомное течение заболевания. Для диагностики локализации псевдоаневризм использованы традиционные методы медицинской визуализации, а также ангиография, которая использована в качестве лечебно-диагностической процедуры.
Результаты. Полный технический успех эндоваскулярных вмешательств был достигнут у 20 пациентов (57,1%), частичный – в 15 наблюдениях (42,9%), что потребовало применения комбинированных вмешательств. Отсутствие технического успеха рентгенхирургических операций было связано с невозможностью внутрисосудистого доступа к поврежденной артерии либо артериям, питающим псевдоаневризму, к ее шейке, сомнением в кровоснабжении органов, которые питает поврежденная артерия, после ее эндоваскулярной окклюзии, а также большими размерами псевдоаневризмы. Частичным успехом в этом случае считали уменьшение интенсивности кровотечения либо временный гемостаз, которые позволяли выполнить вмешательство из традиционного доступа. Осложнения отмечены у 12 пациентов (34,3%) указанной группы. При этом тяжелые осложнения выявлены у 6 человек (17,1%). Летальность составила 11,4%.
Заключение. Эндоваскулярные вмешательства должны рассматриваться в качестве опции первой линии хирургического лечения пациентов с висцеральными псевдоаневризмами. При техническом неуспехе или частичном техническом успехе комбинированное оперативное пособие с применением рентгенэндохирургической техники и традиционного оперативного вмешательства позволяет добиться приемлемых результатов лечения данной категории пациентов.

Ключевые слова: висцеральные псевдоаневризмы, кровотечение, интервенционная радиология, ангиография, рентгенэндоваскулярное лечение, комбинированные о
с. 387-395 оригинального издания
Список литературы
  1. Ruhnke H, Kröncke TJ. Visceral Artery Aneurysms and pseudoaneurysms: retrospective analysis of interventional endovascular therapy of 43 aneurysms. Rofo. 2017 Jul;189(7):632-39. doi: 10.1055/s-0043-107239
  2. Abdelgabar A, d’Archambeau O, Maes J, Van den Brande F, Cools P, Rutsaert RR. Visceral artery pseudoaneurysms: two case reports and a review of the literature. J Med Case Rep. 2017 May 4;11(1):126. doi: 10.1186/s13256-017-1291-6
  3. Zabicki B, Limphaibool N, Holstad MJV, Juszkat R. Endovascular management of pancreatitis-related pseudoaneurysms: A review of techniques. PLoS One. 2018 Jan 29;13(1):e0191998. doi: 10.1371/journal.pone.0191998 eCollection 2018
  4. Schatz RA, Schabel S, Rockey DC. Idiopathic splenic artery pseudoaneurysm rupture as an uncommon cause of hemorrhagic shock. J Investig Med High Impact Case Rep. 2015 Apr 13;3(2):2324709615577816. doi: 10.1177/2324709615577816. eCollection 2015 Apr-Jun.
  5. Awada Z, Al Moussawi H, Alsheikh M. Gastroduodenal Artery Pseudoaneurysm Rupture Post-Billroth II Surgery: Case Report. Cureus. 2019 Jan;11(1):e3833. doi: 10.7759/cureus.3833
  6. Gamanagatti S, Thingujam U, Garg P, Nongthombam S, Dash NR. Endoscopic ultrasound guided thrombin injection of angiographically occult pancreatitis associated visceral artery pseudoaneurysms: Case series. World J Gastrointest Endosc. 2015 Sep 25;7(13):1107-13. doi: 10.4253/wjge.v7.i13.1107
  7. Varrassi M, Izzo A, Carducci S, Giordano AV, Masciocchi C. Acute-phase endovascular management of an uncommon bleeding peripancreatic pseudoaneurysm. J Radiol Case Rep. 2018 May 31;12(5):12-18. doi: 10.3941/jrcr.v12i5.3285 eCollection 2018 May.
  8. Dindo D, Demartines N, Clavien PA. Classification of surgical complications: a new proposal with evaluation in a cohort of 6336 patients and results of a survey. Ann Surg. 2004 Aug;240(2):205-13. doi: 10.1097/01.sla.0000133083.54934.ae
  9. Guirgis M, Xu JH, Kaard A, Mwipatayi BP. Spontaneous superior mesenteric artery branch pseudoaneurysm: a rare case report. EJVES Short Rep. 2017 Oct 12;37:1-4. doi: 10.1016/j.ejvssr.2017.09.001. eCollection 2017.
  10. Eftimie MA, Stanciulea OM, David L, Lungu V, Dima S, Mosteanu I, Tirca L, Popescu I. Surgical treatment of splenic artery pseudoaneurysm with digestive tract communication – presentation of two cases. Chirurgia (Bucur). 2017 Mar-Apr;112(2):157-64. doi: 10.21614/chirurgia.112.2.157
  11. Hewgley WP, Webb DL, Garrett HE Jr1. Migrated embolization coil causes intestinal obstruction. J Vasc Surg Cases Innov Tech. 2017 Dec 27;4(1):8-11. doi: 10.1016/j.jvscit.2017.11.001. eCollection 2018 Mar.
  12. Rebonato A, Maiettini D, Krokidis M, Graziosi L, Rossi M. Late migration of a covered stent into the stomach after repair of a splenic artery. J Radiol Case Rep. 2016 Feb;10(2):26-32. doi: 10.3941/jrcr.v10i2.2620
  13. Branchi V, Meyer C, Verrel F, Kania A, Bolke E, Semaan A, Koscielny A, Kalff JC, Matthaei H. Visceral artery aneurysms: evolving interdisciplinary management and future role of the abdominal surgeon. Eur J Med Res. 2019;24:17-26. doi: 10.1186/s40001-019-0374-9
Адрес для корреспонденции:
61018, Украина,
г. Харьков, въезд Балакирева, д. 1,
Институт общей и неотложной хирургии
им. В.Т. Зайцева НАМН Украины,
отделение хирургии печени
и желчевыводящих путей,
тел.: +380 67 575-63-75,
e-mail: dr.mushenko@gmail.com,
Мушенко Евгений Владимирович
Cведения об авторах:
Мушенко Евгений Владимирович, к.м.н., старший научный сотрудник отделения хирургии печени и желчевыводящих путей, Институт общей и неотложной хирургии им. В.Т. Зайцева НАМН Украины, ассистент кафедры хирургии № 1, Харьковский национальный медицинский университет, г. Харьков, Украина.
https://orcid.org/0000-0003-0244-3289
Авдосьев Юрий Владимирович, д.м.н., заведующий рентгенхирургическим отделением, Институт общей и неотложной хирургии им. В.Т. Зайцева НАМН Украины, г. Харьков, Украина.
http://orcid.org/0000-0002-2677-4464
Тищенко Александр Михайлович, д.м.н., профессор, старший научный сотрудник отделения хирургии печени и желчевыводящих путей, Институт общей и неотложной хирургии им. В.Т. Зайцева НАМН Украины, г. Харьков, Украина.
https://orcid.org/0000-0002-3894-1100
Смачило Ростислав Михайлович, д.м.н., профессор, заведующий отделением хирургии печени и желчевыводящих путей, Институт общей и неотложной хирургии НАМН Украины, профессор кафедры хирургии №1, Харьковский национальный медицинский университет, г. Харьков, Украина.
https://orcid.org/0000-0003-1237-0255
Иванова Юлия Викторовна, д.м.н., профессор кафедры хирургии № 1, Харьковский национальный медицинский университет, г. Харьков, Украина.
https://orcid.org/0000-0001-8773-6827

ТРАВМАТОЛОГИЯ И ОРТОПЕДИЯ

DOI: https://dx.doi.org/10.18484/2305-0047.2020.4.396   |  

В.Г. БАРСУКОВ 1, В.П. ДЕЙКАЛО 2, А.Е. ГОРБАЧЕВ 3, Г.А. КОШМАH 4

БИОМЕХАHИЧЕСКИЙ АHАЛИЗ ВЕРТЕЛЬHОЙ ВАЛЬГИЗИРУЮЩЕЙ ОСТЕОТОМИИ БЕДРЕHHОЙ КОСТИ ПРИ ТРАHСЦЕРВИКАЛЬHЫХ ПЕРЕЛОМАХ

Гродненский государственный университет имени Янки Купалы 1, г. Гродно,
Витебский государственный медицинский университет 2, г. Витебск,
Гродненская клиническая больница скорой медицинской помощи 3,
Гродненский государственный медицинский университет 4, г. Гродно,
Республика Беларусь

Цель. Изучить влияние углов поворота клиновидно резецированного фрагмента кости проксимального отдела бедра при вальгизирующей вертельной остеотомии, диаметра бедренной кости в зоне остеотомии на изменение биомеханики тазобедренного сустава с использованием методов математического моделирования.
Материал и методы. Объектом исследования является хирургическая операция вертельной вальгизирующей остеотомии бедренной кости. Разработана и использована методика математического моделирования изменения осевых нагрузок и изгибающего момента, действующих на проксимальный отдел и диафиз бедренной кости, а также величины вертикального и горизонтального перемещений центра головки и точек опорной поверхности при вальгизирующей вертельной остеотомии проксимального отдела бедренной кости.
Результаты. С использованием разработанных методик математического моделирования биомеханических аспектов вальгизирующей остеотомии получены аналитические зависимости, позволяющие выполнять расчеты сжимающих и изгибающих нагрузок, действующих на проксимальный отдел и диафизарную часть бедренной кости, а также величины вертикального и горизонтального перемещений центра головки и точек опорной поверхности при вальгизирующей вертельной остеотомии проксимального отдела бедренной кости. Рассчитаны изменения силовых и кинематических биомеханических параметров бедренной кости для широкого диапазона углов поворота проксимального отдела бедра и наиболее часто встречающихся на практике значений характерных размеров (диаметра бедренной кости, расстояния от центра вертела до центра головки). Показано, что горизонтальное перемещение центра головки и точек опорной поверхности создает более благоприятные биомеханические условия в зоне нестабильного перелома и диафиза бедренной кости. Неблагоприятное смещение опорной поверхности в вертикальной плоскости, которое приводит к удлинению оперированной конечности, можно нивелировать путем резекции фрагмента бедренной кости клиновидной формы.
Заключение. Разработанная методика и полученные на ее основе результаты математического моделирования позволяют выполнять рациональное предоперационное планирование вальгизирующей вертельной остеотомии бедра.

Ключевые слова: биомеханический анализ, вальгизирующая вертельная остеотомия, проксимальный отдел бедренной кости, головка бедра, угол поворота, диаметр
с. 396-403 оригинального издания
Список литературы
  1. Manninger J, Bosch U, Cserháti P, Fekete K, Kazár G. Internal fixation of femoral neck fractures. An atlas. Vienna: Springer; 2007. 312 p. doi.org/10.1007/978-3-211-68585-3
  2. Said GZ, Farouk O, Said HG. Valgus intertrochanteric osteotomy with single-angled 130° plate fixation for fractures and non-unions of the femoral neck. Int Orthop. 2010 Dec;34(8):1291-95. doi: 10.1007/s00264-009-0885-z
  3. Kuzyk PRT, Angelini M, Waddell JP, McKee MD, Schemitsch EH. Surgical techniques for the management of proximal femoral fracture nonunions. Oper. Tech Orthop. 2008 Apr;18(2):114-20. doi: 10.1053/j.oto.2008.10.001
  4. Gavaskar AS, Srinivasan P, Jeyakumar B, Raj RV. Valgus intertrochanteric osteotomy for femur neck pseudoarthrosis: a simple solution to a complex problem that has stood the test of time. Int Orthop. 2020 Apr;44(4):635-43. doi: 10.1007/s00264-019-04353-7
  5. Varghese VD, Livingston A, Boopalan PR, Jepegnanam TS. Valgus osteotomy for nonunion and neglected neck of femur fractures. World J Orthop. 2016 May 18;7(5):301-7. doi: 10.5312/wjo.v7.i5.301
  6. Karev DB, Barsukov VG. Biomechanical analysis of тwo point asymmetric screw fiхation with implant for femoral neck fracture. Acta Mechanica et Automatica. 2012;6(4):19-22.
Адрес для корреспонденции:
230015, Республика Беларусь,
г. Гродно, ул. Курчатова, 1 а,
Гродненский государственный
университет имени Янки Купалы,
кафедра технической механики,
тел.: 8 (0152) 41-08-73,
e-mail: v.g.barsukov@grsu.by,
Барсуков Владимир Георгиевич
Cведения об авторах:
Барсуков Владимир Георгиевич, д.тех.н., доцент, заведующий кафедрой технической механики, Гродненский государственный университет имени Янки Купалы, г. Гродно, Республика Беларусь.
https://orcid.org/0000-0001-5490-9293
Дейкало Валерий Петрович, д.м.н., профессор кафедры травматологии, ортопедии и ВПХ, Витебский государственный медицинский университет, г. Витебск, Республика Беларусь.
https://orcid.org/0000-0001-7768-3696
Горбачев Александр Евгеньевич, врач высшей категории ортопедо-травматологического отделения № 1, Гродненская клиническая больница скорой медицинской помощи, г. Гродно, Республика Беларусь.
https://orcid.org/0000-0002-5651-0005
Кошман Геннадий Алексеевич, к.м.н., старший преподаватель кафедры травматологии, ортопедии и военно-полевой хирургии, Гродненский государственный медицинский университет, г. Гродно, Республика Беларусь.
https://orcid.org/0000-0001-7451-1282

ДЕТСКАЯ ХИРУРГИЯ

DOI: https://dx.doi.org/10.18484/2305-0047.2020.4.404   |  

М.А. АКСЕЛЬРОВ 1, 2, С.М. ПАHТЕЛЕЕВ 1, А.В. СТОЛЯР 2, А.В. МАРГАРЯH 1, Л.В. ВИХАРЕВА 1

КЛИHИЧЕСКАЯ АHАТОМИЯ, ТИПЫ КОСЫХ ВРОЖДЕHHЫХ ПАХОВЫХ ГРЫЖ И ОСОБЕHHОСТИ ИХ ЛАПАРОСКОПИЧЕСКОЙ ГЕРHИОРАФИИ

Тюменский государственный медицинский университет 1,
Областная клиническая больница № 2 2, г. Тюмень,
Российская Федерация

Цель. Оптимизировать операцию внебрюшинной герниорафии у детей методом LASSO, путем индивидуального подхода к проведению лигатуры в зависимости от анатомического типа внутреннего пахового кольца, выявленного при диагностической лапароскопии.
Материал и методы. Проанализированы истории болезней 350 детей за период с января 2018 по май 2019 года. Мальчиков было 256 (73,1%), девочек 94 (26,9%). Возраст детей варьировал от 1 до 204 месяцев. В качестве метода операции у всех пациентов применялась модифицированная методика LASSO. Ее суть заключалась в применении оригинального устройства для осуществления экстракорпорального лигирования внутреннего пахового кольца. Ретроспективно были оценены непосредственные интраоперационные данные, такие как тип пахового кольца и длительность операции.
Результаты. У 350 пациентов выявлено 545 паховых колец справа и слева (с учетом одно- и двусторонней паховой грыжи). Выделено пять типов колец: тип 1 – щелевидное; тип 2а – треугольное, без складок брюшины; тип 2б – треугольное, со складками брюшины; тип 3а – овальное, без складок брюшины; тип 3б – овальное, со складками брюшины.
Наиболее часто встречалось кольцо типа 3а – 246 колец. Наиболее редко кольцо типа 2б – 45 колец. Постановка дополнительного манипулятора осуществлялась в 33 случаях, причем в 22 из них имело место кольцо типа 3б. У этих 22 пациентов (24 паховых кольца) получено сокращение средней длительности операции с 39,6±5,8 мин до 20±5,8 мин.
Заключение. При лапароскопическом лечении паховой грыжи необходимо учитывать визуальную структуру внутреннего пахового кольца. Всего их существует пять типов: 1, 2а, 2б, 3а, 3б. При выявлении пахового кольца типа 3б требуется постановка дополнительного троакара для манипулятора, что облегчает внебрюшинное проведение лигатуры и существенно сокращает длительность вмешательства.

Ключевые слова: паховая грыжа, дети, внутреннее паховое кольцо, паховая область, лапароскопическое грыжесечение, детская хирургия
с. 404-412 оригинального издания
Список литературы
  1. Умешов АУ. Некоторые особенности лечения паховых грыж у детей. Вестн АГИУВ. 2011;(2):67–69. https://cyberleninka.ru/article/n/nekotorye-osobennosti-lecheniya-pahovyh-gryzh-u-detey
  2. Takehara H, Ishibashi H, Satoh H, Fukuyama T, Iwata T, Tashiro S. Laparoscopic surgery for inguinal lesions of pediatric patients. In: Proceedings of the 7th World Congress of Endoscopic Surgery; Singapore, June 1-4, 2000. р. 537-42.
  3. Esposito C, St Peter SD, Escolino M, Juang D, Settimi A, Holcomb GW 3rd. Laparoscopic versus open inguinal hernia repair in pediatric patients: a systematic review. J Laparoendosc Adv Surg Tech A. 2014 Nov;24(11):811-18. doi: 10.1089/lap.2014.0194
  4. Draus JM, Kamel S, Seims A, Rescorla FJ. The role of laparoscopic evaluation to detect a contralateral defect at initial presentation for inguinal hernia repair. Am Surg. 2011 Nov;77(11):1463-66. doi: 10.1177/000313481107701134
  5. Shalaby R, Ismail M, Samaha A, Yehya A, Ibrahem R, Gouda S, Helal A, Alsamahy O. Laparoscopic inguinal hernia repair; experience with 874 children. J Pediatr Surg. 2014 Mar;49(3):460-64. doi: 10.1016/j.jpedsurg.2013.10.019
  6. Спахи ОВ, Копылов ЕП, Пахольчук АП. Лапароскопическое лечение паховых грыж у детей. Медицина Неотлож Состояний. 2016;(1):84-87. http://www.mif-ua.com/archive/article/42349
  7. Kimura T, Yamauchi K, Ihara Y, Sawai T, Kosumi T, Yonekura T. Single-site laparoscopic herniorrhaphy using needle instruments for inguinal hernias in children: a novel technique. Surg Today. 2012 Jan;42(1):100-3. doi: 10.1007/s00595-011-0020-9.
  8. Стальмахович ВН. Выбор рационального способа лечения паховых грыж у детей. Сиб Мед Журн (Иркутск). 2001;24(1):50-52. https://cyberleninka.ru/article/n/vybor-ratsionalnogo-sposoba-lecheniya-pahovyh-gryzh-u-detey
  9. Козлов ЮА, Новожилов ВА, Распутин АА, Ковальков КА, Чубко ДМ, Барадиева ПЖ, Звонков ДА, Тимофеев АД, Очиров ЧБ, Распутина НВ, Ус ГП, Кузнецова НН. Лечение паховых грыж у детей: обзор лапароскопических методов, или история «крючков и игл». Эндоскоп Хирургия. 2017;23(1):33-43. doi: 10.17116/endoskop201723133-43
  10. Ibrahim MM. Two ports laparoscopic inguinal hernia repair in children. Minim Invasive Surg. 2015;2015:821680. Published online 2015 Feb 16. doi: 10.1155/2015/821680
  11. Helal AA. Laparoscopic single instrument closure of inguinal hernia in female children: A novel technique. J Pediatr Surg. 2015 Sep;50(9):1613-16. doi: 10.1016/j.jpedsurg.2015.05.003
  12. Li S, Li M, Wong KK, Liu L, Tam PK. Laparoscopically assisted simple suturing obliteration (LASSO) of the internal ring using an epidural needle: a handy single-port laparoscopic herniorrhaphy in children. J Pediatr Surg. 2014 Dec;49(12):1818-20. doi: 10.1016/j.jpedsurg.2014.09.027
  13. Козлов ЮА, Новожилов ВА, Распутин АА, Краснов ПА. Технология единого лапароскопического доступа в лечении паховых грыж у детей раннего возраста. Анналы Хирургии. 2013;(6):31-37. https://elibrary.ru/item.asp?id=21474770
  14. Столяр АВ, Аксельров МА, Сахаров СП. Врожденная паховая грыжа – как оперировать? Мед Наука и Образование Урала. 2016;17(2):111-15. https://elibrary.ru/item.asp?id=26283619
Адрес для корреспонденции:
625027, Российская Федерация,
Тюменская область, г. Тюмень,
ул. Мельникайте, 75, корпус 2,
Областная клиническая больница №2 ,
хирургическое отделение № 1,
тел.: +7 92 22 67 52 92,
e-mail: stolyar.al@yandex.ru,
Столяр Александр Владимирович
Cведения об авторах:
Аксельров Михаил Александрович, д.м.н., заведующий кафедрой детской хирургии, Тюменский государственный медицинский университет, заведующий детским хирургическим отделением № 1, Областная клиническая больница № 2, г. Тюмень, Российская Федерация.
https://orcid.org/0000-0001-6814-8894
Пантелеев Сергей Михайлович, д.м.н., профессор, заведующий кафедрой анатомии человека, топографической анатомии и оперативной хирургии, Тюменский государственный медицинский университет, г. Тюмень, Российская Федерация.
https://orcid.org/0000-0002-3006-6620
Столяр Александр Владимирович, врач детский хирург, детское хирургическое отделение № 1, Областная клиническая больница № 2, г. Тюмень, Российская Федерация.
https://orcid.org/0000-0002-0704-5418
Маргарян Артур Ванушович, д.м.н., профессор кафедры анатомии человека, топографической анатомии и оперативной хирургии, Тюменский государственный медицинский университет, г. Тюмень, Российская Федерация.
https://orcid.org/0000-0003-3497-8157
Вихарева Лариса Владимировна, д.м.н., профессор, профессор кафедры анатомии человека, топографической анатомии и оперативной хирургии, Тюменский государственный медицинский университет, г. Тюмень, Российская Федерация.
https://orcid.org/0000-0001-6864-4417

АHЕСТЕЗИОЛОГИЯ-РЕАHИМАТОЛОГИЯ

DOI: https://dx.doi.org/10.18484/2305-0047.2020.4.412   |  

В.Г. ПЕЧЕРСКИЙ 1, 2, Л.В. МУЗЫКА 1

СРАВHЕHИЕ ЭФФЕКТИВHОСТИ ПРИМЕHЕHИЯ БУПИВАКАИHА И ЛЕВОБУПИВАКАИHА ДЛЯ СПИHАЛЬHОЙ АHЕСТЕЗИИ ПРИ ОПЕРАЦИЯХ HА HИЖHИХ КОHЕЧHОСТЯХ

Могилёвская областная больница 1, г. Могилёв,
Витебский государственный медицинский университет 2, г. Витебск,
Республика Беларусь

Цель. Оценить эффективность бупивакаина и левобупивакаина для спинальной анестезии при операциях на нижних конечностях.
Материал и методы. Показания для анестезии – оперативное вмешательство на тазобедренном суставе, бедре, коленном суставе. Пациенты были случайным образом распределены на две группы: в 1-й группе (1Б) спинальную анестезию выполняли 3 мл 0,5% бупивакаина (38 пациентов); во 2-й группе (2Л) – 3 мл 0,5% левобупивакаина (38 пациентов). Интратекальные инъекции выполнялись иглой типа «Pencil point» калибром 24 G или 25 G в межпозвонковом промежутке L3-L4. Спинальная пункция выполнялась в положении пациента сидя на столе. Первичной конечной точкой была необходимость перехода на другой вид обезболивания, либо необходимость в дополнительном использовании наркотических анальгетиков, либо применение местной анестезии в начале или в процессе операции.
Результаты. У 6 пациентов (15,7%) группы 2Л во время операции возникла необходимость купирования болевого синдрома наркотическими анальгетиками (фентанил) интраоперационно либо применения местной анестезии. Получены достоверные отличия между группами в необходимости дополнительного интраоперационного обезболивания: р<0,05.
У всех пациентов группы 1Б развился полный сенсорный блок в течение 4 (3; 5) мин. В группе 2Л полный сенсорный блок развился у 34 пациентов (89,4%) в течение 9 (5; 14) мин, получены статистически значимые различия между группами, р<0,05 (p=0,000001).
Длительность периода аналгезии между группами статистически не отличалась и составила в 1Б группе 242 (212; 270) мин, в 2Л группе 250 (204; 288) минут, р>0,05.
Заключение. Исследование определило 84,3% эффективность левобупивакаина в сравнении с бупивакаином при интратекальном введении в равных объемах и количестве. Дальнейшие исследования с большим количеством пациентов необходимы, чтобы определиться, может ли левобупивакаин быть равным бупивакаину по своей эффективности.

Ключевые слова: спинальная анестезия, левобупивакаин, бупивакаин, интратекальное введение, эффективность
с. 412-417 оригинального издания
Список литературы
  1. Foster RH, Markham A. Levobupivacaine: a review of its pharmacology and use as a local anaesthetic. Drugs. 2000 Mar;59(3):551-79. doi: 10.2165/00003495-200059030-00013
  2. del-Rio-Vellosillo M, Garcia-Medina JJ, Abengochea-Cotaina A, Pinazo-Duran MD, Barbera-Alacreu M. Spinal anesthesia for knee arthroscopy using isobaric bupivacaine and levobupivacaine: anesthetic and neuroophthalmological assessment. Biomed Res Int. 2014;2014:349034, 7p. doi: 10.1155/2014/349034
  3. Glaser C, Marhofer P, Zimpfer G, Heinz MT, Sitzwohl C, Kapral S, Schindler I. Levobupivacaine versus racemic bupivacaine for spinal anesthesia. Anesth Analg. 2002 Jan;94(1):194-98, table of contents. doi: 10.1097/00000539-200201000-00037
  4. Alley EA, Kopacz DJ, McDonald SB, Liu SS. Hyperbaric spinal levobupivacaine: a comparison to racemic bupivacaine in volunteers. Anesth Analg. 2002 Jan;94(1):188-93, table of contents. doi: 10.1097/00000539-200201000-00036
  5. Burke D, Kennedy S, Bannister J. Spinal anesthesia with 0.5% S(-)-bupivacaine for elective lower limb surgery. Reg Anesth Pain Med. 1999 Nov-Dec;24(6):519-23. doi: 10.1016/s1098-7339(99)90042-1
  6. Fattorini F, Ricci Z, Rocco A, Romano R, Pascarella MA, Pinto G. Levobupivacaine versus racemic bupivacaine for spinal anaesthesia in orthopaedic major surgery. Minerva Anestesiol. 2006 Jul-Aug;72(7-8):637-44. https://www.minervamedica.it/en/journals/minerva-anestesiologica/article.php?cod=R02Y2006N07A0637 [Article in English, Italian]
  7. Gautier P, De Kock M, Huberty L, Demir T, Izydorczic M, Vanderick B. Comparison of the effects of intrathecal ropivacaine, levobupivacaine, and bupivacaine for Caesarean section. Br J Anaesth. 2003 Nov;91(5):684-89. doi: 10.1093/bja/aeg251
  8. Singh A, Gupta A, Datta PK, Pandey M. Intrathecal levobupivacaine versus bupivacaine for inguinal hernia surgery: a randomized controlled trial. Korean J Anesthesiol. 2018 Jun;71(3):220-25. doi: 10.4097/kja.d.18.27191
  9. Dizman S, Turker G, Gurbet A, Mogol EB, Turkcan S, Karakuzu Z. Comparison of two different doses of intrathecal levobupivacaine for transurethral endoscopic surgery. Eurasian J Med. 2011 Aug;43(2):103-8. doi: 10.5152/eajm.2011.23
  10. Attri JP, Kaur G, Kaur S, Kaur R, Mohan B, Kashyap K. Comparison of levobupivacaine and levobupivacaine with fentanyl in infraumbilical surgeries under spinal anaesthesia. Anesth Essays Res. 2015 May-Aug;9(2):178-84. doi: 10.4103/0259-1162.152148
  11. Şahin AS, Türker G, Bekar A, Bilgin H, Korfali G. A comparison of spinal anesthesia characteristics following intrathecal bupivacaine or levobupivacaine in lumbar disc surgery. Eur Spine J. 2014 Mar;23(3):695-700. Published online 2013 Nov 9. doi: 10.1007/s00586-013-3082-0
  12. Elsharkawy RA, Messeha MM, Elgeidi AA. The influence of different degrees of temperature of intrathecal levobupivacaine on spinal block characteristics in orthopedic surgeries: a prospective randomized study. Anesth Essays Res. 2019 Jul-Sep;13(3):509-14. doi: 10.4103/aer.AER_76_19
  13. Ngan Kee WD, Ng FF, Khaw KS, Tang SPY, Koo AGP. Dose-response curves for intrathecal bupivacaine, levobupivacaine, and ropivacaine given for labor analgesia in nulliparous women. Reg Anesth Pain Med. 2017 Nov/Dec;42(6):788-792. doi: 10.1097/AAP.0000000000000657
  14. Lv BS, Wang W, Wang ZQ, Wang XW, Wang JH, Fang F, Mi WD. Efficacy and safety of local anesthetics bupivacaine, ropivacaine and levobupivacaine in combination with sufentanil in epidural anesthesia for labor and delivery: a meta-analysis. Curr Med Res Opin. 2014 Nov;30(11):2279-89. doi: 10.1185/03007995.2014.946127
Адрес для корреспонденции:
212026, Республика Беларусь,
г. Могилёв, ул. Б.-Бирули, д. 12,
Могилёвская областная больница,
отделение анестезиологии и реанимации,
e-mail: pechersky.v@yandex.ru,
Печерский Валерий Геннадьевич
Cведения об авторах:
Печерский Валерий Геннадьевич, к.м.н., заведующий отделением анестезиологии и реанимации, Могилёвская областная больница, преподаватель-стажёр филиала кафедры анестезиологии и реаниматологии с курсом ФПК и ПК и хирургии с курсом ФПК и ПК, Витебский государственный медицинский университет, г. Могилев, Республика Беларусь.
https://orcid.org/0000-0002-6237-8063
Музыка Лидия Валерьевна, врач-анестезиолог-реаниматолог, отделение анестезиологии и реанимации, Могилёвская областная больница г. Могилев, Республика Беларусь.
http://orcid.org/0000-0003-4546-3300

ОБЗОРЫ

DOI: https://dx.doi.org/10.18484/2305-0047.2020.4.418   |  

Р.Е. КАЛИHИH, И.А. СУЧКОВ, Э.А. КЛИМЕHТОВА, А.А. ЕГОРОВ

К ВОПРОСУ О РОЛИ АПОПТОЗА В РАЗВИТИИ АТЕРОСКЛЕРОЗА И РЕСТЕHОЗА ЗОHЫ РЕКОHСТРУКЦИИ

Рязанский государственный медицинский университет, г. Рязань,
Российская Федерация

Апоптоз представляет собой модель генетически запрограммированной гибели клеток и основной механизм, с помощью которого ткань удаляет ненужные или поврежденные клетки. Как в физиологических, так и в патофизиологических условиях различные факторы, включая механические силы, активные формы кислорода и азота, цитокины, окисленные липопротеины, могут влиять на апоптоз сосудистых клеток. Сигнальный путь гибели Fas / Fas-лиганда / каспазы, семейство белков Bcl-2 / митохондрии, ген супрессии опухоли p53 и протоонкоген c-myc могут активироваться в атеросклеротических поражениях и опосредовать гибель клеток во время развития атеросклероза. Аномальная экспрессия и дисфункция этих генов, регулирующих апоптоз, могут ослаблять или ускорять гибель сосудистых клеток и влиять на целостность и стабильность атеросклеротических бляшек. Выяснение молекулярного механизма, который регулирует клеточную гибель, может помочь разработать новую стратегию лечения атеросклероза и таких осложнений, как рестеноз зоны реконструкции. На сегодняшний день до конца остается неясна роль показателей апоптоза в развитии атеросклероза и его основных осложнений. Требуется дальнейшее изучение данной проблемы для более глубокого понимая патогенеза атеросклероза и рестеноза зоны реконструкции и разработки эффективных методов лечения.

Ключевые слова: апоптоз, рестеноз, атеросклероз, белки Bcl-2, каспазы
с. 418-427 оригинального издания
Список литературы
  1. Папоян СА, Щеголев АА, Радченко АН, Громов ДГ, Мутаев ММ, Сазонов МЮ, Ишевский АГ. Отдаленные результаты эндоваскулярного лечения поражений поверхностной бедренной артерии типов С и D по классификации TASC II. Ангиология и Сосуд Хирургия. 2018;24(1):73-77. https://cyberleninka.ru/article/n/otdalennye-rezultaty-endovaskulyarnogo-lecheniya-porazheniya-poverhnostnoy-bedrennoy-arterii
  2. Roh JW, Ko YG, Ahn CM, Hong SJ, Shin DH, Kim JS, Kim BK, Choi D, Hong MK, Jang Y. Risk factors for restenosis after drug-coated balloon angioplasty for complex femoropopliteal arterial occlusive disease. Ann Vasc Surg. 2019 Feb;55:45-54. doi: 10.1016/j.avsg.2018.06.015
  3. Zhou Y, Zhang Z, Lin S, Xiao J, Ai W, Wang J, Li Y, Li Q. Comparative Effectiveness of endovascular treatment modalities for de novo femoropopliteal lesions: a network meta-analysis of randomized controlled trials. J Endovasc Ther. 2020;27(1):42-59. doi: 10.1177/1526602819895996
  4. Choe N, Kwon DH, Shin S, Kim YS, Kim YK, Kim J, Ahn Y, Eom GH, Kook H. The microRNA miR-124 inhibits vascular smooth muscle cell proliferation by targeting S100 calcium-binding protein A4 (S100A4). FEBS Lett. 2017 Apr;591(7):1041-52. doi: 10.1002/1873-3468.12606
  5. Хавинсон ВХ, Линькова НС, Дудков АВ, Дятлова АС. Молекулярные маркеры каспаза-зависимого и митохондриального апоптоза: роль в развитии патологии и в процессах клеточного старения. Успехи Соврем Биологии. 2018;138(2):126-37. doi: 10.7868/S0042132418020023
  6. Григорьев МЮ, Имянитов ЕН, Хансон КП. Апоптоз в норме и патологии. Мед Акад Журн. 2003;3(3):3-11.
  7. Варга ОЮ, Рябков ВА. Апоптоз: понятие, механизмы реализации, значение. Экология Человека. 2006;(7):28-32. https://cyberleninka.ru/article/n/apoptoz-ponyatie-mehanizmy-realizatsii-znachenie
  8. Wang X, Guo Z, Ding Z, Mehta JL. Inflammation, Autophagy, and Apoptosis After Myocardial Infarction. J Am Heart Assoc. 2018 Apr 21;7(9). pii: e008024. doi: 10.1161/JAHA.117.008024
  9. Hockings C, Alsop AE, Fennell SC, Lee EF, Fairlie WD, Dewson G, Kluck RM. Mcl-1 and Bcl-xL sequestration of Bak confers differential resistance to BH3-only proteins. Cell Death Differ. 2018 Mar;25(4):721-34. doi: 10.1038/s41418-017-0010-6
  10. Alzate JM, Montoya-Florez LM, Pérez JE, Rocha NS, Pedraza-Ordonez FJ. The role of the multi-drug resistance 1, p53, b cell lymphoma 2, and bcl 2-associated X genes in the biologic behavior and chemotherapeutic resistance of canine transmissible venereal tumors. Vet Clin Pathol. 2019 Dec;48(4):730-39. doi: 10.1111/vcp.12805
  11. Рыжов СВ, Новиков ВВ. Молекулярные механизмы апоптотических процессов. Рос Биотерапевт Журн. 2002;1(1):27-33. https://cyberleninka.ru/article/n/molekulyarnye-mehanizmy-apoptoticheskih-protsessov
  12. Weber A, Paschen SA, Heger K, Wilfling F, Frankenberg T, Bauerschmitt H, Seiffert BM, Kirschnek S, Wagner H, Häcker G. BimS-induced apoptosis requires mitochondrial localization but not interaction with anti-apoptotic Bcl-2 proteins. J Cell Biol. 2007 May 21;177(4):625-36. doi: 10.1083/jcb.200610148
  13. Kutuk O, Basaga H. Bcl-2 protein family: implications in vascular apoptosis and atherosclerosis. Apoptosis. 2006 Oct;11(10):1661-75. doi: 10.1007/s10495-006-9402-7
  14. Fitzgerald TN, Shepherd BR, Asada H, Teso D, Muto A, Fancher T, Pimiento JM, Maloney SP, Dardik A. Laminar shear stress stimulates vascular smooth muscle cell apoptosis via the Akt pathway. J Cell Physiol. 2008 Aug;216(2):389-95. doi: 10.1002/jcp.21404
  15. Choi BM, Pae HO, Jang SI, Kim YM, Chung HT. Nitric oxide as a pro-apoptotic as well as anti-apoptotic modulator. J Biochem Mol Biol. 2002;35(1):116–126. doi: 10.5483/bmbrep.2002.35.1.116
  16. Chae IH, Park KW, Kim HS, Oh BH. Nitric oxide-induced apoptosis is mediated by Bax/Bcl-2 gene expression, transition of cytochrome c, and activation of caspase-3 in rat vascular smooth muscle cells. Clin Chim Acta. 2004 Mar;341(1-2):83-91. doi: 10.1016/j.cccn.2003.11.009
  17. Kockx MM, Knaapen MW. The role of apoptosis in vascular disease. J Pathol. 2000 Feb;190(3):267-80. doi: 10.1002/(SICI)1096-9896(200002)190:3<267::AID-PATH523>3.0.CO;2-A
  18. Saxena A, McMeekin JD, Thomson DJ. Expression of Bcl-x, Bcl-2, Bax, and Bak in endarterectomy and atherectomy specimens. J Pathol. 2002 Mar;196(3):335-42. doi: 10.1002/path.1040
  19. Chen F, Eriksson P, Kimura T, Herzfeld I, Valen G. Apoptosis and angiogenesis are induced in the unstable coronary atherosclerotic plaque. Coron Artery Dis. 2005 May;16(3):191-97. doi: 10.1097/00019501-200505000-00009
  20. Владимирская ТЭ, Швед ИА, Демидчик ЮЕ. Соотношение экспрессии белков Bcl-2 и Bax в стенке коронарных артерий, пораженных атеросклерозом. Изв Нац Акад Наук Беларуси. Сер. мед наук. 2015;(4):51-55. https://vestimed.belnauka.by/jour/article/view/213
  21. Miyashita T, Harigai M, Hanada M, Reed JC. Identification of a p53-dependent negative response element in the bcl-2 gene. Cancer Res. 1994 Jun 15;54(12):3131-35. https://cancerres.aacrjournals.org/content/canres/54/12/3131.full.pdf
  22. Speir E, Modali R, Huang ES, Leon MB, Shawl F, Finkel T, Epstein SE. Potential role of human cytomegalovirus and p53 interaction in coronary restenosis. Science. 1994 Jul 15;265(5170):391-94. doi: 10.1126/science.8023160
  23. Bennett MR, Evan GI, Schwartz SM. Apoptosis of rat vascular smooth muscle cells is regulated by p53-dependent and independent pathways. Circ Res.1995;77(2):266-73. doi: 10.1161/01.res.77.2.266
  24. Jacob T, Hingorani A, Ascher E. p53 gene therapy modulates signal transduction in the apoptotic and cell cycle pathways downregulating neointimal hyperplasia. Vasc Endovascular Surg. 2012 Jan;46(1):45-53. doi: 10.1177/1538574411422277
  25. Fanidi A, Harrington E, Evan G. Cooperative interaction between c -myc and bcl-2 proto-oncogenes. Nature.1992; 359:554-556. doi: 10.1038/359554a0
  26. De Feo M, Forte A, Onorati F, Renzulli A, Cipollaro M, Cotrufo M, Rossi F, Cascino A. Rat carotid arteriotomy: c-myc is involved in negative remodelling and apoptosis. J Cardiovasc Med (Hagerstown). 2006 Jan;7(1):61-67. doi: 10.2459/01.JCM.0000199779.92967.59
  27. Farrell KA, Withers SB, Holt CM. C-Myb function in the vessel wall. Front Biosci (Elite Ed). 2011 Jun 1;3:968-77. doi: 10.2741/e302
  28. Zhu ZR, He Q, Wu WB, Chang GQ, Yao C, Zhao Y, Wang M, Wang SM. MiR-140-3p is Involved in In-Stent Restenosis by Targeting C-Myb and BCL-2 in Peripheral Artery Disease. J Atheroscler Thromb. 2018 Nov 1;25(11):1168-1181. doi: 10.5551/jat.44024
  29. Lambert DL, Malik N, Shepherd L, Gunn J, Francis SE, King A, Crossman DC, Cumberland DC, Holt CM. Localization of c-Myb and induction of apoptosis by antisense oligonucleotide c-Myb after angioplasty of porcine coronary arteries. Arterioscler Thromb Vasc Biol. 2001 Nov;21(11):1727-32. doi: 10.1161/hq1101.098552
  30. Simons M, Edelman ER, DeKeyser JL, Langer R, Rosenberg RD. Antisense c-myb oligonucleotides inhibit intimal arterial smooth muscle cell accumulation in vivo. Nature. 1992 Sep 3;359(6390):67-70. doi: 10.1038/359067a0
  31. Guo X, Chen KH, Guo Y, Liao H, Tang J, Xiao RP. Mitofusin 2 triggers vascular smooth muscle cell apoptosis via mitochondrial death pathway. Circ Res. 2007 Nov 26;101(11):1113-22. doi: 10.1161/CIRCRESAHA.107.157644
  32. Chien KR, Hoshijima M. Unravelling Ras signals in cardiovascular disease. Nat Cell Biol. 2004 Sep;6(9):807-8. doi: 10.1038/ncb0904-807
  33. Калинин РЕ, Сучков ИА, Пшенников АС, Слепнев АА. Эффективность L-аргинина в лечении атеросклероза артерий нижних конечностей и профилактике рестеноза зоны реконструкции. Вестн Иван Мед Акад. 2013;18(2):18-21. https://cyberleninka.ru/article/n/effektivnost-l-arginina-v-lechenii-ateroskleroza-arteriy-nizhnih-konechnostey-i-profilaktike-restenoza-zony-rekonstruktsii
  34. Spiguel LR, Chandiwal A, Vosicky JE, Weichselbaum RR, Skelly CL. Concomitant proliferation and caspase-3 mediated apoptosis in response to low shear stress and balloon injury. J Surg Res. 2010 Jun 1;161(1):146-55. doi: 10.1016/j.jss.2008.11.001
  35. Kamenz J, Seibold W, Wohlfrom M, Hanke S, Heise N, Lenz C, Hanke H. Incidence of intimal proliferation and apoptosis following balloon angioplasty in an atherosclerotic rabbit model. Cardiovasc Res. 2000 Feb;45(3):766-76. doi: 10.1016/s0008-6363(99)00355-7
  36. Huang J, Yin H, Leng J, Yao Y, Yao R, Peng T, Li J. Evidence of apoptotic smooth muscle cells in proliferative intima of injured arteries. Chin Med J (Engl). 2000 Jan;113(1):10-13. doi: 10.3760/cma.j.issn.0366-6999.2000.01.103
  37. Perlman H, Maillard L, Krasinski K, Walsh K. Evidence for the rapid onset of apoptosis in medial smooth muscle cells after balloon injury. Circulation. 1997;95(4):981-87. doi: 10.1161/01.cir.95.4.981
  38. Bauriedel G, Schluckebier S, Hutter R, Welsch U, Kandolf R, Lüderitz B, Prescott MF. Apoptosis in restenosis versus stable-angina atherosclerosis: implications for the pathogenesis of restenosis. Arterioscler Thromb Vasc Biol. 1998 Jul;18(7):1132-39. doi: 10.1161/01.atv.18.7.1132
  39. Isner JM, Kearney M, Bortman S, Passeri J. Apoptosis in human atherosclerosis and restenosis. Circulation. 1995 Jun 1;91(11):2703-11. doi: 10.1161/01.cir.91.11.2703
  40. Durand E, Mallat Z, Addad F, Vilde F, Desnos M, Guérot C, Tedgui A, Lafont A. Time courses of apoptosis and cell proliferation and their relationship to arterial remodeling and restenosis after angioplasty in an atherosclerotic rabbit model. J Am Coll Cardiol. 2002 May 15;39(10):1680-85. doi: 10.1016/s0735-1097(02)01831-4
  41. Hassan AH, Lang IM, Ignatescu M, Ullrich R, Bonderman D, Wexberg P, Weidinger F, Glogar HD. Increased intimal apoptosis in coronary atherosclerotic vessel segments lacking compensatory enlargement. J Am Coll Cardiol. 2001 Nov 1;38(5):1333-39. doi: 10.1016/s0735-1097(01)01569-8
  42. Duran X, Vilahur G, Badimon L. Exogenous in vivo NO-donor treatment preserves p53 levels and protects vascular cells from apoptosis. Atherosclerosis. 2009 Jul;205(1):101-6. doi: 10.1016/j.atherosclerosis.2008.11.016
  43. Toumpoulis IK, Malamou-Mitsi VD, Michalis LK, Katsouras С, Gloustianou G, Galaris D, Bai M, Vardakas D, Agnantis N, Sideris DA. Apoptosis bcl-2 and nitrotyrosine expression in an angioplasty-restenosis rabbit: an experimental model. Int J Surg. 2007;5(4):260-66. doi: 10.1016/j.ijsu.2007.01.003
  44. Spiguel LR, Chandiwal A, Vosicky JE, Weichselbaum RR, Skelly CL. Concomitant proliferation and caspase-3 mediated apoptosis in response to low shear stress and balloon injury. J Surg Res. 2010 Jun 1;161(1):146-55. doi: 10.1016/j.jss.2008.11.001
  45. Shibata R, Kai H, Seki Y, Kato S, Wada Y, Hanakawa Y, Hashimoto K, Yoshimura A, Imaizumi T. Inhibition of STAT3 prevents neointima formation by inhibiting proliferation and promoting apoptosis of neointimal smooth muscle cells. Hum Gene Ther. 2003 May 1;14(7):601-10. doi: 10.1089/104303403321618128
  46. Zhao Z, Huang C, Wang J, Jiang H, Li J, Wang X. Effect of arsenic trioxide on inhibition of restenosis after rabbit vascular injury and its mechanism. Chin Med J (Engl). 2002 Nov;115(11):1608-14. https://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed/12609071
  47. Пшенников АС, Деев РВ. Морфологическая иллюстрация изменений артериального эндотелия на фоне ишемического и реперфузионного повреждений. Рос Мед-Биол Вестн им Акад ИП Павлова. 2018;26(2):184-94. doi: 10.23888/PAVLOVJ2018262184-194
  48. Walensky LD. BCL-2 in the crosshairs: tipping the balance of life and death. Cell Death Differ. 2006 Aug;13(8):1339-50. doi: 10.1038/sj.cdd.4401992
  49. Шпакова ВС, Гамбарян СП, Рукояткина НИ, Кривченко АИ. Высокоаффинный ингибитор белка BCL-XL активирует протеинкиназу А в тромбоцитах и блокирует их активацию. Рос Физиол Журн им ИМ Сеченова. 2018;104(9):1106-15. doi: 10.7868/S0869813918090095
Адрес для корреспонденции:
390026, Российская Федерация,
г. Рязань, ул. Высоковольтная, д. 9,
Рязанский государственный
медицинский университет,
кафедра сердечно-сосудистой,
рентгенэндоваскулярной, оперативной
хирургии и топографической анатомии,
тел.: +7 4912 46-08-03,
e-mail: Suchkov_med@mail.ru,
Сучков Игорь Александрович
Cведения об авторах:
Калинин Роман Евгеньевич, д.м.н., профессор, ректор, заведующий кафедрой сердечно-сосудистой, рентгенэндоваскулярной, оперативной хирургии и топографической анатомии, Рязанский государственный медицинский университет имени академика И.П. Павлова, г. Рязань, Российская Федерация.
https://orcid.org/0000-0002-0817-9573
Сучков Игорь Александрович, д.м.н., профессор, проректор по научной работе и инновационному развитию, профессор кафедры сердечно-сосудистой, рентгенэндоваскулярной, оперативной хирургии и топографической анатомии, Рязанский государственный медицинский университет имени академика И.П. Павлова, г. Рязань, Российская Федерация.
https://orcid.org/0000-0002-1292-5452
Климентова Эмма Анатольевна, аспирант, кафедра сердечно-сосудистой, рентгенэндоваскулярной, оперативной хирургии и топографической анатомии, Рязанский государственный медицинский университет имени академика И.П. Павлова, г. Рязань, Российская Федерация.
https://orcid.org/0000-0003-4855-9068
Егоров Андрей Александрович, к.м.н., доцент кафедры сердечно-сосудистой, рентгенэндоваскулярной, оперативной хирургии и топографической анатомии, Рязанский государственный медицинский университет имени академика И.П. Павлова, г. Рязань, Российская Федерация.
https://orcid.org/0000-0003-0768-7602
DOI: https://dx.doi.org/10.18484/2305-0047.2020.4.428   |  

В.В. ПОВОРОЗHЮК, Н.В. ДЕДУХ, М.А. БЫСТРИЦКАЯ

ВИТАМИH D В РЕГЕHЕРАЦИИ КОСТИ: ОТ ЭКСПЕРИМЕHТАЛЬHЫХ ИССЛЕДОВАHИЙ К КЛИHИЧЕСКОЙ ПРАКТИКЕ

Институт геронтологии имени Д.Ф. Чеботарева
Национальной академии медицинских наук Украины, г. Киев,
Украина

Витамин D обладает плейотропным действием, оказывая влияние на органы и ткани организма. Его влияние на костную ткань осуществляется за счет контроля гомеостаза кальция и фосфатов, а также путем прямого действия на клетки костной ткани и их метаболизм. Регенерация кости в условиях дефицита витамина D находится в стадии активного изучения. Представленный обзор литературы обобщает механизмы действия витамина D на кость. В обзоре раскрываются особенности регенерации кости и роль дефицита витамина D на этапах регенерации (воспаления, формирования мягкого и твердого регенератов с последующим его ремоделированием). Отмечено, что данные, представленные в литературе, фрагментарны, однако дают возможность оценить значение витамина D в этом сложном процессе. Данные экспериментальных исследований на животных свидетельствуют, что в большинстве исследований добавление в рацион питания животным с экспериментально моделированным травматическим повреждением витамина D способствовало формированию полноценного регенерата. Результаты клинических исследований рассмотрены в трех аспектах: распространенность дефицита витамина D у пациентов с переломом, роль витамина D в профилактике и влияние препаратов витамина D на заживление перелома. Показана высокая частота присутствия дефицита витамина D у пациентов с нарушением консолидации отломков, однако данные, касающиеся профилактики риска перелома и лечения пациентов с переломами, противоречивы, что побуждает к проведению дальнейших исследований в этом направлении.

Ключевые слова: витамин D, дефицит, риск перелома, регенерация кости, экспериментальные исследования, клинические наблюдения
с. 428-438 оригинального издания
Список литературы
  1. Marsell R, Einhorn TA. The biology of fracture healing. Injury. 2011 Jun;42(6):551-55. doi: 10.1016/j.injury.2011.03.031
  2. Gorter EA, Hamdy NA, Appelman-Dijkstra NM, Schipper IB. The role of vitamin D in human fracture healing: a systematic review of the literature. Bone. 2014 Jul;64:288-97. doi: 10.1016/j.bone.2014.04.026
  3. Поворознюк ВВ, Плудовски П (ред). Дефицит и недостаточность витамина D: эпидемиология, диагностика, профилактика и лечение: моногр. Киев: Издат. Заславский АЮ; 2015. 262 с.
  4. Holick MF. Vitamin D deficiency. N Engl J Med. 2007 Jul 19;357(3):266-81. doi: 10.1056/NEJMra070553
  5. Wacker M, Holick MF. Vitamin D – effects on skeletal and extraskeletal health and the need for supplementation. Nutrients. 2013 Jan 10;5(1):111-48. doi: 10.3390/nu5010111
  6. Carlberg C. Genome-wide (over)view on the actions of vitamin D. Front Physiol. 2014 Apr 29;5:167. doi: 10.3389/fphys.2014.00167. eCollection 2014.
  7. Pike JW. Genome-wide principles of gene regulation by the vitamin D receptor and its activating ligand. Mol Cell Endocrinol. 2011 Dec 5;347(1-2):3-10. doi: 10.1016/j.mce.2011.05.012
  8. Płudowski P, Karczmarewicz E, Bayer M, Carter G, Chlebna-Sokół D, Czech-Kowalska J, Dębski R, Decsi T, Dobrzańska A, Franek E, Głuszko P, Grant WB, Holick MF, Yankovskaya L, Konstantynowicz J, Ksiazyk JB, Księzopolska-Orłowska K, Lewiński A, Litwin M, Lohner S, Lorenc RS, Lukaszkiewicz J, Marcinowska-Suchowierska E, Milewicz A, Misiorowski W, Nowicki M, Povoroznyuk V, Rozentryt P, Rudenka E, Shoenfeld Y, Socha P, Solnica B, Szalecki M, Tałałaj M, Varbiro S, Zmijewski MA. Practical guidelines for the supplementation of vitamin D and the treatment of deficits in Central Europe – recommended vitamin D intakes in the general population and groups at risk of vitamin D deficiency. Endokrynol Pol. 2013;64(4):319-27. doi: 10.5603/ep.2013.0012
  9. Anderson PH. Vitamin D Activity and Metabolism in Bone. Curr Osteoporos Rep. 2017 Oct;15(5):443-49. doi: 10.1007/s11914-017-0394-8
  10. Saldaña L, Vallés G, Bensiamar F, José Mancebo F, García-Rey E, Vilaboa N. Paracrine interactions between mesenchymal stem cells and macrophages are regulated by 1,25-dihydroxyvitamin D3. Sci Rep. 06 Nov 2017, 7(1):14618. doi: 10.1038/s41598-017-15217-8
  11. van Driel M, Koedam M, Buurman CJ, Roelse M, Weyts F, Chiba H, Uitterlinden AG, Pols HA, van Leeuwen JP. Evidence that both 1alpha, 25-dihydroxyvitamin D3 and 24-hydroxylated D3 enhance human osteoblast differentiation and mineralization. J Cell Biochem. 2006 Oct 15;99(3):922-35. doi: 10.1002/jcb.20875
  12. Takahashi N, Udagawa N, Suda T. Vitamin D endocrine system and osteoclasts. Bonekey Rep. 2014 Feb 5;3:495. doi: 10.1038/bonekey.2013.229. eCollection 2014.
  13. Christakos S, Dhawan P, Verstuyf A, Verlinden L, Carmeliet G. Vitamin D: metabolism, molecular mechanism of action, and pleiotropic effects. Physiol Rev. 2016 Jan;96(1):365-408. doi: 10.1152/physrev.00014.2015
  14. Posa F, Di Benedetto A, Cavalcanti-Adam EA, Colaianni G, Porro C, Trotta T, Brunetti G, Lo Muzio L, Grano M, Mori G. Vitamin D Promotes MSC Osteogenic Differentiation Stimulating Cell Adhesion and αVβ3 Expression. Stem Cells Int. 2018 Feb 28;2018:6958713. doi: 10.1155/2018/6958713. eCollection 2018.
  15. Martineau C, Naja RP, Husseini A, Hamade B, Kaufmann M, Akhouayri O, Arabian A, Jones G, St-Arnaud R. Optimal bone fracture repair requires 24R,25-dihydroxyvitamin D3 and its effector molecule FAM57B2. J Clin Invest. 2018 Aug 1;128(8):3546-57. doi: 10.1172/JCI98093
  16. Gorter EA, Krijnen P, Schipper IB. Vitamin D status and adult fracture healing. J Clin Orthop Trauma. 2017 Jan-Mar;8(1):34-37. doi: 10.1016/j.jcot.2016.09.003
  17. Ramos M. Vitamin D and fragility fractures. Rev Osteoporos Metab Miner. 2017;9(1 Suppl):40-44. doi: 10.4321/S1889-836X2017000200008
  18. de Freitas RP, Nunes FP, dos Santos LM, Weckwerth PH, Silveira EMV, Gulinell JL, Santos PL. Influence of vitamin D in bone healing. J. Oral Diag. 2017; 02:e20170014. doi: 10.5935/2525-5711.20170014
  19. Street J, Bao M, deGuzman L, Bunting S, Peale FV Jr, Ferrara N, Steinmetz H, Hoeffel J, Cleland JL, Daugherty A, van Bruggen N, Redmond HP, Carano RA, Filvaroff EH. Vascular endothelial growth factor stimulates bone repair by promoting angiogenesis and bone turnover. Proc Natl Acad Sci U S A. 2002 Jul 23;99(15):9656-61. doi: 10.1073/pnas.152324099
  20. Hu K, Olsen BR. The roles of vascular endothelial growth factor in bone repair and regeneration. Bone. 2016 Oct;91:30-38. doi: 10.1016/j.bone.2016.06.013
  21. Shah P, Keppler L, Rutkowski J. A review of platelet derived growth factor playing pivotal role in bone regeneration. J Oral Implantol. 2014 Jun;40(3):330-40. doi: 10.1563/AAID-JOI-D-11-00173
  22. Dumic-Cule I, Peric M, Kucko L, Grgurevic L, Pecina M, Vukicevic S. Bone morphogenetic proteins in fracture repair. Int Orthop. 2018 Nov;42(11):2619-26. doi: 10.1007/s00264-018-4153-y
  23. Eisman JA, Bouillon R. Vitamin D: direct effects of vitamin D metabolites on bone: lessons from genetically modified mice. Bonekey Rep. 2014 Feb 5;3:499. doi: 10.1038/bonekey.2013.233. eCollection 2014.
  24. Eschle D, Aeschlimann AG. Is supplementation of Vitamin D beneficial for fracture healing? A short review of the literature. Geriatr Orthop Surg Rehabil. 2011 May;2(3):90-93. doi: 10.1177/2151458511408568
  25. Hong HH, Chou TA, Yang JC, Chang CJ. The potential effects of cholecalciferol on bone regeneration in dogs. Clin Oral Implants Res. 2012 Oct;23(10):1187-92. doi: 10.1111/j.1600-0501.2011.02284.x
  26. Hong HH, Yen TH, Hong A, Chou TA. Association of vitamin D3 with alveolar bone regeneration in dogs. J Cell Mol Med. 2015 Jun;19(6):1208-17. doi: 10.1111/jcmm.12460
  27. Ray M. Vitamin D and fracture healing: an ongoing puzzle. Int J of Orth. 2019 April 28;6(2):1050-60. doi: 10.17554/j.issn.2311-5106.2019.06.302
  28. Gorter EA, Krijnen P, Schipper IB. Vitamin D deficiency in adult fracture patients: prevalence and risk factors. Eur J Trauma Emerg Surg. 2016; 42: 369–378. Published online 2015 Jul 21. doi: 10.1007/s00068-015-0550-8
  29. Ramason R, Selvaganapathi N, Ismail NH, Wong WC, Rajamoney GN, Chong MS. Prevalence of Vitamin D Deficiency in Patients With Hip Fracture Seen in an Orthogeriatric Service in Sunny Singapore. Geriatr Orthop Surg Rehabil. 2014 Jun;5(2):82-86. doi: 10.1177/2151458514528952
  30. Ettehad H, Mirbolook A, Mohammadi F, Mousavi M, Ebrahimi H, Shirangi A. Changes in the serum level of vitamin D during healing of tibial and femoral shaft fractures. Trauma Mon. 2014 Feb;19(1):e10946. doi: 10.5812/traumamon.10946
  31. Fentaw Y, Woldie H, Mekonnen S, Tsegaye AT. Change in serum level of vitamin D and associated factors at early phase of bone healing among fractured adult patients at University of Gondar teaching hospital, Northwest Ethiopia: a prospective follow up study. Nutr J. 2017 Sep 5;16(1):54. doi: 10.1186/s12937-017-0277-y
  32. Gorter EA, Krijnen P, Schipper IB. Vitamin D status and adult fracture healing. J Clin Orthop Trauma. 2017 Jan-Mar;8(1):34-37. doi: 10.1016/j.jcot.2016.09.003
  33. Maier S, Sidelnikov E, Dawson-Hughes B, Egli A, Theiler R, Platz A, Staehelin HB, Simmen HP, Meier C, Dick W, Grob D, von Eckardstein A, Bischoff-Ferrari HA. Before and after hip fracture, vitamin D deficiency may not be treated sufficiently. Osteoporos Int. 2013 Nov;24(11):2765-73. doi: 10.1007/s00198-013-2400-z
  34. Reid IR. Vitamin D Effect on Bone Mineral Density and Fractures. Endocrinol Metab Clin North Am. 2017 Dec;46(4):935-45. doi: 10.1016/j.ecl.2017.07.005
  35. Pourfeizi HH, Tabriz A, Elmi A, Aslani H. Prevalence of vitamin D deficiency and secondary hyperparathyroidism in nonunion of traumatic fractures. Acta Med Iran. 2013;51(10):705-10.
  36. Kolb JP, Schilling AF, Bischoff J, Novo de Oliveira A, Spiro A, Hoffmann M, Amling M, Rueger JM, Lehmann W. Calcium homeostasis influences radiological fracture healing in postmenopausal women. Arch Orthop Trauma Surg. 2013 Feb;133(2):187-92. doi: 10.1007/s00402-012-1650-0
  37. Doetsch AM, Faber J, Lynnerup N, Wätjen I, Bliddal H, Danneskiold-Samsøe B. The effect of calcium and vitamin D3 supplementation on the healing of the proximal humerus fracture: a randomized placebo-controlled study. Calcif Tissue Int. 2004 Sep;75(3):183-88. doi: 10.1007/s00223-004-0167-0
  38. Cianferotti L, Parri S, Gronchi G, Civinini R, Brandi ML. The use of cholecalciferol in patients with hip fracture. Clin Cases Miner Bone Metab. 2017 Jan-Apr;14(1):48-53. doi: 10.11138/ccmbm/2017.14.1.048
  39. Fischer V, Haffner-Luntzer M, Amling M, Ignatius A. Calcium and vitamin D in bone fracture healing and post-traumatic bone turnover. Eur Cell Mater. 2018 Jun 22;35:365-85. doi: 10.22203/eCM.v035a25
  40. Aguilar Del Rey J, Jódar Gimeno E, Brañas Baztán F, Gómez Alonso C, González Lama Y, Malouf Sierra J, Borrego RS, Segura de la Morena J, Suárez Pérez JA, Valdés Y Llorca C. Is vitamin-D supplementation not useful in patients at risk of fractures and falls? Gynecol Endocrinol. 2020 Feb;36(2):93-95. doi: 10.1080/09513590.2019.1650346
  41. Bolland MJ, Grey A, Avenell A. Effects of vitamin D supplementation on musculoskeletal health: a systematic review, meta-analysis, and trial sequential analysis. Lancet Diabetes Endocrinol. 2018 Nov;6(11):847-58. doi: 10.1016/S2213-8587(18)30265-1
  42. Francis R, Aspray T, Fraser W, Macdonald H, Patel S, Mavroeidi A, Schoenmakers I, Stone M. Vitamin D and bone health: a practical clinical guideline for patient management. 2018 Dec [cited 2019 Dec 19]. Available from: https://www.endocrinology.org/media/3593/nos_vitamin_d_and_bone_-health_in_adults_web.pdf
  43. Burt LA, Billington EO, Rose MS, Raymond DA, Hanley DA, Boyd SK. Effect of high-dose vitamin D supplementation on volumetric bone density and bone strength: a randomized clinical trial. JAMA. 2019 Aug 27;322(8):736-45. doi: 10.1001/jama.2019.11889
  44. Sanders KM, Stuart AL, Williamson EJ, Simpson JA, Kotowicz MA, Young D, Nicholson GC. Annual high-dose oral vitamin D and falls and fractures in older women: a randomized controlled trial. JAMA. 2010 May 12;303(18):1815-22. doi: 10.1001/jama.2010.594
  45. Bischoff-Ferrari HA, Dawson-Hughes B, Orav EJ, Staehelin HB, Meyer OW, Theiler R, Dick W, Willett WC, Egli A. Monthly High-Dose Vitamin D Treatment for the Prevention of Functional Decline: A Randomized Clinical Trial. JAMA Intern Med. 2016 Feb;176(2):175-83. doi: 10.1001/jamainternmed.2015.7148
  46. NOGG 2017: Clinical guideline for the prevention and treatment of osteoporosis [Electronic resource]. National Osteoporosis Guideline Group. 23 June 2017. Avaiable from: https://www.guidelines.co.uk/musculoskeletal-and-joints-/nogg-osteoporosis-guideline/453250.article
  47. US Preventive Services Task Force, Grossman DC, Curry SJ, Owens DK, Barry MJ, Caughey AB, Davidson KW, Doubeni CA, Epling JW, Jr, Kemper AR, Krist AH, Kubik M, Landefeld S, Mangione CM, Silverstein M, Simon MA, Tseng CW. Vitamin D, calcium, or combined supplementation for the primary prevention of fractures in community-dwelling adults: us preventive services task force recommendation statement. JAMA. 2018 Apr 17;319(15):1592-99. doi: 10.1001/jama.2018.3185
  48. Kahwati LC, Weber RP, Pan H, Gourlay M, LeBlanc E, Coker-Schwimmer M, Viswanathan M. Vitamin D, Calcium, or Combined Supplementation for the Primary Prevention of Fractures in Community-Dwelling Adults: Evidence Report and Systematic Review for the US Preventive Services Task Force. JAMA. 2018 Apr 17;319(15):1600-12. doi: 10.1001/jama.2017.21640
  49. Rizzoli R, Stevenson JC, Bauer JM, van Loon LJ, Walrand S, Kanis JA, Cooper C, Brandi ML, Diez-Perez A, Reginster JY; ESCEO Task Force. The role of dietary protein and vitamin D in maintaining musculoskeletal health in postmenopausal women: a consensus statement from the European Society for Clinical and Economic Aspects of Osteoporosis and Osteoarthritis (ESCEO). Maturitas. 2014 Sep;79(1):122-32. doi: 10.1016/j.maturitas.2014.07.005
Адрес для корреспонденции:
04114, Украина,
г. Киев, ул. Вышгородская, 67,
Институт геронтологии имени Д.Ф. Чеботарева Национальной академии медицинских
наук Украины,
отдел клинической физиологии и патологии опорно-двигательного аппарата,
тел. +380 97 664-80-65,
.e-mail: dedukh_ninel@ukr.net,
Дедух Нинель Васильевна
Cведения об авторах:
Поворознюк Владислав Владимирович, д.м.н., профессор, заслуженный деятель науки и техники Украины, руководитель отдела клинической физиологии и патологии опорно-двигательного аппарата, Институт геронтологии имени Д. Ф. Чеботарева Национальной академии медицинских наук Украины, г. Киев, Украина.
https://orcid.org/0000-0002-8855-482X
Дедух Нинель Васильевна, д.б.н., профессор, ведущий научный сотрудник отдела клинической физиологии и патологии опорно-двигательного аппарата, Институт геронтологии имени Д.Ф. Чеботарева Национальной академии медицинских наук Украины, г. Киев, Украина.
https://orcid.org/0000-0003-0307-2328
Быстрицкая Марина Анатольевна, к.м.н., старший научный сотрудник отдела клинической физиологии и патологии опорно-двигательного аппарата, Институт геронтологии имени Д.Ф. Чеботарева Национальной академии медицинских наук Украины. г. Киев, Украина.
https://orcid.org/0000-0001-7755-1247
DOI: https://dx.doi.org/10.18484/2305-0047.2020.4.439   |  

Ю.В. ПЕРОВ 1, И.С. ПОПОВА 2, А.В. БЫКОВ 2

ЭHТЕРОЦЕЛЕ

Городская клиническая больница скорой медицинской помощи № 25 1,
Волгоградский государственный медицинский университет 2, г. Волгоград,
Российская Федерация

Энтероцеле является распространенной проблемой, с которой обычно встречается в практике гинекологи, урологи и колопроктологи. Этим термином в медицинской литературе обозначают одно из расстройств тазового дна – тазовую грыжу, содержащую петли тонкой кишки. Тазовая грыжа представляет собой протрузию брюшины между прямой кишкой и влагалищем. Содержимым грыжевого мешка могут быть не только петли тонкой кишки, но и сигмовидной, сальник, или он вовсе может не содержать органы брюшной полости, а являться фактически только протрузией сухожильного центра промежности. Определить содержимое мешка при физикальном дооперационном осмотре трудно, достоверно можно только выявить выпуклость прямой кишки в заднюю стенку влагалища. Таким образом, «энтероцеле» не является предпочтительной терминологией. Пролапс тазового дна является сложным и многофакторным процессом и энтероцеле всегда сопровождается пролапсом одного или более тазовых органов. Проблемы лечения энтероцеле заключаются в правильном выборе консервативных и оперативных методов лечения и их комбинаций. Целью операции является восстановление нормальной поддерживающей системы влагалища с уменьшением вместимости и сохранением половой функции. Понимание тазовой анатомии, патофизиологии влагалища и заднего отдела таза, а также их роли в клинических симптомах имеет решающее значение в диагностике и лечении этого заболевания. Существует множество подходов к хирургическому лечению энтероцеле, при этом опыт хирурга и его предпочтения определяют выбор метода лечения.

Ключевые слова: энтероцеле, ректоцеле, пролапс тазовых органов, тазовое дно, грыжа
с. 439-448 оригинального издания
Список литературы
  1. Bordeianou LG, Carmichael JC, Paquette IM, Wexner S, Hull TL, Bernstein M, Keller DS, Zutshi M, Varma MG, Gurland BH, Steele SR. Consensus statement of definitions for anorectal physiology testing and pelvic floor terminology (Revised). Dis Colon Rectum. 2018 Apr;61(4):421-27. doi: 10.1097/DCR.0000000000001070
  2. Farouk El Sayed R. The urogynecological side of pelvic floor MRI: the clinician’s needs and the radiologist’s role. Abdom Imaging. 2013 Oct;38(5):912-29. doi: 10.1007/s00261-012-9905-3
  3. Maglinte DD, Bartram CI, Hale DA, Park J, Kohli MD, Robb BW, Romano S, Lappas JC. Functional imaging of the pelvic floor. Radiology. 2011 Jan;258(1):23-39. doi: 10.1148/radiol.10092367
  4. Harmanli O, Jones K. Posterior Compartment Defects. In: Rock JA, Jones HW, Te Linde RW, eds. Te Linde’s Operative Gynecology. Philadelphia: Wolters Kluwer Health/Lippincott Williams & Wilkins; 2015. p. 862-85. https://obgyn.lwwhealthlibrary.com/book.aspx?bookid=2242
  5. Çalişkan E, Özdamar Ö. Should uterus be removed at pelvic organ prolapse surgery: A reappraisal of the current propensity. Pelviperineology. 2017 Mar;36(1):24-32. https://www.researchgate.net/publication/316796781_Should_uterus_be_removed_at_pelvic_organ_prolapse_surgery_A_reappraisal_of_the_current_propensity
  6. Weishaupt D, Reiner CS. Magnetic Resonance Imaging. In: Santoro GA, Wieczorek AP, Bartram CI (eds). Disorders: imaging and multidisciplinary approach to management. Springer, Heidelberg; 2010 p. 435-439. doi: 10.1007/978-88-470-1542-57.
  7. Kelvin FM, Maglinte DD, Hornback JA, Benson JT. Pelvic prolapse: assessment with evacuation proctography (defecography). Radiology. 1992 Aug;184(2):547-51. doi: 10.1148/radiology.184.2.1620863
  8. Hock D, Lombard R, Jehaes C, Markiewicz S, Penders L, Fontaine F, Cusumano G, Nelissen G. Colpocystodefecography. Dis Colon Rectum. 1993 Nov;36(11):1015-21. doi: 10.1007/bf02047292
  9. Эль-Сайед РФ. Средний отдел таза: общие сведения. В кн: Шаабан АМ, Мениас КО, Рецвани М, Табэй МС, эль-Сайед РФ, Вудворд ПДж. Диагностическая визуализация в гинекологии: рук в 3 т : пер с англ. Москва, РФ: МЕДпресс-информ; 2018. Т. 3. с. 291-93 https://www.mmbook.ru/catalog/akusherstwo-i-ginekologija/109111-detail
  10. Karasick S, Karasick D, Karasick SR. Functional disorders of the anus and rectum: findings on defecography. AJR Am J Roentgenol. 1993 Apr;160(4):777-82. doi: 10.2214/ajr.160.4.8456664
  11. Bump RC, Mattiasson A, Bø K, Brubaker LP, DeLancey JO, Klarskov P, Shull BL, Smith AR. The standardization of terminology of female pelvic organ prolapse and pelvic floor dysfunction. Am J Obstet Gynecol. 1996 Jul;175(1):10-17. doi: 10.1016/s0002-9378(96)70243-0
  12. Richardson AC. The rectovaginal septum revisited: its relationship to rectocele and its importance in rectocele repair. Clin Obstet Gynecol. 1993 Dec;36(4):976-83. doi: 10.1097/00003081-199312000-00022
  13. Jorge JM, Habr-Gama A, Wexner SD. Clinical applications and techniques of cinedefecography. Am J Surg. 2001 Jul;182(1):93-101. doi: 10.1016/s0002-9610(01)00660-2
  14. Куликовский ВФ, Олейник НВ. Тазовый пролапс у женщин. Москва, РФ: ГЭОТАР-Медиа;2008. 255 с. http://www.geotar.ru/lots/Q0007095.html
  15. Nichols DH, Randalls CL. Enterocele. In: Nichols DH, Randall CL, eds. Vaginal Surgery. 3rd ed. Baltimore: Williams and Wilkins; 1989. р. 313-27.
  16. Zimmern PE, Norton PA, Haab F, Chapple CCR, eds. Vaginal surgery for incontinence and prolapse. Springer-Verlag London; 2006. 303 р. doi: 10.1007/978-1-84628-346-8
  17. Roos JE, Weishaupt D, Wildermuth S, Willmann JK, Marincek B, Hilfiker PR. Experience of 4 years with open MR defecography: pictorial review of anorectal anatomy and disease. Radiographics. 2002 Jul-Aug;22(4):817-32. doi: 10.1148/radiographics.22.4.g02jl02817
  18. Pannu HK, Kaufman HS, Cundiff GW, Genadry R, Bluemke DA, Fishman EK. Dynamic MR imaging of pelvic organ prolapse: spectrum of abnormalities. Radiographics. 2000 Nov-Dec;20(6):1567-82. doi: 10.1148/radiographics.20.6.g00nv311567
  19. Morandi C, Breveglieri B, Moratti C, Verganti L, Torricelli P. Role of enterocoele in obstructed defecation syndrome: proposal of a new radiological and surgical classification. Pelviperineology. 2007;26:161-66. http://cms.galenos.com.tr/Uploads/Article_37187/Pelviperineology-26-161-En.pdf
  20. Beer-Gabel M, Assoulin Y, Amitai M, Bardan E. A comparison of dynamic transperineal ultrasound (DTP-US) with dynamic evacuation proctography (DEP) in the diagnosis of cul de sac hernia (enterocele) in patients with evacuatory dysfunction. Int J Colorectal Dis. 2008 May;23(5):513-19. doi: 10.1007/s00384-008-0440-1
  21. Fenner DE. Diagnosis and assessment of sigmoidoceles. Am J Obstet Gynecol. 1996 Dec;175(6):1438-41; discussion 1441-2. doi: 10.1016/s0002-9378(96)70087-x
  22. Kelvin FM, Maglinte DD, Hale DS, Benson JT. Female pelvic organ prolapse: a comparison of triphasic dynamic MR imaging and triphasic fluoroscopic cystocolpoproctography. AJR Am J Roentgenol. 2000 Jan;174(1):81-88. doi: 10.2214/ajr.174.1.1740081
  23. Lienemann A, Anthuber C, Baron A, Reiser M. Diagnosing enteroceles using dynamic magnetic resonance imaging. Dis Colon Rectum. 2000 Feb;43(2):205-12; discussion 212-3. doi: 10.1007/bf02236984
  24. García del Salto L, de Miguel Criado J, Aguilera del Hoyo LF, Gutiérrez Velasco L, Fraga Rivas P, Manzano Paradela M, Díez Pérez de las Vacas MI, Marco Sanz AG, Fraile Moreno E. MR imaging-based assessment of the female pelvic floor. Radiographics. 2014 Sep-Oct;34(5):1417-39. doi: 10.1148/rg.345140137
  25. Fielding JR. Practical MR imaging of female pelvic floor weakness. Radiographics. 2002 Mar-Apr;22(2):295-304. doi: 10.1148/radiographics.22.2.g02mr25295
  26. Reginelli A, Di Grezia G, Gatta G, Iacobellis F, Rossi C, Giganti M, Coppolino F, Brunese L. Role of conventional radiology and MRi defecography of pelvic floor hernias. BMC Surg. 2013;13 Suppl 2:S53. doi: 10.1186/1471-2482-13-S2-S53
  27. Kelvin FM, Hale DS, Maglinte DD, Patten BJ, Benson JT. Female pelvic organ prolapse: diagnostic contribution of dynamic cystoproctography and comparison with physical examination. AJR Am J Roentgenol. 1999 Jul;173(1):31-37. doi: 10.2214/ajr.173.1.10397095
  28. Murad-Regadas SM, Regadas FS, Rodrigues LV, Fernandes GO, Buchen G, Kenmoti VT. Management of patients with rectocele, multiple pelvic floor dysfunctions and obstructed defecation syndrome. Arq Gastroenterol. 2012 Apr-Jun;49(2):135-42. doi: 10.1590/s0004-28032012000200008
  29. Cundiff GW, Weidner AC, Visco AG, Bump RC, Addison WA. A survey of pessary use by members of the American urogynecologic society. Obstet Gynecol. 2000 Jun;95(6 Pt 1):931-35. doi: 10.1016/s0029-7844(00)00788-2
  30. Baeßler K, Aigmüller T, Albrich S, Anthuber C, Finas D, Fink T, Fünfgeld C, Gabriel B, Henscher U, Hetzer FH, Hübner M, Junginger B, Jundt K, Kropshofer S, Kuhn A, Logé L, Nauman G, Peschers U, Pfiffer T, Schwandner O, Strauss A, Tunn R, Viereck V. Diagnosis and Therapy of Female Pelvic Organ Prolapse. Guideline of the DGGG, SGGG and OEGGG (S2e-Level, AWMF Registry Number 015/006, April 2016). Geburtshilfe Frauenheilkd. 2016 Dec;76(12):1287-301. doi: 10.1055/s-0042-119648
  31. Радзинский ВЕ, ред. Перинеология. Москва, РФ: МИА; 2006. 336 с.
  32. Nichols DH, Randall CL. Enterocele. In: Nichols DH, Randal CL, eds. Vaginal Surgery. 4th ed. Baltimore, MD: Williams and Wilkins; 1996. р. 344.
  33. Miklos JR, Kohli N, Lucente V, Saye WB. Site-specific fascial defects in the diagnosis and surgical management of enterocele. Am J Obstet Gynecol. 1998 Dec;179(6 Pt 1):1418-22; discussion 1822-23. doi: 10.1016/s0002-9378(98)70004-3
  34. Хирш Х, Кезер О, Икле Ф. Оперативная гинекология: атлас. Москва, РФ: Гэотармед; 2004. 656 с. https://www.labirint.ru/books/399098/
  35. Milani R, Manodoro S, Cola A, Palmieri S, Reato C, Frigerio M. Transvaginal native-tissue repair of enterocele. Int Urogynecol J. 2018 Nov;29(11):1705-7. doi: 10.1007/s00192-018-3686-3
  36. Kapoor S, Sivanesan K, Robertson JA, Veerasingham M, Kapoor V. Sacrospinous hysteropexy: review and meta-analysis of outcomes. Int Urogynecol J. 2017 Sep;28(9):1285-94. doi: 10.1007/s00192-017-3291-x
  37. Meriwether KV, Antosh DD, Olivera CK, Kim-Fine S, Balk EM, Murphy M, Grimes CL, Sleemi A, Singh R, Dieter AA, Crisp CC, Rahn DD. Uterine preservation vs hysterectomy in pelvic organ prolapse surgery: a systematic review with meta-analysis and clinical practice guidelines. Am J Obstet Gynecol. 2018 Aug;219(2):129-46.e2. doi: 10.1016/j.ajog.2018.01.018
  38. Shkarupa D, Kubin N, Shapovalova E, Zaytseva A. The resurrection of sacrospinous fixation: unilateral apical sling hysteropexy. Int Urogynecol J. 2020 Feb;31(2):351-57. doi: 10.1007/s00192-019-03964-3
  39. Zhu Q, Shu H, Du G, Dai Z. Impact of transvaginal modified sacrospinous ligament fixation with mesh for the treatment of pelvic organ prolapse-before and after studies. Int J Surg. 2018 Apr;52:40-43. doi: 10.1016/j.ijsu.2018.02.021
  40. Ghoniem G, Hammett J. Female pelvic medicine and reconstructive surgery practice patterns: IUGA member survey. Int Urogynecol J. 2015 Oct;26(10):1489-94. doi: 10.1007/s00192-015-2734-5
  41. Slopnick EA, Petrikovets A, Sheyn D, Kim SP, Nguyen CT, Hijaz AK. Surgical trends and patient factors associated with the treatment of apical pelvic organ prolapse from a national sample. Int Urogynecol J. 2019 Apr;30(4):603-609. doi: 10.1007/s00192-018-3769-1
  42. Moschowitz AV. The pathogenesis, anatomy, and cure of the prolapse of the rectum. Surg Gynecol Obstet. 1912;15:7-21. https://academyofpelvicsurgery.com/wp-content/uploads/2017/10/moschcowitz-1912.pdf
  43. Paraiso MF, Falcone T, Walters MD. Laparoscopic surgery for enterocele, vaginal apex prolapse and rectocele. Int Urogynecol J Pelvic Floor Dysfunct. 1999;10(4):223-29. doi: 10.1007/s001920050050
  44. McCall ML. Posterior culdeplasty; surgical correction of enterocele during vaginal hysterectomy; a preliminary report. Obstet Gynecol. 1957 Dec;10(6):595-602. https://journals.lww.com/greenjournal/Citation/1957/12000/Posterior_Culdeplasty__Surgical_correction_of.1.aspx
  45. Kong W, Cheng X, Xiong G. A Posterior Approach to Laparoscopic Sacrospinous Ligament Suspension. JSLS. 2018 Apr-Jun;22(2):e2017.00105. doi: 10.4293/JSLS.2017.00105
  46. Spelzini F, Frigerio M, Manodoro S, Interdonato ML, Cesana MC, Verri D, Fumagalli C, Sicuri M, Nicoli E, Polizzi S, Milani R. Modified McCall culdoplasty versus Shull suspension in pelvic prolapse primary repair: a retrospective study. Int Urogynecol J. 2017 Jan;28(1):65-71. doi: 10.1007/s00192-016-3016-6
  47. Maher C, Feiner B, Baessler K, Schmid C. Surgical management of pelvic organ prolapse in women. Cochrane Database Syst Rev. 2013 Apr 30;(4):CD004014. doi: 10.1002/14651858.CD004014.pub5
  48. Biler A, Ertas IE, Tosun G, Hortu I, Turkay U, Gultekin OE, Igci G. Perioperative complications and short-term outcomes of abdominal sacrocolpopexy, laparoscopic sacrocolpopexy, and laparoscopic pectopexy for apical prolapse. Int Braz J Urol. 2018 Sep-Oct;44(5):996-4. doi: 10.1590/S1677-5538.IBJU.2017.0692
  49. Филимонов ВБ, Васин РВ, Васина ИВ. Пектопексия как способ коррекции апикального пролапса гениталий. Эксперим и Клин Урология. 2019;(4):130-33. doi: 10.29188/2222-8543-2019-11-4-130-133
  50. Astepe BS, Karsli A, Köleli I, Aksakal OS, Terzi H, Kale A. Intermediate-term outcomes of laparoscopic pectopexy and vaginal sacrospinous fi xation: a comparative study. Int Braz J Urol. 2019 Sep-Oct;45(5):999-7. doi: 10.1590/S1677-5538.IBJU.2019.0103
  51. Zbar AP, Wexner SD. Coloproctology. SpringerVerlag Specialist Surgery Series. London, UK: Springer-Verlag London Limited; 2010. 221 p.
  52. Стрижаков АН, Косаченко АГ, Давыдов АИ. Генитальные грыжи. Современное состояние проблемы. Вопр Гинекологии, Акушерства и Перинатологии. 2016;15(1):58-64. doi: 10.20953/1726-1678-2016-1-58-64
Адрес для корреспонденции:
400131, Российская Федерация,
г. Волгоград, площадь Павших Борцов, д. 1,
Волгоградский государственный
медицинский университет,
кафедра хирургических болезней
и нейрохирургии ФУВ,
тел. раб.: +7 (8442) 59-55-64,
e-mail: yvperov@list.ru,
Перов Юрий Вадимович
Cведения об авторах:
Перов Юрий Вадимович, к.м.н., врач-колопроктолог, Городская клиническая больница скорой медицинской помощи № 25, г. Волгоград, Российская Федерация.
https://orcid.org/0000-0003-4280-689X
Попова Ирина Степановна, д.м.н., профессор кафедры хирургических болезней и нейрохирургии, Волгоградский государственный медицинский университет, г. Волгоград, Российская Федерация.
https://orcid.org/0000-0002-1166-0579
Быков Александр Викторович, д.м.н., профессор, заведующий кафедрой хирургических болезней и нейрохирургии, Волгоградский государственный медицинский университет, г. Волгоград, Российская Федерация.
https://orcid.org/0000-0001-9891-5150

СЛУЧАИ ИЗ ПРАКТИКИ

DOI: https://dx.doi.org/10.18484/2305-0047.2020.4.449   |  

А.В. КОЛСАHОВ, С.Е. КАТОРКИH, П.Н. МЫШЕHЦЕВ, П.М. ЗЕЛЬТЕР, А.В. КАПИШHИКОВ, К.В. ЗАГИДУЛЛИHА

РОЛЬ КОМПЬЮТЕРHОЙ ТОМОГРАФИИ ПРИ ПЛАHИРОВАHИИ ОПЕРАТИВHОГО ЛЕЧЕHИЯ ПАЦИЕHТА С ЛИМФЕДЕМОЙ HИЖHИХ КОHЕЧHОСТЕЙ

Самарский государственный медицинский университет, г. Самара,
Российская Федерация

Под наблюдением находилась пациентка, 57 лет, в течение 16 лет страдающая вторичной лимфедемой нижних конечностей IV стадии. При обследовании применялись клинические, лабораторные исследования, ультразвуковое сканирование, компьютерная томография с 3D-реконструкцией и обработкой по программе «Автоплан». По данным предоперационного обследования, пациентке последовательно проведены операции парциальной дермалипофасциоэктомии.
Данное наблюдение показало, что прогрессирующее течение заболевания у пациентки способствовало развитию тяжелой формы вторичной лимфедемы IV стадии с обезображивающей деформацией и значительным нарушением функции нижних конечностей. Данные компьютерной томографии показали, что практически на всем протяжении бедер плотность мягких тканей повышена (-80, -93 HU). Это свидетельствовало о полном замещении жировой клетчатки грубой соединительной тканью. Фиброзные изменения распространялись от кожи до фасции и носили циркулярный характер. Из-за выраженного деформирующего отека объем правой нижней конечности у пациентки составлял 21576 см3, левой – 23139 см3. Во время выполнения оперативного вмешательства данные компьютерной томографии, обработанные по программе «Автоплан», обеспечивали выбор способа диссекции тканей. При фрагментарной локализации фиброза с плотностью от -100 до -50 HU диссекция тканей производилась монополярным электрохирургическим способом. При распространенном фиброзе с плотностью ниже -50 HU оптимальным способом диссекции тканей являлся механический, с последовательным использованием режима монополярной коагуляции. По результатам компьютерной томографии, после операции заметно уменьшились не только толщина, но и плотность тканей с тенденцией к повышению значений показателя Хаунсфилда (-95, -105HU).
Качественные и количественные показатели, полученные при компьютерной томографии с использованием 3D-моделирования и программы «Автоплан», позволяют установить показания к оперативному лечению, определить оптимальный объем резекции, а также параметры диссекции патологически измененных тканей, обеспечить контроль в послеоперационном периоде.

Ключевые слова: лимфедема нижних конечностей, лимфатический отек, хирургическое лечение, компьютерная томография, 3D-моделирование
с. 449-455 оригинального издания
Список литературы
  1. The diagnosis and treatment of peripheral lymphedema: 2016 consensus document of the International Society of Lymphology. Lymphology. 2016 Dec;49(4):170-84.
  2. Юдин ВА, Савкин ИД. Лечение лимфедемы конечностей (Обзор литературы). Рос Мед-Биол Вестн им Акад ИП Павлова. 2015;23(4):145-53. doi: 10.17816/PAVLOVJ20154145-153
  3. Фионик ОВ, Бубнова НА, Петров СВ, Ерофеев НП, Ладожская-Гапеенко ЕЕ, Семенов АЮ. Лимфедема нижних конечностей: алгоритм диагностики и лечения. Новости Хирургии. 2009;17(4):49-64. http://www.surgery.by/pdf/full_text/2009_4_8_ft.pdf
  4. Макарова ВС, Выренков ЮЕ. Комплексная физическая противоотечная терапия в лечении лимфедем. Вестник Лимфологии. 2014;(4):10-22. https://elibrary.ru/item.asp?id=22790683
  5. Бадтиева ВА, Князева ТА, Апханова ТВ. Актуальные вопросы диагностики и восстановительного лечения лимфедемы нижних конечностей. Вопр Курортологии, Физиотерапии и Лечеб Физ Культуры. 2010;(4):22-24. https://elibrary.ru/item.asp?id=15271450
  6. Lu S, Tran TA, Jones DM, Meyer DR, Ross JS, Fisher HA, Carlson JA. Localized lymphedema (elephantiasis): a case series and review of the literature. J Cutan Pathol. 2009 Jan;36(1):1-20. doi: 10.1111/j.1600-0560.2008.00990.x
  7. Boccardo F. An overview of the treatment of primary and secondary lymphatic diseases: the effort of the ESL to put some order. EJLRP. 2017;29(77):1-10. https://www.eurolymphology.org/JOURNAL/VOL29-N77-2017.pdf
  8. Малинин АА, Сергеев СЮ. Радикальное лечение деформирующих форм слоновости поэтапным методом компрессионной и резекционнопластической редукции лимфедематозных тканей. Анналы Хирургии. 2017;22(3):181-86. https://elibrary.ru/item.asp?id=30322591
  9. Мышенцев ПН, Каторкин СЕ. Тактика лечения при вторичной лимфедеме нижних конечностей. Новости Хирургии. 2014;22(2):239-43. doi: 10.18484/2305-0047.2014.2.239
Адрес для корреспонденции:
443013, Российская Федерация,
г. Самара, проспект Карла Маркса, 165 б,
Самарский государственный
медицинский университет,
кафедра и клиника госпитальной хирургии,
тел.: +7 927 206-71-02,
e-mail: katorkinse@mail.ru,
Каторкин Сергей Евгеньевич
Cведения об авторах:
Колсанов Александр Владимирович, д.м.н., профессор РАН, ректор, заведующий кафедрой оперативной хирургии и клинической анатомии с курсом инновационных технологий, Самарский государственный медицинский университет Минздрава России, г. Самара, Российская Федерация.
https://orcid.org/0000-0002-4144-7090
Каторкин Сергей Евгеньевич, д.м.н., доцент, заведующий кафедрой и клиникой госпитальной хирургии, Самарский государственный медицинский университет Минздрава России, г. Самара, Российская Федерация.
https://orcid.org/0000-0001-7473-6692
Мышенцев Павел Николаевич, к.м.н., доцент кафедры госпитальной хирургии, Самарский государственный медицинский университет Минздрава России, г. Самара, Российская Федерация.
https://orcid.org/0000-0001-7564-8168
Зельтер Павел Михайлович, к.м.н., ассистент кафедры лучевой диагностики и лучевой терапии с курсом медицинской информатики, Самарский государственный медицинский университет Минздрава России, г. Самара, Российская Федерация.
https://orcid.org/0000-0003-1346-5942
Капишников Александр Викторович, д.м.н., заведующий кафедрой лучевой диагностики и лучевой терапии с курсом медицинской информатики, Самарский государственный медицинский университет Минздрава России, г. Самара, Российская Федерация.
https://orcid.org/0000-0002-6858-372X
Загидуллина Ксения Вячеславовна, клинический ординатор, кафедра лучевой диагностики и лучевой терапии с курсом медицинской информатики, Самарский государственный медицинский университет Минздрава России, г. Самара, Российская Федерация.
https://orcid.org/0000-0003-4576-3709
DOI: https://dx.doi.org/10.18484/2305-0047.2020.4.456   |  

В.А. ПОДКАМЕHHЫЙ 1, 2, А.А. ШАРАВИH 1, Ю.В. ЖЕЛТОВСКИЙ 1, 2, 3, А.В. ВЫРУПАЕВ 1, С.В. ИМСЫРОВ 1

ЭМБОЛИЯ ДРОБЬЮ БОЛЬШОЙ ПОДКОЖHОЙ ВЕHЫ ПОСЛЕ ОГHЕСТРЕЛЬHОГО РАHЕHИЯ КРЕСТЦА

Иркутская областная клиническая больница 1,
Иркутская государственная медицинская академия последипломного образования 2,
Иркутский государственный медицинский университет 3, г. Иркутск,
Российская Федерация

Огнестрельная рана является основным видом травм при проведении боевых действий. В мирное время встречается относительно редко и может становиться результатом криминальных инцидентов или несчастных случаев на охоте. В представленном клиническом случае описывается эмболия дробью при огнестрельном ранении в область крестца. Дробь из нижней полой вены или подвздошной вены ретроградно под собственным весом спустилась в бедренную и затем в большую подкожную вену бедра, где остановилась благодаря клапанам. В течение 21 года после травмы и эмболии большой подкожной вены бедра больной не предъявлял жалоб. Наличие дроби в вене явилась находкой на операции маммарокоронарного шунтирования по поводу ишемической болезни сердца. Фрагмент большой подкожной вены на правом бедре выделен эндоскопическим методом. При обработке вены обнаружены две дробины с облитерацией просвета. Публикации об эмболии дробью или пулей после огнестрельной травмы единичны. Эмболии могут наблюдаться как в артериальной, так и в венозной системе. По данным авторов, эмболии вен наблюдаются реже, чем артерий. Вследствие небольшого количества публикаций данный клинический случай представляет интерес.

Ключевые слова: огнестрельное ранение, эмбол, дробь, ишемическая болезнь сердца, коронарное шунтирование
с. 456-459 оригинального издания
Список литературы
  1. Greaves N. Gunshot bullet embolus with pellet migration from the left brachiocephalic vein to the right ventricle: a case report. Scand J Trauma Resusc Emerg Med. 2010 Jun 20;18:36. doi: 10.1186/1757-7241-18-36
  2. Huebner S, Ali S. Bilateral shotgun pellet pulmonary emboli. J Radiol Case Rep. 2012 Apr;6(4):1-10. doi: 10.3941/jrcr.v6i4.940
  3. Bakan S, Korkmazer B, Baş A, Şimşek O, Barman HA, Çebi Olgun D. Embolism of a pellet after shotgun injury: From liver to right ventricle. Ulus Travma Acil Cerrahi Derg. 2016 Jul;22(4):395-98. doi: 10.5505/tjtes.2015.32470
  4. Vedelago J, Dick E, Thomas R, Jones B, Kirmi O, Becker J, Alavi A, Gedroyc W. Look away: arterial and venous intravascular embolisation following shotgun injury. J Trauma Manag Outcomes. 2014 Nov 15;8:19. doi: 10.1186/1752-2897-8-19. eCollection 2014.
  5. Dada MA, Loftus IA, Rutherfoord GS. Shotgun pellet embolism to the brain. Am J Forensic Med Pathol. 1993 Mar;14(1):58-60. doi: 10.1097/00000433-199303000-00014
  6. Fisk RL, Addetia A, Gelfand ET, Brooks CH, Dvorkin J. Missile migration from lung to heart with delayed systemic embolization. Chest. 1977 Oct;72(4):534-35. doi: 10.1378/chest.72.4.534
  7. Hussein N, Rigby J, Abid Q. Bullet embolus to the right ventricle following shotgun wound to the leg. BMJ Case Rep. 2012 Dec 14;2012. pii: bcr2012007471. doi: 10.1136/bcr-2012-007471
  8. Schurr M, McCord S, Croce M. Paradoxical bullet embolism: case report and literature review. J Trauma. 1996 Jun;40(6):1034-36. doi: 10.1097/00005373-199606000-00034
  9. Decker HR. Foreign bodies in the heart and pericardium: should they be removed? J Thorac Surg. 1939 Oct;9(1):62-79. doi: 10.1016/S0096-5588(20)32043-2
Адрес для корреспонденции:
664049, Российская Федерация,
г. Иркутск, мкр. Юбилейный, 100,
Иркутская областная клиническая больница,
отделение кардиохирургии № 1,
тел. моб.: +7 950 125-63-90,
e-mail: trew1986@list.ru,
Шаравин Анатолий Александрович
Cведения об авторах:
Подкаменный Владимир Анатольевич, д.м.н., профессор кафедры сердечно-сосудистой хирургии, врач – сердечно-сосудистый хирург, отделение кардиохирургии № 1, Иркутская областная клиническая больница, Иркутск, Российская Федерация
http://orcid.org/0000-0002-3465-792X
Шаравин Анатолий Александрович, врач – сердечно-сосудистый хирург, отделение кардиохирургии № 1, Иркутская областная клиническая больница, Иркутск, Российская Федерация.
http://orcid.org/ 0000-0003-1073-1213
Желтовский Юрий Всеволодович, д.м.н., профессор кафедры сердечно-сосудистой хирургии, врач – сердечно-сосудистый хирург, отделение кардиохирургии № 1, Иркутская областная клиническая больница, Иркутск, Российская Федерация.
http://orcid.org/0000-0002-3269-0195
Вырупаев Алексей Валерьевич, врач-кардиолог, отделение кардиохирургии № 1, Иркутская областная клиническая больница, Иркутск, Российская Федерация.
http://orcid.org/0000-0001-6474-2917
Имсыров Сергей Владимирович, врач-анестезиолог, отделение кардиохирургии № 1, Иркутская областная клиническая больница, Иркутск, Российская Федерация.
http://orcid.org/0000-0003-4465-4199

ОБМЕH ОПЫТОМ

DOI: https://dx.doi.org/10.18484/2305-0047.2020.4.460   |  

В.И. РУСИH, К.Е. РУМЯHЦЕВ, В.В. РУСИH, В.В. МАШУРА

ГАСТРОЕЮHОДУОДЕHОСТОМИЯ В ПРОФИЛАКТИКЕ И ЛЕЧЕHИИ HЕСОСТОЯТЕЛЬHОСТИ КУЛЬТИ ДВЕHАДЦАТИПЕРСТHОЙ КИШКИ ПОСЛЕ РЕЗЕКЦИИ ЖЕЛУДКА ПО ПОВОДУ ЯЗВЕHHОЙ БОЛЕЗHИ

Ужгородский национальный университет, г. Ужгород,
Украина

Цель. Оценить клиническую эффективность использования гастроеюнодуоденостомии для закрытия «трудной» или несостоятельной культи двенадцатиперстной кишки после резекции желудка.
Материал и методы. В работе представлен опыт гастроеюнодуоденостомии после резекции желудка по поводу язвенной болезни. Гастроенодуоденостомию выполняли с использованием петли тонкой кишки, изолированной по Ру, на которой сначала накладывали гастроеюноанастомоз по типу «конец-в-конец» или «бок-в-бок», а потом накладывали дуоденоеюноанастомоз «конец культи двенадцатиперстной кишки-в-бок Ру-петли». В статье описаны 5 последовательных клинических случаев использования метода за период 2018-2019 гг. Все пациенты были мужчинами в возрасте от 51 до 68 лет. У 3 гастроеюнодуоденостомия была выполнена после предшествующей операции, а у 2 – первично, ввиду невозможности закрытия культи двенадцатиперстной кишки.
Результаты. Осложнения в раннем послеоперационном периоде возникли у 2 пациентов: двусторонний тромбоз глубоких вен нижних конечностей и нагноение послеоперационной раны. Пациент с нагноением умер от прогрессирования хронической сердечной недостаточности на 27-й день после операции.
Заключение. Позитивными сторонами гастроеюнодуоденостомии являются: универсальность – использование как при «трудной» культе, так и для лечения ее несостоятельности; простота: хирург только пересекает и накладывает анастомозы без необходимости пластики или выкраиваний; применимость при «низких» и юкстапапиллярных язвах – пришивание тонкой кишки к культе возможно даже по краю слизистой шириной 1 мм; применимость при отсутствии передней стенки двенадцатиперстной кишки: после предшествующих гастродуоденоанастомозов по Финнею и Джабуле, после иссечения перфоративной язвы по Джадду; пластические свойства – использование хорошо кровоснабжаемой петли тонкой кишки для закрытия дефекта с воспаленными краями сродни пересадке кожного лоскута на раневой дефект; декомпрессия двенадцатиперстной кишки; редуоденизация пассажа пищи.

Ключевые слова: язвенная болезнь двенадцатиперстной кишки, дистальная резекция желудка, несостоятельность культи двенадцатиперстной кишки, гастроеюнод
с. 460-469 оригинального издания
Список литературы
  1. Ali BI, Park CH, Song KY. Outcomes of non-operative treatment for duodenal stump leakage after gastrectomy in patients with gastric cancer. J Gastric Cancer. 2016 Mar;16(1):28-33. doi: 10.5230/jgc.2016.16.1.28
  2. Cozzaglio L, Giovenzana M, Biffi R, Cobianchi L, Coniglio A, Framarini M, Gerard L, Gianotti L, Marchet A, Mazzaferro V, Morgagni P, Orsenigo E, Rausei S, Romano F, Rosa F, Rosati R, Roviello F, Sacchi M, Morenghi E, Quagliuolo V. Surgical management of duodenal stump fistula after elective gastrectomy for malignancy: an Italian retrospective multicenter study. Gastric Cancer. 2016 Jan;19(1):273-79. doi: 10.1007/s10120-014-0445-0
  3. Ramos MFKP, Pereira MA, Barchi LC, Yagi OK, Dias AR, Szor DJ, Zilberstein B, Ribeiro-Júnior U, Cecconello I. Duodenal fistula: The most lethal surgical complication in a case series of radical gastrectomy. Int J Surg. 2018 May;53:366-70. doi: 10.1016/j.ijsu.2018.03.082
  4. Zizzo M, Ugoletti L, Manzini L, Castro Ruiz C, Nita GE, Zanelli M, De Marco L, Besutti G, Scalzone R, Sassatelli R, Annessi V, Manenti A, Pedrazzoli C. Management of duodenal stump fistula after gastrectomy for malignant disease: a systematic review of the literature. BMC Surg. 2019 May 28;19(1):55. doi: 10.1186/s12893-019-0520-x
  5. Vashist YK, Yekebas EF, Gebauer F, Tachezy M, Bachmann K, König A, Kutup A, Izbicki JR. Management of the difficult duodenal stump in penetrating duodenal ulcer disease: a comparative analysis of duodenojejunostomy with “classical” stump closure (Nissen-Bsteh). Langenbecks Arch Surg. 2012 Dec;397(8):1243-49. doi: 10.1007/s00423-012-0990-0
  6. Тарасенко СВ, Зайцев ОВ, Кочуков ВП, Копейкин АА, Натальский АА, Богомолов АЮ. Хирургия осложненной язвенной болезни: моногр [Электронный ресурс]. Москва, РФ: Проспект; 2015. 102 с. Режим доступа: https://rucont.ru/efd/632802
  7. Burch JM, Cox CL, Feliciano DV, Richardson RJ, Martin RR. Management of the difficult duodenal stump. Am J Surg. 1991 Dec;162(6):522-26. doi: 10.1016/0002-9610(91)90102-j
  8. Kutlu OC, Garcia S, Dissanaike S. The successful use of simple tube duodenostomy in large duodenal perforations from varied etiologies. Int J Surg Case Rep. 2013;4(3):279-82. doi: 10.1016/j.ijscr.2012.11.025
  9. Cukingnan RA Jr, Culliford AT, Worth MH Jr. Surgical correction of a lateral duodenal fistula with the Roux-Y technique: report of a case. J Trauma. 1975 Jun;15(6):519-23. doi: 10.1097/00005373-197506000-00012
  10. Chung RS, DenBesten L. Duodenojejunostomy in gastric operations for postbulbar duodenal ulcer. Arch Surg. 1976 Sep;111(9):955-57. doi: 10.1001/archsurg.1976.01360270027004
  11. Blouhos K, Boulas KA, Konstantinidou A, Salpigktidis II, Katsaouni SP, Ioannidis K, Hatzigeorgiadis A. Early rupture of an ultralow duodenal stump after extended surgery for gastric cancer with duodenal invasion managed by tube duodenostomy and cholangiostomy. Case Rep Surg. 2013;2013:430295. doi: 10.1155/2013/430295
  12. Wu X, Zen D, Xu S, Zhang L, Wang P. A modified surgical technique for the emergent treatment of giant ulcers concomitant with hemorrhage in the posterior wall of the duodenal bulb. Am J Surg. 2002 Jul;184(1):41-44. doi: 10.1016/s0002-9610(02)00889-9
  13. Isik B, Yilmaz S, Kirimlioglu V, Sogutlu G, Yilmaz M, Katz D. A life-saving but inadequately discussed procedure: tube duodenostomy. Known and unknown aspects. World J Surg. 2007 Aug;31(8):1616-24; discussion 1625-6. doi: 10.1007/s00268-007-9114-3
Адрес для корреспонденции:
88018, Украина,
г. Ужгород, ул. Капушанская, д. 22,
Ужгородский национальный университет,
кафедра хирургических болезней,
тел.: +380 (50) 950-95-84,
e-mail: roff75@gmail.com,
Румянцев Константин Евгеньевич
Cведения об авторах:
Русин Василий Иванович, д.м.н., профессор, кафедра хирургических болезней, Ужгородский национальный университет, г. Ужгород, Украина.
https://orcid.org/0000-0001-5688-9951
Румянцев Константин Евгеньевич, д.м.н., профессор, кафедра хирургических болезней, Ужгородский национальный университет, г. Ужгород, Украина.
https://orcid.org/0000-0002-8154-0601
Русин Василий Васильевич, д.м.н., профессор, кафедры хирургических болезней, Ужгородский национальный университет, г. Ужгород, Украина.
https://orcid.org/0000-0002-0794-6777
Машура Валерий Владимирович, к.м.н., ассистент, кафедра хирургических болезней, Ужгородский национальный университет, г. Ужгород, Украина.
https://orcid.org/0000-0001-9066-7228
Контакты | ©Витебский государственный медицинский университет, 2007